Biologically active porcine Interleukin-2(poIL-2) was produced from in vitro and in viva baculovirus expression system, namely the Autographa californica nuclear polyhedrosis virus (ACNPV)-cell culture system and the Hybrid nucler polthedrosis virus (HyNPV)-sillkworm larva system. The concentration of the recombinant poIL-2(rpoIL-2) in the larvae hemolymph was 1 to 3 mg/mL, which was about 7 to 20 times those of the cell culture systems. The level of this expression efficiency is equal to that with transgenic livestock, secretion products in milk.
Ochratoxin A (OTA) is a well-known mycotoxin that causes disease through the ingestion of contaminated food or feed, for example, in the porcine industry. The intestinal epithelium acts as the first barrier against food contamination. We conducted a study on the exposure of the porcine intestinal epithelium to OTA. We used the intestinal porcine epithelial cell line IPEC-J2 as an in vitro model to evaluate the altered molecular mechanisms following OTA exposure. Gene expression profiling revealed that OTA upregulated 782 genes and downregulated 896, totalling 1678 differentially expressed genes. Furthermore, immunofluorescence, quantitative real-time polymerase chain reaction, and western blotting confirmed that OTA damages the tight junction protein ZO-1. Moreover, OTA activated the expression of inflammatory genes (IL-6, IL-8, IL-10, NF-kB, TLR4, and TNF-α). In summary, this study confirmed that OTA alters various molecular mechanisms and has several adverse effects on IPEC-J2 cells.
Fucoidan increases the chemotactic activity of peripheral blood polymorphonuclear cells (PMNs) through interleukin (IL)-8 produced by peripheral blood mononuclear cells (PBMCs). It has been demonstrated that fucoidan can regulate the chemotaxis of PMNs by activating F-actin polymerization. The objectives of this study are to investigate the direct effect of fucoidan on the chemotaxis of porcine PMNs and to examine whether this effect is associated with changes in phosphoinositide 3-kinase (PI3K) activity. The chemotactic activity of porcine PMNs was evaluated by modified Boyden chamber assay. Akt phosphorylation activity, a main downstream of PI3K, was measured by Western blotting assay. Fucoidan itself has no chemoattractant effect for PMNs. However, direct treatment of PMNs with fucoidan showed higher chemotactic activity to porcine recombinant (pr) IL-8 than that of PMNs without fucoidan. The increased chemotactic activity of fucoidan-treated PMNs to pr IL-8 was suppressed by treatment of wortmannin, an inhibitor of PI3K. Treatment of PMNs with fucoidan also increased Akt phosphorylation level. This increase was also suppressed by wortmannin. These results suggested that fucoidan can upregulate chemotactic activity of porcine PMNs to IL-8, which is associated with PI3K activation.
Porcine respiratory disease complex (PRDC) is a common respiratory disease in nursery and grow-finishing pigs. A complex of viral and bacterial agents is known to be involved in the etiology of PRDC. The purpose of this study was to investigate common etiologic agents associated with PRDC in the field and compare detection methods for identifying these agents. To understand the mechanism of polymicrobial infection in PRDC, changes in the expression of cytokines were investigated. In 461 pig samples examined, most of the affected pigs ranged from 3 to 10 weeks old (73.4%), and 348 (75.4%) samples were confirmed as polymicrobial infection. Of the polymicrobial-infected cases, two (50.3%), three (32.2%), four (13.8%), five (3.2%), and six (0.5%) agents were detected. Two- or three-agent infections were the most common, with PRRSV/PCV-2 (44.6%) the most common two-agent infection. PRRSV/PCV-2/H. parasuis (11.0%) was the most common three-agent infection. Comparison of two detection methods (PCR and IHC) in the polymicrobial cases showed that 78.4% were PCV-2 positive with the PCR method, and 26.2% were PCV-2 positive with IHC. SIV was 7.8% by the PCR method and 3.7% positive by the IHC. This result indicates that the PCR method is more useful than IHC for detecting causative agents in PRDC. In the analysis of cytokines in the two- and three-agent infected samples, interleukin (IL)-$1{\alpha}$, IL-2, IL-4, IL-6, IL-10, and INF-${\alpha}$ showed the same expression pattern. All cytokines were suppressed, except IL-6. These findings indicate that changes in cytokine expression could be used to understand the mechanism of polymicrobial infection in PRDC.
