International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.19
no.1
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pp.143-154
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2009
Single nucleotide polymorphisms (SNPs) are the most frequent form of variation in the genome of any organism. Owing to their greater abundance, they are considered useful for identifying cultivars, construction of higher density linkage maps, and detection of genes (QTLs) associated with complex agronomic traits and diseases. Although, SNPs have been used recently for constructing a high density genetic map in silkworm and a set of 118 SNPs have been identified in tasar silkworms, not much progress has been made in sericulture to utilize the vast potential of SNPs. Thus, this review mainly focuses on some of the important methods of SNP discovery, validation and genotyping. Emphasis has also been given to the possible uses of SNP genotyping in the improvement of silkworms and their host plants.
Park, GwanIk;Sim, Kyudong;Baek, Jeonghyun;Lee, Sanghwa;Park, Jong-Il
Proceedings of the Korean Society of Broadcast Engineers Conference
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2022.06a
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pp.186-189
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2022
스마트팜 피노믹스 시스템은 재배하는 식물의 성장조건에 맞게 생육 환경을 일정하게 유지하고 관리하는 장치이지만, 그럼에도 불구하고 식물의 질병은 여러 가지 이유로 발생할 수 있다. 본 논문에서는 스마트팜 피노믹스 시스템에서 Mean Shift Segmentation 을 통한 식물의 질병을 자동으로 검출하는 식물 질병 검출 알고리즘을 제안한다. 식물의 질병 정도가 임의의 임계값을 넘을 경우, 해당 식물을 질병의 정도가 심한 식물로 판별하고, 적절한 수확시기를 결정하여 더 나은 상품성을 가진 식물을 재배할 수 있는 방법을 제시한다. 또한 식물의 질병이 급격하게 심해지는 기간을 확인하여 인간의 개입 없이 완전히 자동화된 시스템으로 더욱 세심하고 효율적인 식물 재배를 가능하게 함을 제시한다. 본 논문에서는 아이스버그(양상추)에 대한 재배 환경을 구축하여 생장 기간에 아이스버그에 발생하는 질병인 팁번 현상을 검출하는 실험을 진행하였다. 본 논문에서 제안한 방법은 다른 종류의 다양한 식물에서도 질병 검출이 가능하며, 스마트팜 피노믹스 시스템에서 질병 검출의 자동화를 위한 한 가지 방법으로 활용될 수 있을 것으로 기대된다.
Ground cherry (Physalis pubescens) is the most prominent species in the Solanaceae family due to its nutritional content, and prospective health advantages. It is grown all over the world, but notably in northern China. In 2019 firstly bacterial leaf spot (BLS) disease was identified on P. pubescens in China that caused by both BLS pathogens Xanthomonas euvesicatoria pv. euvesicatoria resulted in substantial monetary losses. Here, we compared whole genome sequences of X. euvesicatoria to other Xanthomonas species that caused BLS diseases for high similarities and dissimilarities in genomic sequences through average nucleotide identity (ANI) and BLAST comparison. Molecular techniques and phylogenetic trees were adopted to detect X. euvesicatoria on P. pubescens using recQ, hrpB1, and hrpB2 genes for efficient and precise identification. For rapid molecular detection of X. euvesicatoria, loop-mediated isothermal amplification, polymerase chain reaction (PCR), and real-time PCR techniques were used. Whole genome comparison results showed that the genome of X. euvesicatoria was more closely relative to X. perforans than X. vesicatoria, and X. gardneri with 98%, 84%, and 86% ANI, respectively. All infected leaves of P. pubescens found positive amplification, and negative controls did not show amplification. The findings of evolutionary history revealed that isolated strains XeC10RQ, XeH9RQ, XeA10RQ, and XeB10RQ that originated from China were closely relative and highly homologous to the X. euvesicatoria. This research provides information to researchers on genomic variation in BLS pathogens, and further molecular evolution and identification of X. euvesicatoria using the unique target recQ gene through advance molecular approaches.
Phytophthora katsurae is a fungal pathogen responsible for chestnut ink disease. We designed two duplex primer sets (SOPC 1F/1R+KatI 3F/5R, SOPC 1-1F/1-1R+KatI 3F/5R) to detect P. katsurae. SOPC 1F/1R and SOPC 1-1F/1-1R primer pairs were designed for sequence characteristic amplification regions (SCAR) marker, and KatI 3F/5R primer pair was used for P. katsurae-specific primer designed from internal transcribed spacer (ITS) region. To assess the sensitivity of duplex PCR, genomic DNA was serially diluted 10-fold to make the final concentrations from 1 mg/ml to 1 ng/ml. The sensitivity for two primer sets were 1 ${\mu}g/ml$ and 100 ng/ml, respectively. To find detection limits for zoospores of P. katsurae, each zoospore suspension was serially diluted 10-fold to make the final concentrations from $1{\times}10^6$ to $1{\times}10^2$ cells/ml, and then DNA was extracted. The limits of detection for all of two primer sets were $1{\times}10^5$ cells/ml. All of two primer sets were specific to P. katsurae in PCR detection and did not produce any P. katsurae-specific PCR amplicons from other 16 Phytophthora species used as the control. This study shows that duplex PCR using two primer sets might be a useful tool for rapid and efficient detection of P. katsurae.
