Young Hyun Che;In Young Choi;Chan Eui Song;Chulsoo Park;Seung Kwon Lim;Jeong Hee Kim;Su Haeng Sung;Jae Hoon Park;Sun Lee;Yong Jun Kim
International Journal of Stem Cells
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v.16
no.3
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pp.269-280
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2023
Background and Objectives: The colonic epithelial layer is a complex structure consisting of multiple cell types that regulate various aspects of colonic physiology, yet the mechanisms underlying epithelial cell differentiation during development remain unclear. Organoids have emerged as a promising model for investigating organogenesis, but achieving organ-like cell configurations within colonic organoids is challenging. Here, we investigated the biological significance of peripheral neurons in the formation of colonic organoids. Methods and Results: Colonic organoids were co-cultured with human embryonic stem cell (hESC)-derived peripheral neurons, resulting in the morphological maturation of columnar epithelial cells, as well as the presence of enterochromaffin cells. Substance P released from immature peripheral neurons played a critical role in the development of colonic epithelial cells. These findings highlight the vital role of inter-organ interactions in organoid development and provide insights into colonic epithelial cell differentiation mechanisms. Conclusions: Our results suggest that the peripheral nervous system may have a significant role in the development of colonic epithelial cells, which could have important implications for future studies of organogenesis and disease modeling.
Ju-Hyun Lee;Mohammed R. Shaker;Si-Hyung Park;Woong Sun
International Journal of Stem Cells
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v.16
no.4
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pp.385-393
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2023
In vertebrates, the entire central nervous system is derived from the neural tube, which is formed through a conserved early developmental morphogenetic process called neurulation. Although the perturbations in neurulation caused by genetic or environmental factors lead to neural tube defects (NTDs), the most common congenital malformation and the precise molecular pathological cascades mediating NTDs are not well understood. Recently, we have developed human spinal cord organoids (hSCOs) that recapitulate some aspects of human neurulation and observed that valproic acid (VPA) could cause neurulation defects in an organoid model. In this study, we identified and verified the significant changes in cell-cell junctional genes/proteins in VPA-treated organoids using transcriptomic and immunostaining analysis. Furthermore, VPA-treated mouse embryos exhibited impaired gene expression and NTD phenotypes, similar to those observed in the hSCO model. Collectively, our data demonstrate that hSCOs provide a valuable biological resource for dissecting the molecular pathways underlying the currently unknown human neurulation process using destructive biological analysis tools.
Rian Kang;Soomin Park;Saewoon Shin;Gyusoo Bak;Jong-Chan Park
BMB Reports
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v.57
no.7
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pp.311-317
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2024
Brain organoid is a three-dimensional (3D) tissue derived from stem cells such as induced pluripotent stem cells (iPSCs) embryonic stem cells (ESCs) that reflect real human brain structure. It replicates the complexity and development of the human brain, enabling studies of the human brain in vitro. With emerging technologies, its application is various, including disease modeling and drug screening. A variety of experimental methods have been used to study structural and molecular characteristics of brain organoids. However, electrophysiological analysis is necessary to understand their functional characteristics and complexity. Although electrophysiological approaches have rapidly advanced for monolayered cells, there are some limitations in studying electrophysiological and neural network characteristics due to the lack of 3D characteristics. Herein, electrophysiological measurement and analytical methods related to neural complexity and 3D characteristics of brain organoids are reviewed. Overall, electrophysiological understanding of brain organoids allows us to overcome limitations of monolayer in vitro cell culture models, providing deep insights into the neural network complex of the real human brain and new ways of disease modeling.
Park, Joo-Hung;Lee, Jeong-Min;Lee, Eun-Jin;Hwang, Won-Bhin;Kim, Da-Jeong
Molecules and Cells
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v.41
no.4
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pp.290-300
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2018
Using an in vitro model of intestinal organoids derived from intestinal crypts, we examined effects of indole-3-carbinol (I3C), a phytochemical that has anticancer and aryl hydrocarbon receptor (AhR)-activating abilities and thus is sold as a dietary supplement, on the development of intestinal organoids and investigated the underlying mechanisms. I3C inhibited the in vitro development of mouse intestinal organoids. Addition of ${\alpha}$-naphthoflavone, an AhR antagonist or AhR siRNA transfection, suppressed I3C function, suggesting that I3C-mediated interference with organoid development is AhR-dependent. I3C increased the expression of Muc2 and lysozyme, lineage-specific genes for goblet cells and Paneth cells, respectively, but inhibits the expression of IAP, a marker gene for enterocytes. In the intestines of mice treated with I3C, the number of goblet cells was reduced, but the number of Paneth cells and the depth and length of crypts and villi were not changed. I3C increased the level of active nonphosphorylated ${\beta}$-catenin, but suppressed the Notch signal. As a result, expression of Hes1, a Notch target gene and a transcriptional repressor that plays a key role in enterocyte differentiation, was reduced, whereas expression of Math1, involved in the differentiation of secretory lineages, was increased. These results provide direct evidence for the role of AhR in the regulation of the development of intestinal stem cells and indicate that such regulation is likely mediated by regulation of Wnt and Notch signals.
