Periodontopathogens including Porphyromonas gingivalis interact with host periodontal cells and the excessive subsequent host responses contribute a major part to the development of periodontal diseases. Cyclooxygenase(COX)-2-synthesized $PGE_2$ has detrimental activities in terms of periodontal pathogenesis. The present study investigated induction of COX-2 expression by P. gingivalis in human monocytic THP-1 cells. Live P. gingivalis increased expression of COX-2, but not that of COX-1, which was demonstrated at both mRNA and protein levels. Elevated levels of $PGE_2$ were released from P. gingivalis-infected THP-1 cells. Pharma-cological inhibition of p38 mitogen-activated protein kinase(MAPK) and extracellular signal-regulated kinase(ERK) substantially attenuated P. gingivalis-induced COX-2 mRNA expression. Indeed, activation of p38 MAPK and ERK was observed in P. gingivalis-infected THP-1 cells. Also, P. gingivalis induced activation of nuclear $factor-{\kappa}B\;(NF-{\kappa}B)$ which is an important transcription factor for COX-2. These results suggest that COX-2 expression is up regulated in P. gingivalis-infected monocytic cells, at least in part, via p38 MAPK, ERK, and $NF-{\kappa}B$.
P. gingivalis has been implicated as a strong pathogen in periodontal disease and known to have three serotypes of P. gingivalis. The purpose of this study is to investigate on the relationship between virulence, metabolic acids and genetic heterogeneity of P. gingivalis. P. gingivalis W50 standard strain and five strains of P. gingivalis serotype b Korean isolates were used in this study. For in vitro virulence test, lyophilized whole cell P. gingivalis were suspended, and sonicated with ultrasonic dismembranometer. Sonicated samples were applied to cultured cells derived from periodontal ligament, and cell activity was assayed with growth and survival assay. The metabolic acids were also extracted, and determined by High Performance Liquid Chromatography. Pst I-digested bacterial genomic DNA was electrophoresed, and densitometric analysis was performed to study the genetic heterogeneity. All of the P. gingivalis serotype b produced butyric acid. In cell activity study, butyric acid inhibited the cell activity irrespective of its concentration. Densitometric analysis showed restriction fragment length polymorphism. These results suggested that there existed heterogeneity of the metabolic acids and the virulence of P. gingivalis and such heterogeneity might be related to genetic heterogeneity.
Since periodontal infections are suggested as risk factors for the development of cardiovascular diseases, the present study was performed to evaluate the T cell immune responses specific to Pophylomonas gingivalis(P. gingivalis) heat shock protein(hsp) 60 and T-cell and B-cell epitope specificities for P. gingivalis hsp60 in atherosclerosis. Anti-P, gingivalis IgG antibody titers were elevated in all patients. We could establish P. gingivalis hsp-specific T cell lines from the atheroma lesions, a mixture of $CD4^+$ and $CD8^+$ cells producing the cytokines characteristic of both Th1 and Th2 subsets. of 108 overlapping synthetic peptides spanning whole P. gingivalis hsp60 molecule, ten peptides with common epitopes specificities for both T-cell and B-cell were identified. it was concluded that P. gingivalis hsp60 might K involved in the immunoregulatory process of atherosclerotic diseases with epitope specificities.
Cyclooxygenase-2 (COX-2)-mediated prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$) plays a key role in development and progression of inflammatory responses and Porphyromonas gingivalis is a common endodontic pathogen. In this study, we investigated induction of COX-2 and $PGE_2$ by P. gingivalis in human dental pulp cells (HDPCs). P. gingivalis increased expression of COX-2, but not that of COX-1. Increased levels of $PGE_2$ were released from P. gingivalis-infected HDPCs and this $PGE_2$ increase was blocked by celecoxib, a selective COX-2 inhibitor. P. gingivalis activated all three types of mitogen-activated protein kinases (MAPKs). P. gingivalis-induced activation of nuclear $factor-{\kappa}B$ ($NF-{\kappa}B$) was demonstrated by the results of phosphorylation of $NF-{\kappa}B$ p65 and degradation of inhibitor of ${\kappa}B-{\alpha}$ ($I{\kappa}B-{\alpha}$). Pharmacological inhibition of each of the three types of MAPKs and $NF-{\kappa}B$ substantially attenuated P. gingivalis-induced $PGE_2$ production. These results suggest that P. gingivalis should promote endodontic inflammation by stimulating dental pulp cells to produce $PGE_2$.
