Rumen microbiology research has undergone several evolutionary steps: the isolation and nutritional characterization of readily cultivated microbes; followed by the cloning and sequence analysis of individual genes relevant to key digestive processes; through to the use of small subunit ribosomal RNA (SSU rRNA) sequences for a cultivation-independent examination of microbial diversity. Our knowledge of rumen microbiology has expanded as a result, but the translation of this information into productive alterations of ruminal function has been rather limited. For instance, the cloning and characterization of cellulase genes in Escherichia coli has yielded some valuable information about this complex enzyme system in ruminal bacteria. SSU rRNA analyses have also confirmed that a considerable amount of the microbial diversity in the rumen is not represented in existing culture collections. However, we still have little idea of whether the key, and potentially rate-limiting, gene products and (or) microbial interactions have been identified. Technologies allowing high throughput nucleotide and protein sequence analysis have led to the emergence of two new fields of investigation, genomics and proteomics. Both disciplines can be further subdivided into functional and comparative lines of investigation. The massive accumulation of microbial DNA and protein sequence data, including complete genome sequences, is revolutionizing the way we examine microbial physiology and diversity. We describe here some examples of our use of genomics- and proteomics-based methods, to analyze the cellulase system of Ruminococcus flavefaciens FD-1 and explore the genome of Ruminococcus albus 8. At Illinois, we are using bacterial artificial chromosome (BAC) vectors to create libraries containing large (>75 kbases), contiguous segments of DNA from R. flavefaciens FD-1. Considering that every bacterium is not a candidate for whole genome sequencing, BAC libraries offer an attractive, alternative method to perform physical and functional analyses of a bacterium's genome. Our first plan is to use these BAC clones to determine whether or not cellulases and accessory genes in R. flavefaciens exist in clusters of orthologous genes (COGs). Proteomics is also being used to complement the BAC library/DNA sequencing approach. Proteins differentially expressed in response to carbon source are being identified by 2-D SDS-PAGE, followed by in-gel-digests and peptide mass mapping by MALDI-TOF Mass Spectrometry, as well as peptide sequencing by Edman degradation. At Ohio State, we have used a combination of functional proteomics, mutational analysis and differential display RT-PCR to obtain evidence suggesting that in addition to a cellulosome-like mechanism, R. albus 8 possesses other mechanisms for adhesion to plant surfaces. Genome walking on either side of these differentially expressed transcripts has also resulted in two interesting observations: i) a relatively large number of genes with no matches in the current databases and; ii) the identification of genes with a high level of sequence identity to those identified, until now, in the archaebacteria. Genomics and proteomics will also accelerate our understanding of microbial interactions, and allow a greater degree of in situ analyses in the future. The challenge is to utilize genomics and proteomics to improve our fundamental understanding of microbial physiology, diversity and ecology, and overcome constraints to ruminal function.
Cyanobacteria have been identified as one of the most promising group producing novel biochemically active natural products. Cyanobacteria are a very old group of prokaryotic organisms that produce very diverse secondary metabolites, especially non-ribosomal peptide and polyketide structures. Large multienzyme complexes which are responsible for the non-ribosomal biosynthesis of peptides are modular for the addition of a single amino acid. An activation of amino acid substrates results in an amino adenylate occuring via an adenylation domain (A-domain). A-domains are responsible for the recognition of amino acids as substrates within NP synthesis. The A-domain contains ten conserved motifs, A1 to A10. In this study, ten conserved motifs from A1 to A10 were checked regarding their amino acid sequence of the NRPS-module of Microcystis aeruginosa PCC 7806. The part of the amino acid sequence chosen was that which contained as many conserved motives as possible, and then these amino sequence were compared between other cyanobacteria to design a new degenerate primer. A new degenerate primer (A3/A7 primer) was designed to detect any putative NP synthetase region in unkwon cyanobacteria by a reverse translation of the conserved amino acid sequence and a search for cyanobacterial DNA bank.
