국내 유통 중인 우육 및 돈육을 대상으로 S. aureus의 오염실태와 검출된 S. aureus 대한 항생제 감수성조사 및 내성 plasmid 전달빈도를 조사하였다. 총 421개 축산물 시료의 20.2%에서 S. aureus가 검출되었으며, 품목별로는 돈육 13.9%, 우육 33.8%의 검출률을 보였다. 가공 전 원료육이 포장육에 비해 S. aureus의 검출률이 높았는데, 돈육에서는 원료육 23.3%, 포장육 7.1%였고, 우육에서는 각각 48.6% 및 28.1%였다. 항생제 감수성 시험결과 ampicillin(76.5%), penicllin(75.3%), tertracycline(27.1%) 및 erythromycin (21.1%) 순으로 높은 내성률을 보였다. 특히 우육에서는 penicillin의 내성이 55.6%인 반면 돈육에서는 97.5%로 돈육에서 1.6배 이상의 높은 내성률을 보였고, tetracycline의 경우 우육에서 13.3%의 내성을 보인 반면, 돈육에서는 42.5%로 3배 이상의 내성률을 보였다. 8가지 항생제에 내성을 보이는 다제내성균도 검출되었으며, 약제내성과 관련된 Rplasmid의 특성시험에서 혼합배양에서는 내성이 전달되지 않았고, filter mating법에서 tetracycline내성 plasmid가 $1.1{\times}10^{-5}{\sim}1.9{\times}10^{-9}$의 빈도로, erythromycin 내성 plasmid가 $1.2{\times}10^{-5}{\sim}4.0{\times}10^{-8}$ 빈도로 내성이 전달되었다. 따라서 국내에서는 항생제투입의 정량적인 규제나 법적인 제도장치의 마련이 시급하다고 생각되며 앞으로 항생제 사용규제 및 대책마련에 대한 추가적인 연구가 절실하다고 생각되었다.
본 연구에서는 세균의 항균제 내성기전을 연구하기 위해 일개의 대학병원에서 분리된 Enterobacter cloacae를 대상으로 extended spectrum ${\beta}$-lactamase (ESBL) 및 16S rRNA methyltransferase 유전자를 검출하고 항균제 감수성 양상을 조사하였다. 대상균주 중 총 8 균주가 CTX-M-15형 ESBL을 생성하는 것으로 확인되었으며 이 균주들 중 3 균주는 16S rRNA methyltransferase의 한 종류인 armA 유전자도 동시에 가지고 있는 것으로 나타났다. CTX-M-15형 ESBL 유전자와 armA 유전자를 동시에 가지고 있는 E. cloacae는 3세대 cephalosporin 계열 및 aminoglycoside 계열의 항균제 뿐 만 아니라 fluoroquinolone 계열의 항균제에도 내성을 보였다. 더구나 이러한 항균제 내성 유전자들은 플라스미드를 통해 다른 세균으로 전달 될 수 있어 다제내성 세균의 출현 및 확산을 촉진 할 수 있다. 따라서 E. cloacae를 대상으로 지속적인 항균제 내성 유전자를 모니터링 하는 것은 항균제 내성 확산방지를 위해 중요할 것으로 사료된다.
The orf8(chlD) gene cloned from Streptomyces antibioticus T$\"{u}$99 was overexpressed using an E. coli system to confirm its biological function. Induction of the E. coli strain transformed with recombinant plasmid pRFJ 1031 containing orf8 resulted in the production of a 43,000 dalton protein. Glucose-1-phosphate thymidylyltransferase activity of the cell extract obtained from the transformed strain was 4-5 times higher than that of the control strain. The expressed protein was purified 18-fold from E. coli cell lysate using three chromatographic steps with a 17% overall recovery to near homogeneity. The N-terminal amino acid sequence of the purified protein agrees with the nucleotide sequence predicted from the orf8 gene. The SDS-PAGE estimated subunit mass of 43,000 dalton agrees well with that calculated from the amino acid composition deduced from the nucleotide sequence of the orf8 gene (43,000 Da). Also, the native enzyme has a monomeric structure with a molecular mass of 43,000 dalton. The purified protein showed glucose-1-phosphate thymidylyltransferase activity catalyzing a reversible bimolecular group transfer reaction, and was highly specific for dTTP and ${\alpha}$-D-glucose 1-phosphate as substrates in the forward reaction, and for dTDP-D-glucose and pyrophosphate in the reverse reaction.
