Rajapaksha, W.R.A.K.J.S.;Thilakaratne, I.D.S.I.P.;Chandrasiri, A.D.N.;Niroshan, T.D.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.16
no.7
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pp.1046-1048
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2003
A polymerase chain reaction (PCR) assay was developed to differentiate buffalo meat from the meat of Ceylon spotted deer (Axis axis ceylonensis), Ceylon sambhur (Cervus unicolor unicolor), cattle (Bovine), goat (Caprine), pig (Porcine), and sheep (Ovine). A set of primers were designed according to the sequence of the mitochondrial cytochrome b gene of bubalus bubalis and by PCR amplification a band of approximately 242 bp band was observed with buffalo DNA. These primers did not cross-react with DNA of other animal species tested in the study under the specified reaction conditions. A band of 649 bp was observed for all animal species tested when DNA was amplified with the universal primers indicating the presence of mitochondrial DNA in the samples. The technique was sensitive enough to identify rotten (10 days post slaughter), dried and cooked buffalo meat. The absence of a cross reaction with human DNA using the buffalo specific primers eliminates possible false positive reactions.
AMP-activated protein kinase alpha 2 (PRKAA2) plays a key role in regulation of fatty acid and cholesterol metabolism. This study investigated the porcine PRKAA2 gene as a positional candidate for intramuscular fat and backfat thickness traits in pig chromosome 6. A partial fragment of the porcine PRKAA2 gene, amplified by PCR, contained a putative intron 3 including a part of exon 3 and 4, comparable with that of human PRKAA2 gene. Within the fragment, several single nucleotide polymorphisms were identified using multiple sequence alignments. Of these, TaqI restriction enzyme polymorphism was used for genotyping various pig breeds including Korean reference family. Using linkage and physical mapping, the porcine PRKAA2 gene was mapped in the region between microsatellite markers SW1881 and SW1680 on chromosome 6. Allele frequencies were quite different among pig breeds. The full length cDNA of the porcine PRKAA2 (2,145 bp) obtained by RACE containing 1,656 bp open reading frame of deduced 552 amino acids, had sequence identities with PRKAA2 of human (98.2%), rat (97.8%), and mouse (97.5%). These results suggested that the porcine PRKAA2 is a positional candidate gene for fat deposition trait at near telomeric region of the long arm of SSC 6.
Proceedings of the Korean Society of Embryo Transfer Conference
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2002.11a
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pp.73-73
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2002
Nuclear transfer (NT) techniques have advanced in the last years, and cloned animals have been produced by using somatic cells in several species including pig. However, it is difficult that the nuclear transfer porcine embryos development to blastocyst stage overcoming the cell block in vitro. Abnormal segregation of chromosomes in nuclear transferred embryos on genome activation stage bring about embryo degeneration, abnormal blastocyst, delayed and low embryo development. Thus, we are evaluated that the correlations of the frequency of embryo developmental rates and chromosome aberration in NT and In viかo fertilization (IVF) derived embryo. We are used for ear-skin-fibroblast cell in NT. If only karyotyping of embryonic cells are chromosomally abnormal, they may difficultly remain undetected. Then, we evaluate the chromosome aberrations, fluorescent in situ hybridization (FISH) with porcine chromosome 1 submetacentric specific DNA probe were excuted. In normal diploid cell nucleus, two hybridization signal was detected. In contrast, abnormal cell figured one or three over signals. The developmental rates of NT and IVF embryos were 55% vs 63%, 32% vs 33% and 13% vs 17% in 2 cell, 8 cell and blastocyst, respectively. When looking at the types of chromosome aberration, the detection of aneuploidy at Day 3 on the embryo culture. The percentage of chromosome aneuploidy of NT and IVF at 4-cell stage 40.0%, 31.3%, respectively. This result indicate that chromosomal abnormalities are associated with low developmental rate in porcine NT embryo. It is also suggest that abnormal porcine embryos produced by NT associated with lower implantation rate, increase abortion rate and production of abnormal fetuses.