We conducted a survey on pepper virus diseases in 31 regions in Korea from November 2001 to December 2004. Using electron microscopy, test plant reaction, rapid immuno-filter paper assay (RIPA), reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) and/or analysis of viral nucleotide sequences, we found a number of viruses from 1,056 samples that we collected. These included Cucumber mosaic virus (CMV), Pepper mottle virus (PepMoV), Pepper mild mottle virus (PMMoV), Broad bean wilt virus 2 (BBWV2), Tobacco mild green mosaic virus (TMGMV), and Tomato spotted wilt virus (TSWV). Of the samples analyzed, $343(32.5\%)$ were infected with CMV, $209(19.8\%)$ with PepMoV, $141(13.4\%)$ with PMMoV, $12(1.1\%)$ with BBWV2, $40(3.8\%)$ with TMGMV, $5(0.5\%)$ with TSWV, $153(14.5\%)$ with CMV and PepMoV, $54 (5.1\%)$ with CMV and PMMoV, $31(2.9\%)$ with PepMoV and PMMoV, $3(0.3\%)$ with CMV and BBWV2, $1(0.1\%)$ with CMV, PepMoV and BBWV2, $8(0.8\%)$ with CMV, PepMoV and PMMoV, and $30 (2.8\%)$ samples were infected with viruses which were not identified. CMV was the most predominant virus in all inspected fields and the number of the samples infected with PMMoV was relatively low as compared PepMoV infection level in pepper. TMGMV was only found in the southern part of Korea, while TSWV was isolated in Anyang and Yesan. However, we did not encounter in this survey the Alfalfa mosaic virus (AMV), Potato virus Y (PVY), Tobacco mosaic virus (TMV), and Pepper vein chlorosis virus (PVCV).
Kim, Hyun A.;Utomo, Setyo Dwi;Kwon, Suk Yoon;Min, Sung Ran;Kim, Jin Seog;Yoo, Han Sang;Choi, Pil Son
Plant Biotechnology Reports
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v.3
no.4
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pp.277-283
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2009
One of the limitations to conducting maize Agrobacterium-mediated transformation using explants of immature zygotic embryos routinely is the availability of the explants. To produce immature embryos routinely and continuously requires a well-equipped greenhouse and laborious artificial pollination. To overcome this limitation, an Agrobacterium-mediated transformation system using explants of type II embryogenic calli was developed. Once the type II embryogenic calli are produced, they can be subcultured and/or proliferated conveniently. The objectives of this study were to demonstrate a stable Agrobacterium-mediated transformation of maize using explants of type II embryonic calli and to evaluate the efficiency of the protocol in order to develop herbicide-resistant maize. The type II embryogenic calli were inoculated with Agrobacterium tumefaciens strain C58C1 carrying binary vector pTF102, and then were subsequently cultured on the following media: co-cultivation medium for 1 day, delay medium for 7 days, selection medium for $4{\times}14$ days, regeneration medium, and finally on germination medium. The T-DNA of the vector carried two cassettes (Ubi promoter-EPSPs ORF-nos and 35S promoter-bar ORF-nos). The EPSPs conferred resistance to glyphosate and bar conferred resistance to phosphinothricin. The confirmation of stable transformation and the efficiency of transformation was based on the resistance to phosphinothricin indicated by the growth of putative transgenic calli on selection medium amended with $4mg\;1^{-1}$ phosphinothricin, northern blot analysis of bar gene, and leaf painting assay for detection of bar gene-based herbicide resistance. Northern blot analysis and leaf painting assay confirmed the expression of bar transgenes in the $R_1$ generation. The average transformation efficiency was 0.60%. Based on northern blot analysis and leaf painting assay, line 31 was selected as an elite line of maize resistant to herbicide.
Hong, Sung Won;Kim, Da-Ran;Kim, Ji Su;Cho, Gyeongjun;Jeon, Chang Wook;Kwak, Youn-Sig
The Plant Pathology Journal
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v.34
no.3
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pp.163-170
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2018
Strawberry Fusarium wilt disease, caused by Fusarium oxysporum f. sp. fragariae, is the most devastating disease in strawberry production. The pathogen produces chlamydospores which tolerate against harsh environment, fungicide and survive for decades in soil. Development of detection and quantification techniques are regarded significantly in many soilborne pathogens to prevent damage from diseases. In this study, we improved specific-quantitative primers for F. oxysporum f. sp. fragariae to reveal correlation between the pathogen density and the disease severity. Standard curve $r^2$ value of the specific-quantitative primers for qRT-PCR and meting curve were over 0.99 and $80.5^{\circ}C$, respectively. Over pathogen $10^5cfu/g$ of soil was required to cause the disease in both lab and field conditions. With the minimum density to develop the wilt disease, the pathogen affected near 60% in nursery plantation. A biological control microbe agent and soil solarization reduced the pathogen population 2-fold and 1.5-fold in soil, respectively. The developed F. oxysporum f. sp. fragariae specific qRT-PCR protocol may contribute to evaluating soil healthiness and appropriate decision making to control the disease.