Park, Kang Won;Yang, Hyeon;Wi, Hayeon;Ock, Sun A;Lee, Poongyeon;Hwang, In-Sul;Lee, Bo Ram
Journal of Animal Reproduction and Biotechnology
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v.37
no.2
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pp.136-143
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2022
Recent progress has been made to establish intestinal organoids for an in vitro model as a potential alternative to an in vivo system in animals. We previously reported a reliable method for the isolation of intestinal crypts from the small intestine and robust three-dimensional (3D) expansion of intestinal organoids (basal-out) in adult bovines. The present study aimed to establish next-generation intestinal organoids for practical applications in disease modeling-based host-pathogen interactions and feed efficiency measurements. In this study, we developed a rapid and convenient method for the efficient generation of intestinal organoids through the modulation of the Wnt signaling pathway and continuous apical-out intestinal organoids. Remarkably, the intestinal epithelium only takes 3-4 days to undergo CHIR (1 µM) treatment as a Wnt activator, which is much shorter than that required for spontaneous differentiation (7 days). Subsequently, we successfully established an apical-out bovine intestinal organoid culture system through suspension culture without Matrigel matrix, indicating an apical-out membrane on the surface. Collectively, these results demonstrate the efficient generation and next-generation of bovine intestinal organoids and will facilitate their potential use for various purposes, such as disease modeling, in the field of animal biotechnology.
Junhyoung Lee;Jimin Park;Sanghun Kim;Esther Han;Sungho Maeng;Jiyou Han
Journal of Life Science
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v.34
no.5
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pp.339-355
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2024
The pulmonary system is a highly complex system that can only be understood by integrating its functional and structural aspects. Hence, in vivo animal models are generally used for pathological studies of pulmonary diseases and the evaluation of inhalation toxicity. However, to reduce the number of animals used in experimentation and with the consideration of animal welfare, alternative methods have been extensively developed. Notably, the Organization for Economic Co-operation and Development (OECD) and the United States Environmental Protection Agency (USEPA) have agreed to prohibit animal testing after 2030. Therefore, the latest advances in biotechnology are revolutionizing the approach to developing in vitro inhalation models. For example, lung organ-on-a-chip (OoC) and organoid models have been intensively studied alongside advancements in three-dimensional (3D) bioprinting and microfluidic systems. These modeling systems can more precisely imitate the complex biological environment compared to traditional in vivo animal experiments. This review paper addresses multiple aspects of the recent in vitro modeling systems of lung OoC and organoids. It includes discussions on the use of endothelial cells, epithelial cells, and fibroblasts composed of lung alveoli generated from pluripotent stem cells or cancer cells. Moreover, it covers lung air-liquid interface (ALI) systems, transwell membrane materials, and in silico models using artificial intelligence (AI) for the establishment and evaluation of in vitro pulmonary systems.
A 48-year-old man whose symptom had intermittent right chest pain and x-ray film revealed large mass on right mid lung fields was examined. A conclusive histological diagnosis of large cell neuroendocrine carcinoma was made following bilobectomy. Large cell neuroendocrine carcinoma is an uncommon pulmonary neoplasm, which is characterized by large cell size and low nuclear to cytoplasmic. This tumor shows prominent organoid nests of tumor cells with peripheral palisading and rosette-like structures. We experienced one case of large cell neuroendocrine carcinoma of lung and report it with references.
We describe here a multicentric spontaneous malignant schwannoma obtained from one male F344 rat, and this animal was the subject of a carcinogenicity study for which it was treated with diisodecyl phthalate. The animal of the control group not treated with diisodecyl phthalate showed dyspnea and severe lordosis. On the necropsy, two tan, firm, encapsulated masses were observed in the subcutis of the lumbosacral region and the left inguinal region of the abdominal cavity, respectively; the masses were $25{\times}17{\times}8$ mm and $16{\times}14{\times}8$ mm in size, respectively. Histologically, the tumor consisted of spindle and pleomorphic cells that grew in various patterns, that was, sweeping fascicles and herringbone and local organoid patterns. The pleomorphic neoplastic cells had more than two nuclei. Additionally, the diagnosis of malignant schwannoma was confirmed by the immune reactivity of the tumor cells for S-100 protein.
Severe acute respiratory syndrome-coronavirus 2 (SARS-CoV-2) is a novel virus that causes coronavirus disease 2019 (COVID-19). To understand the identity, functional characteristics and therapeutic targets of the virus and the diseases, appropriate infection models that recapitulate the in vivo pathophysiology of the viral infection are necessary. This article reviews the various infection models, including Vero cells, human cell lines, organoids, and animal models, and discusses their advantages and disadvantages. This knowledge will be helpful for establishing an efficient system for defense against emerging infectious diseases.
Urological cancers such as kidney, bladder, prostate, and testicular cancers are the most common types of cancers worldwide with high mortality and morbidity. To date, traditional cell lines and animal models have been broadly used to study pre-clinical applications and underlying molecular mechanisms of urological cancers. However, they cannot reflect biological phenotypes of real tissues and clinical diversities of urological cancers in vitro system. In vitro models cannot be utilized to reflect the tumor microenvironment or heterogeneity. Cancer organoids in three-dimensional culture have emerged as a promising platform for simulating tumor microenvironment and revealing heterogeneity. In this review, we summarize recent advances in prostate and kidney cancer organoids regarding culture conditions, advantages, and applications of these cancer organoids.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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