The objective of this study was to examine the effect of thymidine treatment during $in$$vitro$ maturation (IVM) of porcine follicular oocytes on blastocyst development. Porcine oocytes were treated with thymidine (10 mM, 20 mM and 30 mM) for 2 or 6 hr in the preiods of IVM I and/or II. The survival rates of the blastocysts in the 6 hr treatment groups of 10 mM and 20 mM during IVM I period were significantly higher than those of control group ($p$<0.05). However, the survival rate of the blastocysts in the 2 hr treatment group of 20 mM during IVM II period was significantly higher than control group ($p$<0.05). Furthermore, the survival rate of the blastocysts in the 6 hr treatment group of 30 mM during IVM II period was significantly lower than control group ($p$<0.05). Consistent with the previous result, blastocyst development of both IVM I and II treatment group was also showed as similar pattern. Total and apoptotic cell numbers of blastocysts derived from thymidine treated porcine oocytes were examined by using Tunel assay. The results showed that there was no significant differences in total cell number of blastocysts between thymidine treated and untreated groups. However, apoptosis-positive cells in the thymidine treated group (6 hr IVM I) were significantly lower than those of other groups ($p$<0.05). Taken together, these results indicate that high quality oocytes were selected by DNA synthesis mechanism according to high concentration thymidine treatment during porcine oocyte maturation. Therefore, we concluded that presumptive selected oocytes by thymidine treatment during maturation periods improved the further embryo development and embryonic quality of IVF embryos by decreasing the incidence of apoptosis in preimplantation porcine embryos.
Sperm-mediated DNA transfer has a potential to markedly simplify techniques for the generation of transgenic animals. The exogenous DNA transfer by intracytoplasmic sperm injection (ICSI) procedure has been recently introduced in the production of transgenic animals. In this study, the developmental competence and tile expression rates of transgene were investigated after injection of spermatozoon or sperm head with enhanced green fluorescent protein (EGFP) gene into the mature porcine oocytes. The porcine oocytes were injected with intact sperm, membrane-disrupted sperm or sperm head. After injection. embryos were cultured in NCSU23 medium up to the blastocyst stage, and the developmental competence and expression rates were studied. The developmental rate (67.0%) of sperm injection group was higher than that (59.7%) of sperm head injection group, and the rates of EGFP expression were also significantly different between sperm injection and sperm head injection groups (42.1 vs 20.0%) (F<0.05). In the porcine oocytes injected with sperm treated with different methods of membrane disruption, the removal of sperm membrane did not alter the developmental competence of embryos. The rate of blastocysts at 7 days after injection with intact and membrane disrupted sperm were 15.0 and 14.2%, respectively. The EGFP expression rates, 38.4% in embryos injected with frozen-thawed sperm was higher than that, 22.4% of embryos injected with the Triton X-100 treated sperm. Prior to injection, sperm were cultured in different EGFP gene concentrations from 0.Ol to 1ng/u${mu}ell$. However, no significant difference in developmental rates of embryos among different concentrations of EGFP gene were observed. The highest expression rate of EGFP gene, 37.4% was obtained from the embryos injected with spermatozoa treated with 0.1 ng/${mu}ell$ EGFP gene. These results suggested that exogenous DNA could be attached to the membrane disrupted sperm, and that these sperm could be used as a vector carrying foreign DNA into embryos.