벼에 있어서 엽록체 small heat shock protein(small HSP)의 기능을 밝히기 위하여 Agrobacterium을 이용한 형질전환법을 이용하여 벼로부터 분리한 small HSP cDNA를 도입하였다. Agrobacterium의 감염에는 벼의 미성숙 배로부터 유도한 callus를 이용하였다. 형질전환 후의 재분화율은 약 30%였다. 형질전환을 통하여 얻어진 식물체의 genomic DNA로부터 PCR 분석과 Southern blot 분석으로 엽록체 small HSP 유전자의 도입을 확인하였다. 도입 유전자의 형질전환 벼에 있어서 유전자의 발현 양상을 northern blot 분석으로 조사하였다. 그 결과 도입된 유전자는 상온에서의 발현량이 서로 다르게 나타났으며 항상적으로 발현하고 있음을 확인하였다.
Thymidylate synthase (TS) catalyzes the transfer of a methyl group from methylenetetrahydrofolate to dUMP to form dTMP. It is a primary target in the chemotherapy of colorectal cancers and some other neoplasms. In order to obtain pure protein for analysis of structure and biological function, an expression vector TS-pET28b (+) was constructed by inserting wild-type human thymidylate synthase (hTS) cDNA into pET28b (+). Then an expression strain was selected after transformation of the recombined plasmid into Rosetta (DE3). Fusion protein with His-tag was efficiently expressed in the form of inclusion bodies after IPTG induction and the content was approximately 40.0% of total bacteria proteins after optimizing expression conditions. When inclusion bodies were washed, dissolved and purified by Ni-NTA under denatured conditions, the purity was up to 90%. On SDS-PAGE and West-blotting, the protein band was found to match well with the predicted relative molecular mass-36kDa. Bioactivity was 0.1 U/mg. The results indicated that high-level expression of wild-type hTS cDNA can be achieved in prokaryotes with our novel method, facilitating research into related chemotherapy.
We have developed a robotic system for an automated parallel cell cultivation process that enables screening of induction parameters for the soluble expression of recombinant protein. The system is designed for parallelized and simultaneous cultivation of up to 24 different types of cells or a single type of cell at 24 different conditions. Twenty-four culture vessels of about 200 ml are arranged in four columns${\times}$six rows. The system is equipped with four independent thermostated waterbaths, each of which accommodates six culture vessels. A two-channel liquid handler is attached in order to distribute medium from the reservoir to the culture vessels, to transfer seed or other reagents, and to take an aliquot from the growing cells. Cells in each vessel are agitated and aerated by sparging filtered air. We tested the system by growing Escherichia coli BL21(DE3) cells harboring a plasmid for a model protein, and used it in optimizing protein expression conditions by varying the induction temperature and the inducer concentration. The results revealed the usefulness of our custom-made cell cultivation robot in screening optimal conditions for the expression of soluble proteins.
Park, Jong-il;Lee, Sang-Yup;Kyungsup Shin;Lee, Woo-Gi;Park, Si-Jae;Chang, Ho-Nam;Chang, Yong-Keun
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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제7권6호
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pp.371-374
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2002
Production of poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate)[P(3HB/V)], by fed-batch culture of recombinant Escherichia coli harboring a plasmid containing the Alcaligenes latus polyhy-droxyalkanoate (PHA) biosynthesis genes, was examined in two pilot-scale fermentors with air supply only, In a 30 L fermentor having a XLa value of 0.11 S$^1$, the final P(3HB/V) concentration and the P(3HB/V) content obtained were 29.6 g/L and 70.1 wt%, respectively giving a productivity of 1.37 g P(3HB/V)/L-h. In a 300 L fermentor having a XLa of 0.03 S$^1$, the P(3HB/V) concentration and the P(3HB/V) content were 20.4 g/L and 69 wt%, respectively giving a productivity of 1.06g P(3HB/V)/L-h. These results suggest that economical production of P(3HB/V) is possible by fed-batch culture of recombinant E. coli in a large-scale fermentor having low KLa value.
