In order to identify proteins that are present in biological samples, these samples are separated and analyzed under the sequential procedure as follows: protein purification and digestion, peptide fragmentation by tandem mass spectrometry (MS/MS) which breaks peptides into fragments, peptide identification, and protein identification. One of the widely used methods for protein identification is based on probabilistic approaches such as ProteinProphet and BaysPro. However, they do not consider the difference in peptide identification probabilities according to their length. Here, we propose a probabilistic graphical model-based approach to protein identification from MS/MS data considering peptide identification probabilities, number of sibling peptides, and peptide length. We compared our approach with ProteinProphet using a yeast MS/MS dataset. As a result, our model identified 27 more proteins than ProteinProphet at 1% of FDR (false discovery rate), confirming the importance of peptide length information in protein identification.
Park, Nam-Suk;Lee, Sang-Mong;Moon, Jae-Yu;Su, Il-Seong
한국잠사곤충학회지
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제41권2호
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pp.75-81
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1999
The storage protein-like protein has been purified from the 5th instar larval haemolymph of the Chinese osk silkwom, Antheraea pernyi, and the preparation was shown to be homogeneous by 7.5% native-PAGE. The molecule was consisted of a single subunit with a molecular weight of 80K, but the number of the subunits was not determined. The protein was defied as glycoprotein by Schiff's regent stining. Rabbit antibody prepared against the purified protein crotein crossreacted with the 5th instar larval haemolymph proteins of Antheraea pernyi and antheraea yamamai, but not with those of Bombyx mori and Bombyx mandarina.
A novel process for urokinase purification was studied using p-aminobenzamidine as the ligand and sepharose 4B as the matrix. The adsorption, washing, and elution conditions were optimized by an unusual method. An adsorption buffer containing 2.5 M NaCl and $1\%$ Tween 80 facilitated the adsorption of urokinase on the affinity media and prevented contaminants from binding to the p-aminobenzamidine affinity gel. It was found that $5\%$ Tween 80 removed most of the contaminants from the affinity column. A 0.2 M glycine elution buffer containing 0.5 M NaCl (pH 3.0) was found to have a strong elution ability with a high recovery and purity of urokinase. A crude urokinase material of231 IU/mg protein from human urine was purified to 124,300 IU/mg protein with a purification factor of 538 and yield of $86.7\%$. As a result, a high purity urokinase was obtained with only a single affinity chromatography step. The purification process was successfully scaled-up to a 2-1 chromatography column. The resulting urokinase eluate could be directly lyophilized, thereby complying with Chinese pharmacopoeia (1995 version) standards.
For the production and purification of a single chain human insulin precursor, four types of fusion peptides $\beta$-galactosidase (LacZ), maltose binding protein (MBP), glutathione-S-transferase (GST), and (His)(sub)6-tagged sequence (HTS) were investigated. Recombinant E. coli harboring hybrid genes was cultivated at 37$\^{C}$ for 1h, and gene induction occurred when 0.2mM of isopropyl-D-thiogalactoside (IPTG) was added to the culture broth, except for E. coli BL21 (DE3) pLysS harboring a pET-BA cultivation with 1.0mM IPTG, followed by a longer than 4h batch fermentation respectively. DEAE-Sphacel and Sephadex G-200 gel filtration chromatography, amylose affinity chromatography, glutathione-sepharose 4B affinity chromatography, and a nickel chelating affinity chromatography system as a kind of immobilized metal ion affinity chromatography (IMAC) were all employed for the purification of a single chain human insulin precursor. The recovery yields of the HTS-fused, GST-fused, MBP-fused, and LacZ-fused single chain human insulin precursors resulted in 47%, 20%, 20%, and 18% as the total protein amounts respectively. These results show that a higher recovery yield of the finally purified recombinant peptides was achieved when affinity column chromatography was employed and when the fused peptide had a smaller molecular weight. In addition the pET expression system gave the highest productivity of a fused insulin precursor due to a two-step regulation of the gene expression, and the HTS-fused system provided the highest recovery of a fused insulin precursor based on a simple and specific separation using the IMAC technique.
본 연구는 우유의 angiogenin(ANG) 생리활성기능을 조사하기 위한 전단계로 ANG 정제 방법을 확립하기 위하여 실시하였다. 우유로부터 ANG을 CM-Sepharose ion exchange chromatography, HPLC, Gel-filtration의 3단계 방법을 이용하여 정제하였다. 1단계인 CM-Sepharose ion exchange chromatography를 수행 한 결과 0.6 M NaCl 농도의 36번 분획에서 ANG의 밴드를 볼 수 있었고 2단계인 Mono-S 컬럼을 이용하여 HPLC를 수행한 결과에서는 1.0 M에서 하나의 peak가 분리되었고 전기영동 결과는 LF와 ANG 두 가지 성분이 함유되어 있음을 확인하였다. 마지막 단계인 Gel-filtration을 수행한 결과 ANG이 단일 밴드로 분리되었다. 우유 10 $\ell$로부터 약 80 ${\mu}\ell$의 ANG를 얻었고 정제된 ANG을 N-말단 아미노산 배열을 분석한 결과 AQDDYRYIHFLTQHY로 밝혀졌다.
