Sequence analysis of the Chlorella virus SS-2 revealed one putative nuclease gene that is 807 bp long and encodes a 31kDa protein. Multiple sequence alignment analysis reveals the presence of highly conserved PD-(D/E)XK residues in the encoded protein. The gene cloned into an expression vector was expressed as a His-tagged fusion protein in chaperone containing pKJE7 cells. The recombinant protein was purified using a His-Trap chelating HP column and used for functional analysis. Exonuclease activity of the SS-2 nuclease was detected when the DNA substrates, such as linear ssDNA, PCR amplicon, linear dsDNA with 5'-overhang ends, 3'-overhang ends, or blunt ends were used. Covalently closed circular DNA was also degraded by the SS-2 recombinant protein, suggesting that the SS-2 nuclease has an endonuclease activity. Stable activity of SS-2 nuclease was observed between $10^{\circ}C$ and $50^{\circ}C$. The optimum pH concentrations for the SS-2 nuclease were pH 6.0-8.5. Divalent ions inhibited the SS-2 nuclease activity.
The proliferation and differentiation signals of myelogeneous U937 cells are provided by extracellular stimuli, such as lipopolysaccharide (LPS) and phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA). In a DNA-native-polyacrylamide gel assay system, we demonstrated that a particular nuclease activity is expressed in PMA-stimulated U937 cells and secreted into the culture medium. The nuclease activity was induced in U937 cells by LPS treatment, while the secretion of the enzyme was undetected in the culture medium. Therefore, it is likely that the expression and secretion of the particular nuclease in U937 cells are controlled by extracellular stimulations, such as PMA and LPS treatment.
Endonuclease-sensitive sites detected by T4 endonuclease V or UvrABC nuclease treatments were compared in the dihydrofolate reductase gene of UV-irradiated Chinese hamster ovary B-11 cells. The number of endonuclease-sensitive sites detected by T4 endonuclease V treatment followed by NaOH denaturation was twice that of formamide denaturation. Repeated treatment of damaged genomic DNA with T4 endonuclease V resulted in no further increase in the number of endonuclease-sensitive sites detected. The numbers of endonuclease-sensitive sites detected by UvrABC nuclease using each denaturation condition were similar. Sequential treatment with the two endonucleases using formamide denaturation resulted in twice the number of endonuclease-sensitive sites detected by treatment of each nuclease alone. Due to a lack of AP endonuclease activity these results suggest the presence of T4 endonuclease V-sensitive sites which could be complemented by alkaline gel separation or by UvrABC nuclease treatment.
A total of 251 clinical isolates (human origin, 43 strains and bovine udder origin 208 strains) of the Staphylococcus that fermented mannitol aerobically were tested for their ability to produce coagulase, DNase, and thermostable nuclease. Of these, 158 isolates coagulated human or bovine plasma, produced DNase, and thermostable, nuclease and were identified as St. aureous, 146 of which produced a 1+ to 3+ clot. The remaining 12 isolated produced a -clot in citrate treated plasma but produced 1+ to 3+ clot in ethylenedi-aminetetraacetic acid (EDTA) treated plasma. It was found that 7 coagulase positive isolates failed to produced thermostable nuclease. In these organisms, we found out of the clot formation is not by coagulase activity but utilization of citrate, because EDTA treated plasma is not coagulated. Among 93 isolates which did not coagulate citrate-or EDTA treated plasma and thermostable nuclease negative, 28 strains produced DNase were identified as St. epidermidis, and other strains were not identification further. It was found that thermostable nuclese production appears to be a consistent property of St. aureus and the test is easy to perform, is rapid became quite distinct within 2 to 4 hour, and is not influenced by as many factors and variations as the coagulase test.
A gene encoding an extracellular nuclease was cloned from Aeromonas hydrophila strain ATCC14715. The gene was overexpressed and the enzyme was purified by fusing to maltose binding protein. It was shown that the protein possessed DNase activity on both single-stranded and double-stranded DNAs. It exhibited both endo- and exonuclease activities. It was also shown that the protein had an RNase activity. Possible roles of this extracellular enzyme in the A. hydrophila life cycle are discussed.
Extracellular nuclease(s) in buffalo rumen fluid were purified from strained rumen fluid by a procedure involving Seitz filtration, acetone fractionation and gel filtration on Sephadex G-100. The enzyme resolved into two peaks exhibiting both DNase and RNase activities. The molecular weight of enzyme corresponding to peaks I and II were approximately 30,000 and 12,000 respectively. The properties of enzymes from the two peaks, however, were same. Optimum temperature for both DNase and RNase activities was at $50^{\circ}C$. Whereas DNase activity was stable upto $60^{\circ}C$, RNase activity was stable only up to $50^{\circ}C$. DNase activity recorded two pH optima, one at pH 5.5 and the other at pH 7.0. RNase activity recorded a broad pH optimum between pH 6.0-8.0. pH stability of the enzyme coincided with pH optima for both the activities. DNase activity was stimulated by $Mg^{2+}$ and $Mn^{2+}$ and inhibited by $Fe^{2+}$, $Zn^{2+}$, $Hg^{2+}$ and $Ag^+$. RNase activity was also stimulated by $Mg^{2+}$ and $Mn^{2+}$ and inhibited by $Cu^{2+}$, $Fe^{2+}$, $Zn^{2+}$, $Hg^{2+}$ and $Ag^+$. Reducing agents stimulated both the activities.