This study was carried out to investigate the pathogenesis and pathogenicity of the porcine circovirus type 2 (PCV2) Korean isolate from weaned pigs. Twenty four weaned pigs, PCV2, porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) and porcine parvovirus (PPV) antibodies free, were allocated to 4 groups (n = 6). Six pigs were inoculated intranasally with PCV2 alone, 6 with PCV2 and PRRSV, 6 with the combined PCV2/PRRSV/PPV inoculum, and 6 were remained as a uninoculated negative control. Pigs were killed 3 and 6 weeks after inoculation and tissue samples examined for gross and microscopic lesions and for the presence of PCV2 antigens and nucleic acids. Experimentally inoculated pigs were evaluated for 3 considerations: 1. development of postweaning multisystemic wasting syndrome (PMWS), 2. distribution of viral antigens by immunohistochemistry and polymerase chain reaction (PCR), and 3. cytokine mRNA levels in lymph nodes. Pigs inoculated with PCV2/PRRSV/PPV showed typical clinical signs, gross findings, and histopathologic characteristics of PMWS. In the PCV2/PRRSV/PPV inoculated group, the PCV2 antigen was widely distributed in various parenchymal organs such as brain, spinal cord, tonsil, lymph nodes, lung, heart, liver, kidney, spleen, and peyer's patch. Lymph node mRNA expression of IL-$1{\alpha}$, IL-2R and IL-8 was determined by real-time PCR. The pigs of PCV2/PRRSV and PCV2/PRRSV/PPV inoculation group, the mRNA expression was characterized by a decrease of IL-$1{\alpha}$, IL-2R and IL-8. The decrease of cytokine mRNA represent the state of T cell immuno-suppression in pig, and nicely support the evidence for the impairment of immune system in pigs with PMWS. In conclusion, PCV2 infection and some additional infectious causes such as PRRSV and/or PPV are warranted for the presence of PMWS in weaned pigs in Korea.
Background: Porcine parvovirus (PPV) is a single-stranded DNA virus that causes porcine reproductive failure. It is of critical importance to study PPV pathogenesis for the prevention and control of the disease. NS1, a PPV non-structural protein, is participated in viral DNA replication, transcriptional regulation, and cytotoxicity. Our previous research showed that PPV can activate nuclear factor kappa B (NF-κB) signaling pathway and then up-regulate the expression of interleukin (IL)-6. Objectives: Herein, the purpose of this study is to determine whether the non-structural protein NS1 of PPV also has the same function. Methods: Real-time quantitative reverse transcription polymerase chain reaction (RT-qPCR), enzyme-linked immunosorbent assay, western blot, immunofluorescence assay and small interfering RNA (siRNA) were used. Results: Our findings demonstrated that PPV NS1 protein can up-regulate the expression levels of IL-6 and tumor necrosis factor-alpha in a dose-dependent manner. Moreover, PPV NS1 protein was found to induce the phosphorylation of IκBα, then leading to the phosphorylation and nuclear translocation of NF-κB. In addition, the NS1 protein activated the upstream pathways of NF-κB. Meanwhile, TLR2-siRNA assay showed TLR2 plays an important role in the activation of NF-κB signaling pathway induced by PPV-NS1. Conclusions: These findings indicated that PPV NS1 protein induced the up-regulated of IL-6 expression through activating the TLR2 and NF-κB signaling pathways. In conclusion, these findings provide a new avenue to study the innate immune mechanism of PPV infection.
Nickel is a nutritionally essential trace element that plays an important role in the immune system of several animal species. The aim of this study was to examine the effect of nickel chloride on chemotactic activity of peripheral blood polymorphonuclear cells (PMNs) and whether this effect is associated with interleukin (IL)-8 and a nuclear factor-kappa B (NF-κB)-dependent pathway. Peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) and PMNs were isolated by Percoll solution (Specific gravity; 1.080) and 1.5% dextran treatment, respectively. A modified Boyden chamber assay was used to measure the chemotactic activity of PMNs. The level of IL-8 in culture supernatant from PBMCs was measured by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Both of PBMCs and PMNs exhibited a low viability when cultured with concentration of greater than 1,000 μM of nickel chloride for 24 h. Thus, nickel chloride was used at concentration of 500 μM, which preserved cell viability. Treatment with nickel did not directly affect the chemotactic activity of PMNs. However, the chemotactic activity of PMNs was remarkably increased by culture supernatant from PBMCs treated with nickel chloride (500 μM) for 24 h. Recombinant porcine IL-8 polyclonal antibody (pAb) neutralized the enhancing effect on the chemotactic activity of PMNs by culture supernatant from PBMCs treated with nickel and this culture supernatant had higher IL-8 levels than the culture supernatant from untreated PBMCs. In addition, n-tosyll-phenylalanine chloromethyl ketone (TPCK), a NF-κB inhibitor, antagonized the enhancing effect on the chemotactic activity of PMNs by the culture supernatant from PBMCs treated with nickel. These results suggested that nickel stimulates porcine PBMCs to produce IL-8, which increases the chemotaxis of PMNs via NF-κB-dependent pathway.