Park, Kap-Ju;Lee, Keun-Kwang;Kang, Bong-Ju;Cha, Sung-Chul;Lee, Hyung-Hoan
대한바이러스학회지
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제28권2호
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pp.129-138
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1998
Bovine growth hormone (bGH) gene was expressed in an insect Spodoptera frugiperda cell line using a Baculovirus, Hyphantria cunea nuclear polyhedrosis virus (HcNPV). The bGH gene in pbGH plasmid was sequenced and amplified by PCR technique with two primers containing NcoI sites. The bGH gene consisted of 654 bp (217 amino acid residues), the 5'-untranslated region of the cloned bGH cDNA contains 56 bp, and the 3'-untranslated region contains 145 bp and two pallindromic regions. The amplified bGH gene DNA fragment (654 bp) was inserted into the NcoI site of the pHcEVII vector, which was named pHcbGH. The pHcbGH transfer vector DNA and the wild type HcNPV DNA were cotransfected into S. frugiperda cells to construct a recombinant virus. Eight recombinant viruses were selected and named HcbGH. One clone, HcbGH-4-1 showed largest plaque size, therefore the recombinant virus was further studied. The multiplication pattern of the recombinant HcbGH-4-1 was similar to that of the wild type HcNPV. The bGH gene DNA in the HcbGH-4-1 recombinant was confirmed by Southern blot hybridization. The amount of the bGH (217 amino acid residues, 21 kDa) produced in S. frugiperda cells infected with the HcbGH-4-1 recombinant was approximately 5.5 ng per ml ($10^6$ cells) by radioimmunoassay.
Beyaz, Ramazan;Darcin, E. Selcen;Aycan, Murat;Kayan, Mustafa;Yildiz, Mustafa
Journal of Plant Biotechnology
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제43권2호
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pp.240-247
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2016
In this study, routinely used transformation method, which includes transferring explants onto co-cultivation medium after inoculating them with bacterial solution for a while, was compared with 3 different inoculation methods. In every 3 methods, hypocotyl explants excised from 7-day-old sterile flax seedlings having cotyledon leaves and no root system dried under air flow in sterile cabin for 35 min were inoculated with different volumes of bacterial solution at different inoculation periods. GV2260 line of Agrobacterium tumefaciens having 'pBIN 19' plasmid containing npt II (neomycin phosphotransferase II) gene and GUS reporter gene was used in transformation studies. After inoculation, hypocotyl segments of seedlings (0.5 cm in length) - were excised and left to co-cultivation for 2 days. Then, explants were transferred to regeneration medium supplemented with different antibiotics. The presence of npt-II and GUS genes in transformants was confirmed by PCR and GUS analysis. The highest results in all characters examined in all cultivars were obtained from the 2 inoculation method in which hypocotyls excised from seedlings inoculated with $500{\mu}l$ of bacterial solution after drying in sterile cabin for 35 min were used.
Doughari, Hamuel James;Ndakidemi, Patrick Alois;Human, Izanne Susan;Benade, Spinney
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제22권1호
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pp.25-33
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2012
The association of verotoxic E. coli and Acinetobacter spp. with various antibiotic-resistant, diarrhogenic, and nosocomial infections has been a cause for concern worldwide. E. coli and A. haemolyticus isolated on a number of selective media were screened for virulence factors, antibiotic resistance, and transformation of resistance genes. Out of 69 E. coli isolates obtained, 25 (35.23%), 14 (20.30%), and 28 (40.58%) were positive for Vtx1&2, Vtx1, and Vtx2, respectively, 49 (71.015%) for extendedspectrum beta-lactamases (ESBLs), 34 (49.28%) for serum resistance, 57 (82.61%) for cell surface hydrophobicity, 48 (69.57%) for gelatinase production, and 37 (53.62%) for hemolysin production. For the 14 A. haemolyticus isolates, only 2 (14.29%) in each case from all the samples investigated were positive for Vtx1, Vtx2 and Vtx1&2 respectively, 8 (57.14%) for ESBLs, 7 (50.00%) for serum resistance, 11 (78.57%) for cell surface hydrophobicity, 4 (28.57%) for gelatinase production, and 8 (57.14%) for hemolysin production. Although transformation occurred among the E. coli and Acinetobacter isolates (transformation frequency: $13.3{\times}10^{-7}-53.4^{-7}$), there was poor curing of the plasmid genes, a confirmation of the presence of stable antibiotic-resistant genes (DNA concentration between 42.7 and 123.8 ${\mu}g$) and intragenetic transfer of multidrug-resistant genes among the isolates. The isolates were potentially virulent and contained potentially transferable antibiotic resistance genes. Detection of virulence factors, antibiotic resistance genes, and transformation among these isolates is a very significant outcome that will influence approaches to proactive preventive and control measures and future investigations. However, continued surveillance for drug resistance among these bacteria and further investigation of the mechanism of action of their virulence factors are a necessity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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