Kim, Do-Hyung;Kim, Jeong-Hoon;Park, Byoung Chul;Lee, Do Hee;Cho, Sayeon;Park, Sung Goo
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.35
no.10
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pp.3005-3008
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2014
Human ChlR1 protein (hChlR1), a member of the cohesion establishment factor family, plays an important role in the segregation of sister chromatids for maintenance of genome integrity. We previously reported that hChlR1 interacts with hFen1 and stimulates its nuclease activity on the flap-structured DNA substrate covered with RPA. To elucidate the relationship between hChlR1 and Okazaki fragment processing, the effect of hChlR1 on in vitro nuclease activities of hFen1 and hDna2 was examined. Independent of ATPase activity, hChlR1 stimulated endonuclease activity of hFen1 but not that of hDna2. Our findings suggest that the acceleration of Okazaki fragment processing near cohesions may aid in reducing the size of the replication machinery, thereby facilitating its entry through the cohesin ring.
Apoptotic DNA fragmentation, the hallmark of apoptosis, is mediated primarily by caspase-activated DFF40 (CAD) nuclease. DFF40 exists as a heterodimer with DFF45 (ICAD), which is a specific chaperone and inhibitor of DFF40 under normal conditions. To understand the mechanism through which the DFF40/DFF45 system is regulated, we analyzed the structural and biochemical properties of apoptotic DNA fragmentation mediated by DFF40/DFF45. Using limited proteolysis, we show that residues 1-281 of DFF45 form a rigid, crystallized domain, whereas the loop formed by residues 277-281 is accessible by trypsin. These results show that the C-terminal helix formed by residues 281-300 is dynamic and necessary for the chaperone activity of DFF45, but not for inhibition of DFF40.
Kim, Woe-Yeon;Lee, Hoon-Sil;Suh, Sook-Jae;Cho, Moo-Je;Lee, Sang-Yeol;Kim, Jae-Won
Korean Journal of Microbiology
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v.32
no.2
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pp.147-154
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1994
Nuclease was secreted to the environmental media from the Escherichia coli JM107 tranformant harboring the extracellular nuclease gene of Serratia marcescens in the plasmid of pNUC4. Under the growth conditions, the amount of secreted enzyme was increased in parallel with bacterial growth conditions, the amount of secreted enzyme was increased in parallel with bacterial growth. The enzyme was purified using chromatofraphic procedures of Matrex green gel and heparin agarose affinity gel, resulted in 50-fold purification with 15% recovery of the enzyme. The apparent molecular weight of the enzyme was estimated to be 29Kda by sodium dodecylsulfate denaturing gel electrophoresis. Using the purified enzyme, polyclonal antibody was obtained from the rabbit. The specificity of the antibody was confirmed by immunoblotting and immunoprecipitaion. For the investigation of cellular distribution of the enzyme, cells were fractionated into three fractions; cytoplasm, periplasm and extracellular fluid. While more than 80% of the enzymatic activity was detected in the extracellular fluid and periplasm, a little was found in the cytoplasm, indicating that the enzyme was likely to be immediately exported to the membrane for excretion after biosynthesis. These results were confirmed again by immunocytochemistry technique using the antibody.
3D8 single chain variable fragment (scFv) is a recombinant monoclonal antibody with nuclease activity that was originally isolated from autoimmune-prone MRL mice. In a previous study, we analyzed the nuclease activity of 3D8 scFv and determined that a HeLa cell line expressing 3D8 scFv conferred resistance to herpes simplex virus type 1 (HSV-1) and pseudorabies virus (PRV). In this study, we demonstrate that 3D8 scFv could be delivered to target tissues and cells where it exerted a therapeutic effect against PRV. PRV was inoculated via intramuscular injection, and 3D8 scFv was injected intraperitoneally. The observed therapeutic effect of 3D8 scFv against PRV was also supported by results from quantitative reverse transcription polymerase chain reaction, southern hybridization, and immunohistochemical assays. Intraperitoneal injection of 5 and $10{\mu}g$ 3D8 scFv resulted in no detectable toxicity. The survival rate in C57BL/6 mice was 9% after intramuscular injection of 10 $LD_{50}$ PRV. In contrast, the 3D8 scFv-injected C57BL/6 mice showed survival rates of 57% ($5{\mu}g$) and 47% ($10{\mu}g$). The results indicate that 3D8 scFv could be utilized as an effective antiviral agent in several animal models.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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