Purpose: Porphyromonas gingivalis and Tannerella forsythia have been implicated as the major etiologic agents of periodontal disease. These two bacteria are frequently isolated together from the periodontal lesion, and it has been suggested that their interaction may increase each one's virulence potential. The purpose of this study was to identify proteins on the surface of these organisms that are involved in interbacterial binding. Methods: Biotin labeling of surface proteins of P. gingivalis and T. forsythia and liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) analysis was performed to identify surface proteins involved in the coaggregating activity between P. gingivalis and T. forsythia. Results: It was found that three major T. forsythia proteins sized 161, 100, and 62 kDa were involved in binding to P. gingivalis, and P. gingivalis proteins sized 35, 32, and 26 kDa were involved in binding to T. forsythia cells. Conclusions: LC-MS/MS analysis identified one T. forsythia surface protein (TonB-linked outer membrane protein) involved in interbacterial binding to P. gingivalis. However, the nature of other T. forsythia and P. gingivalis surface proteins identified by biotin labeling could not be determined. Further analysis of these proteins will help elucidate the molecular mechanisms that mediate coaggregation between P. gingivalis and T. forsythia.
Porphyromonas gingivalis, a Gram negative, anaerobic, asaccharolytic rod, is one of the most frequently implicated pathogens in human periodontal disease and has a requirement for hemin for growth. A 30 kDa (heated 24 kDa) hemin-binding protein whose expression is both hemin and iron regulated has recently been purified and characterized in this oral pathogen. This study has identified a hemin-binding P. gingivalis protein by expression of a P. gingivalis genomic library in Escherichia coli, a bacterium which does not require or transport exogenous hemin. A library of genomic DNA fragments from P. gingivalis was constructed in plasmid pUC18, transformed into Escherichia coli strain $DH5{\alpha}$ , and screened for recombinant clones with hemin-binding activity by plating onto hemin-containing agar. Of approximately 10,000 recombinant E. coli colonies screened on LB-amp-hemin agar, 10 exhibited a clearly pigmented phenotype. Each clone contained various insert DNA. The Hind III fragment transferred to the T7 RNA polymerase/promoter expression vector system produced a sligltly smaller (21 kDa) protein, a precursor form, immunoreactive to the antibody against the 24 kDa protein, suggesting that the cloned DNA fragment probably carried an entire gene for the 24 kDa hemin-binding protein.
본 연구는 치주질환 주요 병인균주 중의 하나인 Porphyromonas gingivalis의 세균내독소가 마우스 대식 세포주인 RAW264.7 세포에서의 nitric oxide의 생성과 iNOS의 발현에 미치는 영향을 분석하고 그 기전을 규명하기 위해 수행되었다. Butanol추출법과 phenol-water법에 의해 P. gingivalis 381로부터 세균내독소를 추출하였으며, NO의 생성은 배양 상층액 내의 nitrite 농도를 측정하여 결정하였다. 또한, iNOS의 western blot 분석과 reverse transcription (RT)-PCR 산물의 분석을 수행하였다. P. gingivalis의 세균내독소는 부가적인 자극이 없는 상태에서도 iNOS의 발현과 NO 생성을 유발하였으며, NF- ${\kappa}B$, microtubule polymerization, protein tyrosine kinase, 그리고 protein kinase C 등이 P. gingivalis 세균내독소에 의한 NO 생성에 간여하는 것으로 여겨진다. 또한, P. gingivalis 세균내독소에 의한 NO 생성에는 L-arginine이 요구되었다. P. gingivalis 세균내독소에 의한 NO 생성은 염증성 치주질환의 발병과 진행에 있어 중요한 역할을 하는 것으로 여겨진다.