The Coumarin (1,2-benzopyrone) is the main secondary metabolite of Mikania laevigata Sch. Beep ex Baker and Mikania glomerata Spreng., which are popularly known as guaco. These plants have been used mainly in traditional medicine in the treatment of respiratory diseases because their bronchodilator effect. However, there are around 200 species of Mikania, which are quite similar in appearance. From these, only M. leavigata and M. glomerata have high concentrations of coumarins. In this line, the falsification of products Mikania based has been frequent. In this sense, this work demonstrated the application of the easy, fast, e not destructive method based in Nuclear Magnetic Resonance in quantitative mode (qNMR) for the determination of coumarin in both commercial and homemade guaco products. Thus, in the first step the compounds were extract from guaco leaves and syrups using chloroform (CHCl3), with or without ultrasound. About the method, was linear with a R2 = 0.9947 for 1,2-benzopyrone, with detection and quantification limits with were 0.11 and 0.36 mg mL-1 respectively. In the same line, the method was safe with RSD <0.3% and with recovery ranging from 93-101%. To confirm the applicability of the method, in the last step was applied to 10 real samples (6 from leaves and 4 from syrups). The content of the coumarin in the leaf extract ranged from 0.62 to 1.30 mg mL-1. For syrups I, II and IV, the content of coumarin was in accordance with the manufacturers. However, for de Syrup III, the concentration was 155% higher. In summary, the qNMR is a rapid method with minimal sample preparation that can be used to quantify coumarin in home-made plant extracts as well as in commercial samples as syrup for instance. This method is applicable for quality control of different plants-based products.
Yong Ju, Jin;Dawon, Jo;Soon-Wo, Kwon;Samnyu, Jee;Jeong-Seon, Kim;Jegadeesh, Raman;Soo-Jin, Kim
The Plant Pathology Journal
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v.38
no.6
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pp.656-664
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2022
Pectobacterium odoriferum is the primary causative agent in Kimchi cabbage soft-rot diseases. The pathogenic bacteria Pectobacterium genera are responsible for significant yield losses in crops. However, P. odoriferum shares a vast range of hosts with P. carotovorum, P. versatile, and P. brasiliense, and has similar biochemical, phenotypic, and genetic characteristics to these species. Therefore, it is essential to develop a P. odoriferumspecific diagnostic method for soft-rot disease because of the complicated diagnostic process and management as described above. Therefore, in this study, to select P. odoriferum-specific genes, species-specific genes were selected using the data of the P. odoriferum JK2.1 whole genome and similar bacterial species registered with NCBI. Thereafter, the specificity of the selected gene was tested through blast analysis. We identified novel species-specific genes to detect and quantify targeted P. odoriferum and designed specific primer sets targeting HAD family hydrolases. It was confirmed that the selected primer set formed a specific amplicon of 360 bp only in the DNA of P. odoriferum using 29 Pectobacterium species and related species. Furthermore, the population density of P. odoriferum can be estimated without genomic DNA extraction through SYBR Green-based real-time quantitative PCR using a primer set in plants. As a result, the newly developed diagnostic method enables rapid and accurate diagnosis and continuous monitoring of soft-rot disease in Kimchi cabbage without additional procedures from the plant tissue.
Field disease incidences of squash virus diseases in Jeonnam province were estimated to be 76.1% and of delayed planting on August-September (retarding culture) and on February-March (semi-forcing culture) on glass house were 55.0% and 0%, respectively, in 2000. Disease incidences of individual squash plant within a field were 100% and 3.6%, respectively, in wild culture and retarding culture. Total of 61 samples suspected to be infected with viruses were collected in 2000 and tested by RT-PCR using specific oligonulceotide primer sets designed for the detection of Cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV), Kyuri green mottle mosaic virus (KGMMV), Zucchini yellow mosaic virus (ZYMV), Papaya ring spot virus (PRSV), Watermelon mosaic virus (WMV), and Cucumber mosaic virus (CMV). Each specific primer set for WMV, ZYMV, and PRSV amplified expected size of DNA fragments from 16, 10, and 2 samples in wild culture, respectively. Double or triple infection were observed in 7 samples tested. In contrast, each specific primer set for WMV, ZYMV, and PRSV confirmed virus infection from 7, 6, and 6 samples, respectively, in samples collected from semi-forcing culture. Double infection of WMV and PRSV was observed in only one sample. However, no DNA fragment was amplified from RT-PCR using CGMMV, KGMMV, and CMV specific oligonucleotide primer sets indicating no CGMMV, KGMMV, or CMV infection in squash fields in Jeonnam province in 2000.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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