A strain of bacterium producing antifungal antibiotic was isolated and identification of the strain was attempted. We could identify the bacterium as being a Bacillus sp., based on morphological observation, physiological characteristics, and 16S rDNA sequence analysis, thus leading us to designate the strain as Bacillus sp. AH-E-1. The strain showed potent antibiotic activity against phytopathogenic and human pathogenic fungi by inducing mycelial distortion and swelling and inhibiting spore germination. The antibiotic metabolite produced by the strain demonstrated excellent thermal and pH (2-11) stability, but was labile to autoclaving. From these results, we could find a broader antifungal activity of Bacillus genus. Isolation and characterization of the active agent produced by the strain are under progress.
Stem rots caused by Rhizoctonia solani and Sclerotinia sclerotiorum have been known as devastating diseases in balloon flower plants. Antifungal activities of four fungicides, azoxystrobin, polyoxin B, trifloxystrobin and validamycin A were evaluated in vitro, showing effective suppression with mycelial growth of the fungal isolates on PDA media. Efficacies of the four fungicides were also demonstrated in stem tissues of balloon flower plants against R. solani and S. sclerotiorum. A commercially available Bacillus subtilis strain Y1336 was tested in terms of antagonistic biological control of stem rot disease of balloon flower plants. The bacterial strain revealed its antifungal activities against R. solani and S. sclerotiorum demonstrated by dual culture tests using paper discs and two plant pathogenic fungi on PDA media, as well as by plant inoculation assay, indicating that this antagonistic bacterial strain can be incorporated into disease management program for balloon flower stem rot diseases together with the four chemical fungicides.
Seo, Sam-Yeol;Jun, Mi-Hyun;Chun, Won-Su;Lee, Sung-Hong;Seo, Ji-Ae;Yi, Young-Keun;Hong, Yong-Pyo;Kim, Yong-Gyun
Korean journal of applied entomology
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v.50
no.2
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pp.107-113
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2011
Benzylideneacetone (BZA) is a compound derived from culture broth of an entomopathogenic bacterium, Xenorhabdus nematophila (Xn). Its immunosuppressive activity is caused by its inhibitory activity against eicosanoid biosynthesis. This BZA is being developed as an additive to enhance control efficacy of other commercial microbial insecticides. This study was focused on the enhancement of the immunosuppressive activity of BZA by generating its chemical derivatives toward decrease of its hydrophobicity. Two hydroxylated BZA and one sugar-conjugated BZA were chemically synthesized. All derivatives had the inhibitory activities of BZA against phospholipase $A_2$ ($PLA_2$) and phenoloxidase (PO) of the diamondback moth, Plutella xylostella, but BZA was the most potent. Mixtures of any BZA derivative with Bacillus thuringiensis (Bt) significantly increased pathogenicity of Bt. BZA also inhibited colony growth of four plant pathogenic fungi. However, BZA derivatives (especially the sugar-conjugated BZA) lost the antifungal activity. These results indicated that BZA and its derivatives inhibited catalytic activities of two immune-associated enzymes ($PLA_2$ and PO) of P. xylostella and enhanced Bt pathogenicity. We suggest its use to control plant pathogenic fungi.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.84.2-85
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2003
Magnaporthee grisea causes the devastating blast disease of rice. Entensive research has been conducted on infection mechanisms, particularly on appressorium formation and penetration, of this fungus during the last decade. However, the role(s) of cell-wall-degrading enzymes (CWDEs) on pathogenesis is not clearly demonstrated at molecular level. Many CWDES in plant pathogenic fungi including M. grisea are redundant; that is, there are multiple genes encoding enzymes with a similar or overlapping spectrum of activities. It is laborious to isolate all of the genes encoding related enzymes and to construct mutants lacking all 9f them. Thus, we considered alternative strategies to address the role of CWDEs in pathogenesis. Since expression of CWDE genes Is repressed by a simple sugar, as the first step, we cloned a Snfl (sucrose non-fermenting) gene (MgSnf1) from M. grisea. The predicted amino acid sequence showed a high identity with other Snf1 genes from various fungi. To elucidate molecular function of MgSnf1, a transformant lacking MgSnf1 was created by targeted gene replacement. En glucose, sucrose, and xylan the MgSnf1 mutant grew normally but in pectin and complex media, it grew slower than wild type. Expression of various CWDEs in MgSnf1 mutant was investigated and found that expression of some CWDEs is repressed. However, no significant difference was observed in conidial germination, appressorium formation, and pathogenicity in MgSnf1 mutant. However, MgSnf1 functionally complemented a yeast MgSnf1 mutant. These results suggest that MgSnf1 is involved in regulation of CWDEs and MgSnf1 is dispensable in pathogenicity of M. grisea.
