Influenza A virus is a single-stranded RNA virus with a genome of negative polarity. Owing to the antigenic diversity and cross concrete shift, an immense number of novel strains have developed astronomically over the years. The present work deals with the codon utilization partialness among five different influenza A viruses isolated from human hosts. All the subtypes showed the homogeneous pattern of nucleotide utilization with a little variation in their utilization frequencies. A lower bias in codon utilization was observed in all the subtypes as reflected by higher magnitudes of an efficacious number of codons. Dinucleotide analysis showed very low CpG utilization and a high predilection of A/T-ending codons. The H5N1 subtype showed noticeable deviation from the rest. Codon pair context analysis showed remarkable depletion of NNC-GNN and NNT-ANN contexts. The findings alluded towards GC-compositional partialness playing a vital role, which is reflected in the consequential positive correlation between the GC contents at different codon positions. Untangling the codon utilization profile would significantly contribute to identifying novel drug targets that will pacify the search for antivirals against this virus.
To characterize the prolamines in rice cultivars, the complete coding sequences of 17 prolamine genes from the database were analyzed. According to the phylogenic analysis of the sequences, these genes could be classified into 4 groups, Group I to IV. The multiple alignment of the deduced amino acid sequences revealed that the four groups differ from one another in chain length caused by deletion of short internal amino acids or carboxyl terminal fragments. Each group was also found to have different amino acid composition with 1, 4, 10 and 30% of sulfur containing amino acids (methionine and cysteine) in Group I to IV prolamines, respectively. Also the isoelectric points of these groups showed the different values of 9.2, 8.2, 6.7 and 7.4. Finally, from the analysis of codon usage pattern of prolamine genes, the codon usage for arginine, serine, threonine, isoleucine, asparagine, aspartic acid, glutamic acid and cysteine were higly biased. In the analysis of the codon usage pattern, the relation of the fraction of G/C ending codons to effective codon numbers suggests the different translational efficiency in the expression of the prolamine multigenes.
Lee, Da-Young;Graves, Michael V.;Van Etten, James L.;Choi, Tae-Jin
The Plant Pathology Journal
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v.21
no.4
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pp.334-342
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2005
The prototype Chlorella virus PBCV-l encodes 11 tRNA genes and over 350 protein-encoding genes in its 330 kbp genome. Initial attempts to overexpress the recombinant A189/192R protein, a putative virus attachment protein, in E. coli strain BL21(DE3) SI were unsuccessful, and multiple protein bands were detected on Western blots. However, the full-length A189/192R recombinant protein or fragments derived from it were detected when they were expressed in E. coli BL21 CodonPlus (DE3) RIL, which contains extra tRNAs. Codon usage analysis of the a189/192r gene showed highly biased usage of the AGA and AVA codons compared to genes encoded by E. coli and Chlorella. In addition, there were biases of XXA/U($56\%$) and XXG/ C($44\%$) in the codons recognized by the viral tRNAs, which correspond to the codon usage bias in the PBCV-1 genome of XXA/U ($63\%$) over those ending in XXC/G ($37\%$). Analysis of the codon usage in the major capsid protein and DNA polymerase showed preferential usage of codons that can be recognized by the viral tRNAs. The Asn (AAC) and Lys (AAG) codons whose corresponding tRNA genes are duplicated in the tRNA gene cluster were the most abundant (i.e., preferred) codons in these two proteins. The tRNA genes encoded in the PBCV-l genome seem to play a very important role during the synthesis of viral proteins through supplementing the tRNAs that are frequently used in viral proteins, but are rare in the host cells. In addition, these tRNAs would help the virus to adapt to a wide range of hosts by providing tRNAs that are rare in the host cells.
