cDNA of the glx1 gene encoding glyoxal oxidase (GLX) from Phanerochaete chrysosporium was isolated and expressed in Pichia pastoris. The recombinant GLX (rGLX) produces $H_2O_2$ over 7.0 nmol/min/mL using methyl glyoxal as a substrate. Use of rGLX as a generator of $H_2O_2$ improved the coupled reaction with recombinant manganese peroxidase resulting in decolorization of malachite green up to $150{\mu}M$ within 90 min.
De Graaf, Dirk-C.;Coninck, Hans-De;Petry, Franz;Eeckhout, Ilka-B.;Peeters, Johan-E.
Parasites, Hosts and Diseases
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제40권1호
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pp.59-64
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2002
A Cryptosporidium parvum sporozoite and oocyst λgt11 cDNA library was screened with a hyperimmune rabbit serum that was developed against insoluble fragments of ultrasonicated oocysts. A clone named Cp22.4.1 encoding a protein of 231 amino acids with 4 zinc-finger domains characterized by a Cys-X2-Cys-X4-His-X4-Cys motif was isolated and characterized. There was a complete match between the sequencing data of the coding region of Cp22.4.1 and the corresponding gene at chromosomal level. Cloning in a pBAD-TOPO-TA expression vector permitted to evaluate the antigenicty of the recombinant His-tagged antigen. This antigen was recognized by 2 out of 5 sera from Cruptosporidium immune calves and not by sera from parasite naive animals.
Pesticide waste and chemical stockpiles are posing a potential threat to both Vie environment and human health. There is currently a great effort toward developing effective and economical methods for the detoxification of these toxic organophosphates. In terms of safety and economy, enzymatic biodegradation has been recommended as the most promising tool to detoxify these toxic materials. To develop an enzymatic degradation method to detoxify such toxic organophosphorus compounds, a gene encoding organophosphorus acid anhydrolase (OPAA) from genomic DNA of Alteromonas haloplanktis C was subcloned and expressed. The enzyme consists of a single polypeptide chain with a molecular weight of 48 kDa. It demonstrates strong hydrolyzing activity on sarin, an acetylcholinesterase inhibitor. Moreover, its high activity is sustained for a considerable length of time. It is projected that the recombinant OPAA can be applied as an enzymatic tool that can be used not only for the detoxification of pesticide wastes, but also for the demilitarization of chemical stockpiles.
Seo, Ja-Young;Kang, Bong-Jo;Oh, Hyoung-Jong;Lee, Jae-Il;Kim, Tae-Jung
한국어병학회지
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제21권3호
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pp.175-180
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2008
Lymphocystis is a viral disease of fish primarily in marine and brackishwaters. Here we report the cloning, expression, and the serological applications of the lymphocystis disease virus (LCDV) major capsid protein (MCP). The MCP gene was amplified by PCR from the genomic DNA of LCDV isolated from Schlegel's black rockfish, Sebastes schlegeli, and expressed in E. coli. Mouse antisera raised against the purified recombinant MCP (rMCP) reacted with the viral MCP in an immunofluorescence assay, indicating that this rMCP would be useful for serological studies of field samples.
In this study HepG2 cells were used to express and purify HBV pol proteins. In order to facilitate purification of HBV pol proteins, HBV pol and its deletion mutants were fused to MBP (Maltose Binding Protein). As a result we successfully expressed and partially purified both wild type and mutant recombinant HBV pol proteins by using an amylose resin and anti-MBP antibody. In the case of wild type, the anti-MBP antibody detected three bands. One was full-length and the others were generated by proteolysis of the terminal domain region. The expressed MBP/POL proteins were localized both in the cytoplasm and in the perinuclear region. The purified proteins had polymerase activity toward an exogenous homo-polymer template. The MBP/POL protein also had DNA synthesis activity in vivo, since the MBP/POL expression construct was able to complement a HBV polymerase mutant in trans.