Antifungal activities of natural substrances from Eucalyptus darlympleana, E. globules, E. gunnii and E. unigera were evaluated against postharvest pathogens of kiwifruits, Botrytis cinerea, Botryosphaeria dothidea, and Diaporthe actinidiae, to screen effective natural substances as an alternative to chemical fungicides. Methanol extract of the Eucalyptus trees showed strong antagonistic activity against the pathogenic fungi. Among them, E. unigera and E. darlympleana effectively inhibited mycelial growth of the pathogens. For chemical identification of the antifungal substances, the methanol extract of E. darlympleana leaves was successively partitioned with $CH_2Cl_2$, EtOAc, n-BuOH and $H_2O$. Among the fractions, $CH_2Cl_2$ and n-BuOH showed strong inhibitory activity of mycelial growth of the fungi. Five compounds were isolated from EtOAc and n-BuOH fractions subjected to $SiO_2$ column chromatography. Two phenolic compounds(gallic acid and 3,4-dihydroxybenzoic acid) and three flavonoid compounds(quercetin, quercetin-3-O-$\alpha$-L-rhamnoside, quercetin-3-O-$\beta$-glucoside) were identified by $^1H$-NMR and $^{13}C$-NMR spectroscopy. Among them, only gallic acid was found to be effective in mycelial growth and spore germination of B. cinerea at relatively high concentrations. The results suggest that gallic acid can be a safer and more acceptable alternative to current synthetic fungicides controlling soft rot decay of kiwifruit during postharvest storage.
The transcription cofactor Swi6 plays important roles in regulating vegetative growth and meiosis in Saccharomyces cerevisiae. Functions of Swi6 ortholog were also characterized in Fusarium graminearum which is one of the devastating plant pathogenic fungi. Here, we report possible role of FgSwi6 in the interaction between F. graminearum and Fusarium graminearum virus 1 (FgV1) strain DK21. FgV1 perturbs biological characteristics of host fungi such as vegetative growth, sporulation, pigmentation, and reduction of the virulence (hypovirulence) of its fungal host. To characterize function(s) of FgSWI6 gene during FgV1 infection, targeted deletion, over-expression, and complementation mutants were generated and further infected successfully with FgV1. Deletion of FgSwi6 led to severe reduction of vegetative growth even aerial mycelia while over-expression did not affect any remarkable alteration of phenotype in virus-free isolates. Virus-infected (VI) FgSWI6 deletion isolate exhibited completely delayed vegetative growth. However, VI FgSWI6 over-expression mutant grew faster than any other VI isolates. To verify whether these different growth patterns in VI isolates, viral RNA quantification was carried out using qRT-PCR. Surprisingly, viral RNA accumulations in VI isolates were similar regardless of introduced mutations. These results provide evidence that FgSWI6 might play important role(s) in FgV1 induced phenotype alteration such as delayed vegetative growth.