The arginine residue at position 243 (Arg 243) of the yeast transcription factor, Gcn4p, is invariably conserved among bZIP transcription factors. Using site-directed oligonucleotide saturation mutagenesis involving two-step polymerase chain reaction (PCR) amplification, random mutations were successfully introduced at the codon of 243 in the basic domain of Gcn4p. This mutant library was transformed ito Gcn4p defective yeast strain and selected for the transcriptionally active colonies. All colonies which were transcriptionally active had arginines in the codon 243. In this study, the strand preference by Taq polymerase during mutagenesis was also tested. Oligonucleotides were specially designed to test whether or not the polymerase was preferred using the strand as a template. A population of randomly mutated products were cloned into an appropriate vector and characterized by DNA sequencing analysis. Saturation mutagenesis which was performed efficiently by this method revealed a strong bias in terms of strand preference of Taq polymerase by an approximate ratio of 3 to 1 in this study.
Xylanase has been used extensively in the industrial and agricultural fields. However, the low-yield production of xylanase from native species cannot meet the increasing demand of the market. Therefore, improving the heterologous expression of xylanase through basic gene optimization may help to overcome the shortage. In this study, we synthesized a high-GC-content native sequence of the thermostable xylanase gene xynB from Streptomyces olivaceoviridis A1 and, also designed a slightly AT-biased sequence with codons completely optimized to be favorable to Pichia pastoris. The comparison of the sequences' expression efficiencies in P. pastoris X33 was determined through the detection of single-copy-number integrants, which were quantified using qPCR. Surprisingly, the high GC content did not appear to be detrimental to the heterologous expression of xynB in yeast, whereas the optimized sequence, with its extremely skewed codon usage, exhibited more abundant accumulation of synthesized recombinant proteins in the yeast cell, but an approximately 30% reduction of the secretion level, deduced from the enzymatic activity assay. In this study, we developed a more accurate method for comparing the expression levels of individual yeast transformants. Moreover, our results provide a practical example for further investigation of what constitutes a rational design strategy for a heterologously expressed and secreted protein.
To characterize glutelins, the most abundant storage protein in rice, 13 complete coding sequences of glutelin genes from the database were analyzed. According to the phylogenic analysis, these genes could be classified into 5 groups, Group I to V. The degrees of homology were calculated to be in the range of 90 to 60%, but the patterns of hydrophobicity were similar in all the groups. Also, each group was found to have similar amino acid composition with variations in lysine content from 2.5 to 3.6% due to the point mutation of arginine to lysine. The isoelectric points of mature proteins and their basic chains of all the groups showed the value of about 9.0 and 10.0, respectively, while the isoelectric points of acidic chains in these groups showed the distinct value of 6.6, 6.7, 7.2, 8.4 and 7.9. The plot of the fraction of G+C at synonimous site in codons (GC3s) against effective codon numbers suggest no major difference in translational efficiency in the expression of glutelin multigenes.
Using a methylotrophic yeast Hansenula polymorpha, a heterologous gene expression and secretion system was developed for the production of hEGF(human Epidermal Growth Factor) which has been shown to promote epithelial cell proliferation and to inhibit gastric acid secretion. The hEGF gene was chemically synthesized according to the preferred codon usage in H. polymor- pha and expressed under the control of the strong and inducible methanol oxidase(MOX) promoter. The mating factor $\alpha$ pre-pro leader sequence of Saccharomyces cerevisiae was employed for hEGF to be secreted into the extracellular medium. This expression cassette was stably integrated into the host chromosomal DNA. Mature hEGF was efficiently expressed and secreted into the extracel- lular medium. About 24 mg/l of hEGF was detected in the cuture supernatant of a transformant with pA-EGF3 under the suboptimal culture conditions.