대한약학회 2003년도 Proceedings of the Convention of the Pharmaceutical Society of Korea Vol.2-2
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pp.230.3-231
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2003
The therapeutic use of protein pharmaceuticals produced by recombinant DNA technology is increasing in recent decades. In order to investigate the quality of recombinant proteins, it is important to identify and assign the impurities produced in the process of recombination or in storage conditions. Capillary Electrophoresis is emerging technology exhibiting high sensitivity, selectivity and speed and may be most powerful tools for this application. In this study, human growth hormone (hGH) has been analyzed by various mode of capillary electrophoresis such as capillary zone electrophoresis (CZE), capillary gel electrophoresis (CGE), and capillary isoelectric focusing (cIEF) to indicate the chemically or biologically oriented variants and the degraded fragments. (omitted)
Streptomyces coelicolor의 전 유전체 청보를 분석한 결과(7), 유전자 ID1103135가 코드 하는 open reading frame SCO7697이 phytase[myo-inositol hexakisphosphate phosphohydrolase상동성 (3-6,8,23)]에 유의하게 유사한 것으로 판단되었다. S. coelicolor A3(2)M의 염색체 DNA를 주형으로 PCR 방법으로 SCO7697 전체를 포함하는 DNA 단편을 클로닝하였다. 두 가지의 서로 다른 길이를 갖는 클로닝 된 ID1103135 DNA 단편을 E. coli 발현용 벡터pET728a(+)에 삽입하여,두 종의 재조합 벡터 pET28-SP와 pET28-LP를 얻었다. pET28-SP 와 pET28-LP를 각각 E. coli BL2l에 도입하여, IPTG로 발현 유도된 단백질을 SDS-polyacrylamide 전기영동으로 확인한 결과, 발현은 성공적으로 이루어 졌으나 대부분불용체를 형성하고 분자량은 예상보다 약간 큰 것으로 나타났다. 불용체 형성은 단백질의 불활성화를 수반 함으로서, 배양 온도를 $37^{\circ}C$에서 $30^{\circ}C$로 변화시켜 배양하는 방법으로 발현된 단백질을 가용화 시켰다. 발현된 단백질을 추출하여 조추출물 또는 정제한 상태로 phytase활성을 측청하였으나 효소활성은 관찰할 수 없었다. 대장균 시스템에서의 발현이 효소 활성의 소실을 초래했을 가능성이 있으므로, ID1103135 유전자를 자신의 promoter를 함유하도록 PCR 클로닝하여, E. coli - Streptomyces의 shuttle vector인 pWHM3에 삽입하고, 이를 방선균 호스트인 S. lividans에 도입하였다. 형질 전환체의 세포조추출액 및 세포배양액의 phytase 활성을 측청하였으나, 역시 활성을 확인할수 없었다. 이와 같은 결과는 SCO7697이 아주 높은 확률(E value; $6e^{-89}$)로 phytase일 것으로 annotation 되었으나, 실제는 이와는 다른 기능을 함유하고 있음을 시사하고 있다.
Genomic RNA was extracted from Cy strain of odontoglossum ringspot tobamovirus (ORSV-Cy) isolated from infected leaves of tobacco cv. Samsun. Size of the genomic RNA was about 6.6 kb in length. The genomic RNA was fractionated using Sephadex G-50 column chromatography into 2 fractions. They were polyadenylated at their 3'-end using E. coli poly(A) polymerase. Polyadenylated viral RNA was recovered by oligo (dT) primer adapter containing NotI restriction site and Moloney murine leukemia virus SuperScript reverse transcriptase (RNase H-). Second-strand cDNA was synthesized by using E. coli DNA ligase, E. coli DNA polymerase I and E. coli RNase H. Recombinant plasmids containing cDNAs for ORSV-Cy RNA ranged from about 800 bp to 3,000 bp. Among the selected 238 recombinants, pORCY-124 clone was the largest one covering 3'-terminal half of the viral RNA. This clone contained two restriction sites for EcoRI and XbaI and one site for AccI, AvaI, BglII, BstXI, HindIII, PstI, and TthIII 1. respectively. The clone contained partial viral replicase, a full-length movement protein and a complete coat protein genes followed by a 3' untranslated region of 414 nucleotides based on restriction mapping and nucleotide sequencing analyses. Clones pORCY-028, -068, -072, -187 and -224 were overlapped with the pORCY-124. Clones pORCY-014 and -095 covered 5' half upstream from the middle region of the viral RNA, which was estimated based on restriction mapping and partial sequence analysis. Constructed cDNA library covered more than 90% of the viral genome.
Metallothionein은 세포내의 중금속의 농도을 조절하는 주요한 단백질로서 bacteria에서 척추동물에 이르기까지 모든 생명체에서 나타나는 공통된 단백질이다. 비록 metallothionein의 정확한 기능은 알려져 있지 않으나 독성을 나타내는 중금속에 대하여 세포내 방어기작에 관여할 뿐만 아니라 여러다른 유전자의 총괄적 조절기작 및 matalloprotein의 발현에 관여할 것으로 보고있다. 본 연구에서는 Channel Catfish의 metallothionein cDNA 유전자를 poly(A)를 갖는 mRNA로 부터 Reverse Transcriptase-Polymerase Chain Reaction(RT-PCR)에 의하여 cloning하였다. 증폭된 PCR products는 pBluescript SK+의 EcoRV site 및 pUC19의 Smal site에 dT tailing을 하여 cloning하였으며, PCR products는 multicloning site에 있는 EcoRI 및 HindIII 로 절단하여 확인하거나 신속한 PCR screening에 의하여 확인하였다. 여러 PCR clone 중 하나인 pMT150에 대한 DNA 염기서열을 조사한 결과 다른 어류의 metallothionein cDNA 유전자와 높은 유사성을 보였다.
Mutants having altered levels and/or types of EPS in exopolysaccharide biosynthesis were isolated after NTG mutagenesis of Zoogloea ramigera 115SLR. Mutant candidates were classfied with five groups based on the observed characteristics for EPS biosynthesis pattern. The recombinant plasmids pLEX3BS and pLEX3BM were constructed from pEX3B which was previously isolated from genomic DNA of Z. ramigera 115SLR. Plasmid pLEX3BM with a 7.8 kb insert DNA contains an additional 1.8kb DNA fragment which is not present in pLEX3BS containing 13 kb insert DNA. Plasmid pLEX3BM was able to complement the mutation responsible for the changes in morphology of Z. ramigera 115SLR. However, the complementation of EPS negative mutant strains was not successful with pLEX3BM. Plasmid pLEX3BS on the other hand complemented the mutation responsible for the loss of EPS biosynthesis, resulting in the restoration of Z. ramigera 115SLR phenotype. But this plasmid was not able to complement the morphological mutant strain, Z. ramigera 115SLR.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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