Angiotensin converting enzyme(ACE) is a zinc-containing dipeptidase widely distributed in mammalian tissues and is thought to play a significant role in blood pressure regulation by hydrolyzing angiotensin I to the potent vasoconstrictor, angiotensin II. Recently, the presence of ACE in pig ovary was reported and the ACE from pig kidney was isolated and characterized. However no nucleotide sequence of the ACE gene from pig is yet known. We report here the cloning of the ACE cDNA from pig kidney by using the reverse transcriptase-polymerase chain reaction. The complete amino acid sequence deduced from the cDNA contains 1309 residues with a molecular mass of 150 kDa, beginning with a signal peptide of 33 amino acids. Amino acid sequence analysis showed that pig kidney ACE is also probably anchored by a short transmembrane domain located near the C-terminus. This protein contains a tandem duplication of the two homologous amino acid peptidase domain. Each of these two domains bears a putative metal-binding site (His-Glu-Met-Gly-His) identified in mammalian somatic ACE. The alignment of pig ACE amino acid sequence with human, rabbit, and mouse reveals that both two domains have been highly conserved during evolution.
A gene coding for the xylanase was cloned from Paenibacillus woosongensis, followed by determination of its complete nucleotide sequence. This xylanase gene, designated as xyn10A, consists of 1,446 nucleotides encoding a polypeptide of 481 amino acid residues. Based on the deduced amino acid sequence, Xyn10A was identified to be a modular enzyme composed of a catalytic domain highly homologous to the glycosyl hydrolase family 10 xylanase and a putative carbohydrate-binding module (CBM) in the C-terminus. By using DEAE-sepharose and phenyl-sepharose column chromatography, Xyn10A was purified from the cellfree extract of recombinant Escherichia coli carrying a P. woosongensis xyn10A gene. The N-terminal amino acid sequence of the purified Xyn10A was identified to exactly match the sequence immediately following the signal peptide predicted by the Signal5.0 server. The purified Xyn10A was a truncated protein of 33 kDa, suggesting the deletion of CBM in the C-terminus by intracellular hydrolysis. The purified enzyme had an optimum pH and temperature of 6.0 and 55-60℃, respectively, with the kinetic parameters Vmax and Km of 298.8 U/mg and 2.47 mg/ml, respectively, for oat spelt xylan. The enzyme was more active on arabinoxylan than on oat spelt xylan and birchood xylan with low activity for p-nitrophenyl-β-xylopyranoside. Xylanase activity was significantly inhibited by 5 mM Cu2+, Mn2+, and SDS, and was noticeably enhanced by K+, Ni2+, and Ca2+. The enzyme could hydrolyze xylooligosaccharides larger than xylobiose. The predominant products resulting from xylooligosaccharide hydrolysis were xylobiose and xylose.
An attempt was made to link rice embryo proteins to DNA sequences and to understand their functions. One hundred of the 700 spots detected on the embryo 2-DE gels were microsequenced. Of these, 28% of the embryo proteins were matched to DNA sequences with known functions, but 72% of the proteins were unknown in functions as previously reported (Woo et al. 2002). In addition, twenty-four protein spots with 100% of homology and nine with over 80% were matched to ESTs (expressed sequence tags) after expanding the amino acid sequences of the protein spots by Database searches using the available rice EST databases at the NCBI (http://www/ncbi.nlm.nih.gov/) and DDBJ (http://www.ddbj.nig.ac.jp/). The chromosomal location of some proteins were also obtained from the rice genetic map provided by Japanese Rice Genome Research Program (http://rgp.dna.affrc.go.jp). The DNA sequence databases including EST have been reported for rice (Oryza sativa L.) now provides whole or partial gene sequence, and recent advances in protein characterization allow the linking proteins to DNA sequences in the functional analysis. This work shows that proteome analysis could be a useful tool strategy to link sequence information and to functional genomics.