Lin, Tao;Sun, Ling;Lee, Jae Eun;Kim, So Yeon;Jin, Dong Il
Journal of Animal Science and Technology
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v.63
no.5
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pp.984-997
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2021
This study sought to evaluate DNA damage and repair in porcine postovulatory aged oocytes. The DNA damage response, which was assessed by H2A.X expression, increased in porcine aged oocytes over time. However, the aged oocytes exhibited a significant decrease in the expression of RAD51, which reflects the DNA damage repair capacity. Further experiments suggested that the DNA repair ability was suppressed by the downregulation of genes involved in the homologous recombination (HR) and nonhomologous end-joining (NHEJ) pathways. The expression levels of the cell cycle checkpoint genes, CHEK1 and CHEK2, were upregulated in porcine aged oocytes in response to induced DNA damage. Immunofluorescence results revealed that the expression level of H3K79me2 was significantly lower in porcine aged oocytes than in control oocytes. In addition, embryo quality was significantly reduced in aged oocytes, as assessed by measuring the cell proliferation capacity. Our results provide evidence that DNA damage is increased and the DNA repair ability is suppressed in porcine aged oocytes. These findings increase our understanding of the events that occur during postovulatory oocyte aging.
Quan, Yan Shi;Naruse, Kenji;Choi, Su-Min;Kim, Myung-Youn;Han, Rong-Xun;Park, Chang-Sik;Jin, Dong-Il
Reproductive and Developmental Biology
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v.32
no.4
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pp.249-253
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2008
Interspecies somatic cell nuclear transfer (iSCNT) is a valuable tool for studying the interactions between an oocyte and somatic nucleus. The object of this study was to investigate the developmental competence of in vitro-matured porcine oocytes after transfer of the somatic cell nuclei of 2 different species (goat and rabbit). Porcine cumulus oocytes were obtained from the follicles of ovaries and matured in TCM-199. The reconstructed embryos were electrically fused with 2 DC pulses of 1.1kV/cm for $30{\mu}s$ 0.3M mannitol medium. The activated cloned embryos were cultured in porcine zygote medium-3 (PZM-3), mSOF or RDH medium for 7 days. The blastocyst formation rate of the embryos reconstructed from goat or rabbit fetal fibroblasts was significantly lower than that of the embryos reconstructed from porcine fetal fibroblast cells. However, a significantly higher number of embryos reconstructed from goat or rabbit fetal fibroblasts cultured in mSOF or RDH, respectively, developed to the morular stage than those cultured in PZM-3. These results suggest that goat and bovine fetal fibroblasts were less efficacious than porcine-porcine cloned embryos and that culture condition could be an important factor in iSCNT. The lower developmental potential of goat-porcine and porcine-bovine cloned embryos may be due to incompatibility between the porcine oocyte cytoplasm and goat and bovine somatic nuclei.
Kim, Ju-hyang;Chung, Chung-soo;Lee, Chul-young;Yang, Mhan-pyo
Journal of Veterinary Clinics
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v.20
no.1
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pp.1-6
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2003
Immunoenhancing effects of conjugated linoleic acid (CLA) isomers (l0t-l2c CLA, 9c-11t CLA, CLA mixture, 9c-11c CLA and 9t-11t CLA) on chemotactic activity of porcine peripheral blood polymorphonuclear cells (PMN) were examined. The chemotactic activity of PMN was evaluated by a modified Boyden chamber assay. CLA isomers at higher concentration of 50 to 200$\mu$M exhibited a low viability of cells by trypan blue exclusion. CLA isomers were used at concentration of 20uM showing no cytotoxic effect and high cell viability. CLA isomers themselves were not active or slight chemotactic for PMN. But culture supernatant from mononuclear cells (MNC) treated with 10t-12c CLA, 9c-11t CLA and CLA mixture except for 9c-11c. CLA and 9t-11t CLA enhanced remarkably chemotactic activity or porcine PMN PMN migration by culture supernatant from MNC treated with CLA mixture was found to be true chemotaxis by checkboard assay. This migration was also induced by porcine recombinant interleukin (rIL)-8. PMN chemotaxis caused both culture supernatant from MNC treated with CLA mixture and porcine rIL-8 was inhibited in a dose-dependent manner by addition of anti-porcine IL-8 polyclonal antibody. Therefore, these results strongly suggested that CLA (10t-12c CLA, 9c-11t CLA and CLA mixture) could stimulate porcine MNC to release and IL-8 like chemotactic activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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