Mushtaq, Aamar;Tariq, Muhammad;Ahmed, Maqsood;Zhou, Zongshan;Ali, Imran;Mahmood, Raja Tahir
The Plant Pathology Journal
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v.37
no.3
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pp.232-242
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2021
Glomerella leaf spot (GLS) is a severe infectious disease of apple whose infective area is growing gradually and thus poses a huge economic threat to the world. Different species of Colletotrichum including Colletotrichum gloeosporioides are responsible for GLS. For efficient GLS control, it is important to understand the mechanism by which the cruciferous crops and C. gloeosporioides interact. Arginine is among one of the several types of amino acids, which plays crucial role in biochemical and physiological functions of fungi. The arginine biosynthesis pathway involved in virulence among plant pathogenic fungi is poorly understood. In this study, CgCPS1 gene encoding carbamoyl phosphate synthase involved in arginine biosynthesis has been identified and inactivated experimentally. To assess the effects of CgCPS1, we knocked out CgCPS1 in C. gloeosporioides and evaluated its effects on virulence and stress tolerance. The results showed that deletion of CgCPS1 resulted in loss of pathogenicity. The ∆cgcps1 mutants showed slow growth rate, defects in appressorium formation and failed to develop lesions on apple leaves and fruits leading to loss of virulence while complementation strain (CgCPS1-C) fully restored its pathogenicity. Furthermore, mutant strains showed extreme sensitivity to high osmotic stress displaying that CgCPS1 plays a vital role in stress response. These findings suggest that CgCPS1 is major factor that mediates pathogenicity in C. gloeosporioides by encoding carbamoyl phosphate that is involved in arginine biosynthesis and conferring virulence in C. gloeosporioides.
Soil cyanobacteria isolated from the rice paddy fields of 10 different locations across Korea were evaluated by agar plate diffusion test for antifungal activity. Aqueous, petroleum ether, and methanol extracts from one hundred and forty two cyanobacterial strains belonging to the 14 genera were examined for antifungal properties against seven phytopathogenic fungi causing diseases in hot pepper (Capsicum annuum L). Of total cyanobacteria, nine cyanobacteria (6.34%) exhibited antifungal effects. The nine cyanobacteria selected with positive antifungal activities were two species of Oscillatoria, two of Anabaena, three of Nostoc, one of Nodularia, and one of Calothrix. Alternaria alternata and Botrytis cinerea were inhibited by nine and eight species of cyanobacteria, respectively. Rhizopus stolonifer was suppressed by only methanol extract of Nostoc commune FK-103. In particular, Nostoc commune FK-103 and Oscillatoria tenuis FK-109 showed strong antifungal activities against Phytophthora capsici. Their antifungal activity at the late exponential growth phase is related to the growth temperature and not associated with the growth parameters such as cell biomass and $chlorophyll-{\alpha}$ concentration. The high inhibition levels of antibiotics were 22.5 and 31.8 mm for N. commune FK-103 and O. tenuis FK-109, respectively. The optimal temperature for antibiotic productivity was $35^{\circ}C$.
Acetylation of histone lysine residues occurs in different organisms ranging from yeast to plants and mammals for the regulation of diverse cellular processes. With the identification of enzymes that create or reverse this modification, our understanding on histone acetylation has expanded at an amazing pace during the last two decades. In fungal pathogens of plants, however, the importance of such modification has only just begun to be appreciated in the recent years and there is a dearth of information on how histone acetylation is implicated in fungal pathogenesis. This review covers the current status of research related to histone acetylation in plant pathogenic fungi and considers relevant findings in the interaction between fungal pathogens and host plants. We first describe the families of histone acetyltransferases and deacetylases. Then we provide the cases where histone acetylation was investigated in the context of fungal pathogenesis. Finally, future directions and perspectives in epigenetics of fungal pathogenesis are discussed.
Burkholderia pyrrocinia CH-67 is a biocontrol bacterium with strong antifungal activity against several plant pathogenic fungi. Transposon mutagenesis was performed to identify the genes responsible for the antifungal activity of B. pyrrocinia CH-67. Of the 2,500 mutants tested using the Fulvia fulva spore screening method, a mutant deficient in antifungal activity, M208, was selected. DNA sequence analysis of the transposon-inserted region revealed that a gene encoding an adenylate kinase-related kinase was disrupted in M208. Antifungal activity was restored in M208 when a full-length adenylate kinase gene with its promoter was introduced in trans. The deduced amino acid sequence of adenylate kinase from CH-67 was 80% identical to that of B. cenocepacia MCO-3. Adenosine diphosphate supplementation or high levels of adenosine triphosphate and adenosine monophosphate together restored antifungal activity in M208, suggesting that adenylate kinase of B. pyrrocinia CH-67 is involved in antifungal activity expression.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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