This study was conducted to detect the toxoplasma specific-DNA in circulating blood and organs collected from slaughtered pigs at slaughtering house and experimentally infected pigs with Toxoplasma gondii tachyzoites by polymerase chain reaction(PCR), and also PCR was applied to diagnose for acute phase of swine toxoplasmosis as a newly developed diagnostic test. The sensitivity of oligonucleotide primer, T-1 & T-2, designed from toxoplasma B1 gene amplification method was compared with Tp parasite detection by mouse inoculation(MI). On the other hand, latex agglutination test(LAT) was conducted to detect the serum antibodies comparing with the detection of toxoplasma by PCR and MI. The results obtained were summarized as follows. PCR was able to determine at the lowest level of $10^0/ml$ T. gondii in blood samples which were blended with a serial diluted T gondii in vitro. On the other hand, $10^2/5g$ of T gondii could detect from a variety of tissues including lung, diaphragm, liver, heart, spleen and brain in vitro. The primer was proved to specifically determine T gondii in blood and tissues in vitro but it did not detect Neospora caninum used as a negative control. DNA of T. gondii was effectively extracted by freezing, thawing and grinding twice both tissues mixed with T gondii in vitro and in experimentally infected pig's tissues. PCR detected specific DNA in the blood of experimentally infected pigs at 108 hrs and 120 hrs post-infection, it was the same time that the pigs showed fever and parasitaemia. In case of tissue, specific DNA was, however, detected only lung from experimentally infected pigs. Even though the duration of acute phase was from 3 to 7 days post-infection, but the latex agglutination test (LAT) results appeared from 8 days post-infection. A comparison of sensitivity in determining T gondii in blood samples between PCR and MI, PCR positive rate ranged from 25 to 33.3%, but that of MI covered from 75 to 100%.
In this study, a DNA-launched reverse genetics system was developed from a type 2 porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) strain, KNU-12. The complete genome of 15,412 nucleotides was assembled as a single cDNA clone and placed under the eukaryotic CMV promoter. Upon transfection of BHK-tailless pCD163 cells with a full-length cDNA clone, viable and infectious type 2 progeny PRRSV were rescued. The reconstituted virus was found to maintain growth properties similar to those of the parental virus in porcine alveolar macrophage (PAM) cells. With the availability of this type 2 PRRSV infectious clone, we first explored the biological relevance of ORF5a in the PRRSV replication cycle. Therefore, we used a PRRSV reverse genetics system to generate an ORF5a knockout mutant clone by changing the ORF5a translation start codon and introducing a stop codon at the 7th codon of ORF5a. The ORF5a knockout mutant was found to exhibit a lack of infectivity in both BHK-tailless pCD163 and PAM-pCD163 cells, suggesting that inactivation of ORF5a expression is lethal for infectious virus production. In order to restore the ORF5a gene-deleted PRRSV, complementing cell lines were established to stably express the ORF5a protein of PRRSV. ORF5a-expressing cells were capable of supporting the production of the replicationdefective virus, indicating complementation of the impaired ORF5a gene function of PRRSV in trans.
This study was canted out to develop cell lines overexpressing human H-transferase (HT). One of the approaches to prevent hyperacute rejection in xenotransplantation might be the expression of human HT in porcine cells. In this study, we cloned human HT gene from HepG2 cells using RT-PCR to establish HT-overexpressing vector. The full-length cDNA of human HT was inserted into the 3' end of CMV promoter for construction of the overexpression vector pRc/CMV-hHT. Using ietPEI DNA transfection reagent, the vector was introduced into porcine ear skin fibroblasts from newborn piglets. Transfected cells were selected by treatment of $300{\mu}g/ml$ G418 for 12 days. After antibiotic selection, survived colonies with approximately 5mm in diameter were picked and analysed for transgene human HT by PCR. The colonies proven to be human HT transfectants were analysed by RT-PCR to determine their expressions or human HT. In all colonies tested, human HT mRNA was detected. This result demonstrates the establishment of porcine cell lines overexpressing human HT, and these cell lines may be used for the development of transgenic pigs for xenotransplantation.
A pollen-specific cDNA clone, LMP50, was isolated from the mature pollen cDNA library of the Easter lily. The LMP50 transcript was highly abundant in mture pollen grains but not detectable in other organs. The LMP50 cDNA clone contains 1383 nucleotides and two open reading frames. The first codes for a peptide of 15 amino acid residues. The role of this peptide is nuclear. The second encodes a protein containing 329 amino acid residues. This protein exhibited a significant homology to human tartrate-resistant acid phosphatase and porcine uteroferrin. Both of these enzymes have been suggested to play a role in iron transport. Therefore, LMP50 may act as an iron carrier protein in mature pollen grains.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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