This study was carried out to examine the potency of the three surface compo- nents from Porphyromonas gingivalis to stimulate the murine macrophage cell line RAW264.7 to synthesize the pro-inflammatory cytokine tumor necrosis factor alpha($TNF-{\alpha}$) and nitric oxide (NO). Lipopolysaccharide(LPS). lipid A-associated proteins(LAP) and saline-extractable surface -associated material(SAM) were isolated from P. gingivalis 381. $TNF-{\alpha}$ release into culture supernatants was determined by two-site ELISA. NO production was assayed by measuring the accumulation of nitrite in culture supernatants. Western blot analysis of iNOS and analysis of reverse transcription(RT)-PCR products were carried out. The surface components extracted from this bacterium were almost equally potent in stimulating release of $TNF-{\alpha}$ and NO by RAW264.7 cells. $TNF-{\alpha}$ that was being measured immunologically was due to activation of $TNF-{\alpha}$ gene transcription. The present study clearly shows that P. gingivalis surface components fully induced iNOS expression in RAW264.7 cells in the absence of other stimuli. The ability of P. gingivalis surface components to promote the production of $TNF-{\alpha}$ and NO may be important in the pathogenesis of inflammatory periodontal disease.
Kim, So-Hee;Jung, Ji-Yeon;Kim, Won-Jae;Kim, Ok-Joon;Kim, Young;Kang, In-Chol
International Journal of Oral Biology
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제46권3호
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pp.99-104
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2021
Associations between periodontal infection and cardiovascular disease have been documented. Porphyromonas gingivalis is a well-established periodontal pathogen, and tissue factor (TF) is a key initiator of the coagulation cascade. In this context, P. gingivalis has been reported to enhance TF expression in human endothelial cells. The present study investigated the underlying mechanisms of TF induction by P. gingivalis in human umbilical vein endothelial cells. P. gingivalis increased TF expression in a dose- and time-dependent manner. Not only live bacteria but also glutaraldehyde-fixed bacteria increased TF expression to the same extent. However, sonicates of P. gingivalis did not induce TF expression. Cytochalasin D and SMIFH2, which are inhibitors of actin polymerization and actin nucleation, respectively, inhibited the TF expression induced by P. gingivalis. Finally, TF production was decreased or increased in the presence of various signaling inhibitors, including mitogen-activated protein kinases. These results suggest that P. gingivalis induces endothelial TF expression by a bacterial internalization-dependent mechanism and through diverse signal transduction mechanisms.
Purpose: The aim of this study was to observe a direct effect of irradiation on the periodontopathic Porphyromonas gingivalis (P. gingivalis). Materials and Methods: P. gingivalis 2561 was exposed to irradiation with a single absorbed dose of 10, 20, 30, and 40Gy. Changes in viability and antibiotic sensitivity, morphology, transcription, and protein profile of the bacterium after irradiation were examined by pour plating method, disc diffusion method, transmission electron microscopy, RT-PCR, and immunoblot, respectively. Results: Viability of irradiated P. gingivalis drastically reduced as irradiation dose was increased. Irradiated P. gingivalis was found to have become more sensitive to antibiotics as radiation dose was increased. With observation under the transmission electron microscope, the number of morphologically abnormal cells was increased with increasing of irradiation dose. In RT-PCR, decrease in the expression of fimA and sod was observed in irradiated P. gingivalis. In immunoblot, change of profile in irradiated P. gingivalis was found in a number of proteins including 43-kDa fimbrillin. Conclusion: These results suggest that irradiation may affect the cell integrity of P. gingivalis, which is manifested by the change in cell morphology and antibiotic sensitivity, affecting viability of the bacterium.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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