ATP synthase produces ATP, a major energy source for metabolic processes in organisms, from ADP and inorganic phosphate in cellular membranes. ATP synthase is known as a rotary motor, in which the c-subunit ring functions as a rotor. In this work, we have tried to develop a more general preparation procedure of thermophilic $F_oc$-ring ($TF_oc$-ring) for NMR measurements. The expression of $TF_oF_1$ is easily affected by various experimental conditions such as temperature, shape and size of a flask, a volume of medium, and shaking rate of an incubator. Accordingly, we have tried to optimize the expression conditions of $TF_oF_1$. $TF_oc$-rings were purified from $TF_oF_1$ according to a reported method. We modified purification procedures to improve purity and yield of $TF_oc$. On top of them, we found a new combination of detergents for the purification at anion-exchange column chromatography. To examine the effect of lipid environments on the structure, the $TF_oc$-rings were reconstituted into two kinds of lipid bilayers, namely, saturated and unsaturated lipid ones. Then, we have compared characteristics of the $TF_oc$-ring structures in these membranes with solid-state NMR.
To isolate a calcium-binding peptide from chlorella protein hydrolysates, chlorella protein was extracted and hydrolyzed using Flavourzyme, a commercial protease. The degree of hydrolysis and calcium-binding capacity were determined using trinitrobenzenesulfonic acid and orthophenanthroline methods, respectively. The enzymatic hydrolysis of chlorella protein for 6 hr was sufficient for the preparation of chlorella protein hydrolysates. The hydrolysates of chlorella protein were then ultra-filtered under 5 kDa as molecular weight. The membrane-filtered solution was fractionated using ion exchange, reverse phase, normal phase chromatography, and fast protein liquid chromatography to identify a calcium-binding peptide. The purified calcium-binding peptide had a calcium binding activity of 0.166 mM and was determined to be 700.48 Da as molecular weight, and partially identified as a peptide containing Asn-Ser-Gly-Cys based on liquid chromatography/electrospray ionization tandem mass spectrum.
A plasmid vector, pXGPRMATG-lac-Tgx, was developed for overproduction of $\beta$-galactosidase in Escherichia coli using the genetic components of groEx, a heat-shock gene cloned from symbiotic X-bacteria in Amoeba proteus. The vector is composed of intragenic promoters P3 and P4 of groEx, the structural gene of lac operon, transcription tenninator signals of lac and groEx, and ColEl and amp'of pBluescript SKII. The optimized host, E. coli DH5$\alpha$, transfonned with the vector constitutively produced 117,310-171,961 Miller units of $\beta$-galactosidase per mg protein in crude extract. The amount of enzyme in crude extract was 53% of total water-soluble proteins. About 43% of the enzyme could be purified to a specific activity of 322,249 Miller units/mg protein after two-fold purification, using two cycles of precipitation with ammonium sulfate and one step of gel filtration. Thus, the expression system developed in this study presents a low-cost and simple method for purifying overproduced $\beta$-galactosidase in E. coli.
The gene ADH encoding NAD-dependent alcohol dehydrogenase from Bacillus stearothennophilus was cloned and overexpressed as a GST fusion protein at a high level in Escherichia coli. The expressed fusion protein was purified simply by glutathione affinity chromatography. GST fusion protein was then cleaved by thrombin, while soluble enzyme was further purified by glutathione affinity chromatography. The recombinant enzyme had the same elctrophoretic mobility as the native enzyme from Bacillus stearothennophilus. The recombinant enzyme catalyzed the oxidation of a number of alcohols and exhibited high activities towards secondary alcohols. The $K_m\;and\;V_{max}$ values of the recombinant enzyme for ethanol were 5.11 mM and 61.35 U/mg, respectively. Pyridine and imidazole notably inhibited the enzymatic activity. The activity of the recombinant enzyme optimally proceeded at pH 9.0 and $70^{\circ}C$. The midpoint of the temperature-stability curve for the recombinant enzyme was approximately $68^{\circ}C$, and the enzyme was not completely inactivated even at $85^{\circ}C$. The recombinant enzyme showed a high resistance towards denaturing agents (0.05% SDS, 0.1 M urea). Therefore, due to its stability and relatively broad substrate specificity, the recombinant enzyme could be utilized in bio-industrial processes and biosensors.
The objective of the present study was to investigate cloning, expression, and functions of the recombinant protein, Siva1. Siva1 gene was synthesized by RT-PCR from HCT116 cells. Plasmids were cleaved with the restriction endonuclease, BamH1/Sal1 and products were connected to pQE30, which underwent cleavage by BamH1/Sal1. The recombinant plasmid, pQE30-Siva1, was identified after digestion with restriction endonucleases followed by transformation into E. coli M15. Expression of Siva1 was induced by IPTG and identified by SDS-PAGE following purification with affinity chromatography. The results showed that size of Siva1 was 12 kDa, consistent with the molecular weight of the His-Siva1 fusion protein. Functional test demonstrated that Siva1 significantly inhibited the invasion and migration of HCT116 cells. It may thus find clinical application for control of cancers.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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