Biomaterials are frequently functionalized with Arg-Gly-Asp (RGD) peptides to provide cell adhesion sites. In this study, RGD peptides were enzymatically coupled on to the surface of fibroin microspheres. Papain exhibited a strong preference for dansyl phenylalanine for the peptide formation with fibroin microspheres. Thus, RGD1 peptide was designed to carry cysteine to both sides of the sequence, glycine as a spacer and two residues of phenylalanine at the C-terminal (CRGDCGFF). The enzymatic modification facilitated by an increasing amount of substrate and by the presence of organic solvent, dimethylsulfoxide at 25% (v/v). Microspheres coupled with RGD1, showed a significantly different precipitation property and an increased apparent volume, possibly due to the steric hindrance of RGD peptides on the surface. Transmission electron microscopy also confirmed the presence of cysteine residues in RGD1 coupled on the surface of microspheres stained with gold nanoparticles. RGD1-microspheres significantly facilitated the growth of murine fibroblast 3T3 cells even under non-adhesion culture conditions.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.3
no.1
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pp.69-76
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1974
The method of amino acid sequence determination from the C-terminal amino acid is proposed and mass spectrometric identification of thiohydantoins described previously. In this paper was discussed the fragmentation of thiohydantoin-ring by deutero substitution and model tripeptide have been degraded through three stages each, with interpretable results. The conditions employed in this method are mild enough for biological materials. The main features of the method are the following. 1. Thiohydantoins were formed in a non-aqueous medium a mixture of acetic anhydride, acetic acid and ammonium thiocyanate. 2. Mass sepectra of thiohydantoins derived from 20 amino acids were obtained with a mass spectrometer, JEOL model JMS-06H. 3. Cleavage of peptidyl thiohydantoin was made with an acidic from of a cation-exchange resin. (Amberlite IR-120) 4. Separation of the cleaved thiohydantoin and the parent peptide less one amino acid moiety was made by chromatography on a Sephadex G-10 column. 5. The peptide fraction was concentrated by freezedrying. 6. Thiohydantoin derivative of carboxyl terminal amino acid residue was introduced with a direct inlet probe in methanol solution.
For biohydrogen production, hydrogenase is a key enzyme. In the present work we performed search of [NiFe]-hydrogenases from hydrogen producing microorganisms using degenerate polymerase chain reaction (PCR) strategy. Degenerate primers were designed from the conserved region of [NiFe]-hydrogenase group I especially on structural genes encoding for catalytic subunit of [NiFe]-hydrogenase from bacteria producing hydrogen. Most of [NiFe]-hydrogenase (group I) are expressed via complex mechanism with aid of auxiliary protein and localized through twin-arginine translocation pathway. [NiFe]-hydrogenase is composed of large and small subunits for catalytic activity. It is known that only small subunit has signal peptide for periplasmic localization and large & small subunitscome together before localization. During this process, large subunit is treated by endopeptidase for maturation. Based on these information we used signal peptide sequence and C-terminal of large subunit by recognized by endopeptidase as templates for degenerate primers. About 2,900 bp of PCR products were successfully amplified using the designed degenerate primers from genomic DNAs of several microorganisms. The amplified PCR products were inserted into T-vector and then sequenced to confirm.
A novel harpin-like protein, HpaXm, was described from cotton leaf blight bacteria, Xanthomonas citri subsp. malvacearum. The hpaXm was found to be localized between hrp2 and hrcC. A phylogenetic analysis of the complete amino acid sequence or solely the 13 highly conserved residues $H_2N$-SEKQLDQLLTQLI-COOH in the N-terminal $\alpha$-helix indicates that HpaXm is evolutionarily closer to HpaGXag and HpaXac than to Hpa1Xoo and Hpa1Xoc. A synthesized peptide containing two heptads, 39-LDQLLTQLIMALLQ-52, from the N-terminal a-helical region of HpaXm displayed comparable activity in inducing a hypersensitive response, but two other synthesized derivatives, $HpaXm{\Delta}T44C$ and $HpaXm{\Delta}M48Q$, showed reduced HR-triggering activity. The data from a GST trap test revealed that HpaXm was released into the extracellular medium, hpaXm mutant deficient for the leader peptide (1-MNSLNTQIGANSSFL-15) was unable to be secreted outside cells but still induced HR in tobacco leaves.
Angiotensin I-converting enzyme (ACE) inhibitors have generally been very useful to remedy or prevent hypertension. This study describes the extraction and characterization of an ACE inhibitor from the fruiting body of Pholiota adiposa ASI 24012, which can be used as an antihypertensive drug. The maximal ACE inhibitory activity $(IC_{50};0.25mg)$ was obtained when the fruiting body of Pholiota adiposa ASI 24012 was extracted with distilled water at $30^{\circ}C$ for 12 h. After the purification of ACE inhibitor with ultrafiltration, Sephadex G-25 column chromatography, and reverse-phase HPLC, an active fraction with an $IC_{50}$ of 0.044 mg was obtained. The purified ACE inhibitory peptide was a novel pentapeptide, showing very little similarity to other ACE inhibitory peptide sequences. The molecular mass of the purified ACE inhibitor was estimated to be 414 daltons with a sequence of Gly-Glu-Gly-Gly-Pro, and showed a clear antihypertensive effect on spontaneously hypertensive rats (SHR) at a dosage of 1 mg/kg.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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