Baeshen, Mohammed N.;Al-Hejin, Ahmed M.;Bora, Roop S.;Ahmed, Mohamed M. M.;Ramadan, Hassan A. I.;Saini, Kulvinder S.;Baeshen, Nabih A.;Redwan, Elrashdy M.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.25
no.7
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pp.953-962
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2015
Escherichia coli is the most preferred microorganism to express heterologous proteins for therapeutic use, as around 30% of the approved therapeutic proteins are currently being produced using it as a host. Owing to its rapid growth, high yield of the product, costeffectiveness, and easy scale-up process, E. coli is an expression host of choice in the biotechnology industry for large-scale production of proteins, particularly non-glycosylated proteins, for therapeutic use. The availability of various E. coli expression vectors and strains, relatively easy protein folding mechanisms, and bioprocess technologies, makes it very attractive for industrial applications. However, the codon usage in E. coli and the absence of post-translational modifications, such as glycosylation, phosphorylation, and proteolytic processing, limit its use for the production of slightly complex recombinant biopharmaceuticals. Several new technological advancements in the E. coli expression system to meet the biotechnology industry requirements have been made, such as novel engineered strains, genetically modifying E. coli to possess capability to glycosylate heterologous proteins and express complex proteins, including full-length glycosylated antibodies. This review summarizes the recent advancements that may further expand the use of the E. coli expression system to produce more complex and also glycosylated proteins for therapeutic use in the future.
Avian beta-defensin 9 (AvBD9) is a small cationic peptide consisting of 41 amino acids that plays a crucial rule in innate immunity and acquired immunity in chickens. Owing to its wide antibacterial spectrum, lack of a residue, and failure to induce bacterial drug resistance, AvBD9 is expected to become a substitute for conventional antibiotics in the livestock and poultry industries. Using the preferred codon of Pichia pastoris, the mature AvBD9 peptide was designed and synthesized, based on the sequence from GenBank. The P. pastoris constitutive expression vector pGHKα was used to construct a pGHKα-AvBD9 recombinant plasmid. Restriction enzyme digestion was performed using SacI and BglII to remove the ampicillin resistance gene, and the plasmid was electrotransformed into P. pastoris GS115. High-expression strains with G418 resistance were screened, and the culture supernatant was analyzed by Tricine-SDS-PAGE and western blot assay to identify target bands of about 6 kDa. A concentrate of the supernatant containing AvBD9 was used for determination of antimicrobial activity. The supernatant concentrate was effective against Escherichia coli, Salmonella paratyphi, Salmonella pullorum, Pseudomonas aeruginosa, Enterococcus faecalis, and Enterobacter cloacae. The fermentation product of P. pastoris carrying the recombinant AvBD9 plasmid was adjusted to 1.0 × 108 CFU/ml and added to the drinking water of white feather broilers at different concentrations. The daily average weight gain and immune organ indices in broilers older than 7 days were significantly improved by the AvBD9 treatment.
Lu, Wenwei;Zhang, Weiqiong;Bai, Yan;Fu, Yingying;Chen, Jun;Geng, Xiaolu;Wang, Yujing;Xiao, Ming
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.20
no.2
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pp.281-286
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2010
A Pseudomonas fluorescens strain was isolated and found to show antagonistic activity against phytopathogenic fungi and to possess a gene responsible for production of antibiotic 2,4-diacetylphloroglucinol. For the extension of biocontrol range, a gene for an Androetonus australis Hector insect toxin 1 (AaHIT1), one of the most known toxic insect-selective peptides, was designed and synthesized according to the preferred codon usage of Pseudomonas fluorescens, cloned, and transformed into the strain by pSUP106 vector, a broad-host-range plasmid. Bioassays indicated that the engineered strain was able to produce AaHIT1 with insecticidal activity, and at the same time retain the activity against plant pathogen. The experiments for nonplanted soil and rhizosphere colonization showed that, similar to the population of the wild-type strain, that of the engineered strain remained relatively constant in the first 10 days, and the subsequent 50 days, suggesting that AaHIT1 expression in the bacterial cell does not substantially impair its long-term colonization. It is first reported that a Pseudomonas fluorescens strain expressing an active scorpion neurotoxin has dual activity against phytopathogenic fungi and insects, making at attractive for agronomic applications.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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