To improve the erythritol productivity of Penicillium sp. KJ81, mutants were obtained using UV irradiation and NTG treatment Among these mutants, Penicillium sp. KJ-UV29 revealed no morphological changes, yet was superior to the wild strain in the following three points: (1) Penicillium sp. KJ-UV29 produced more erythritol than the wild strain under the same conditions, (2) no foam was produced during cultivation, unlike the wild strain, and (3) the mutant produced a Significantly lower amount of glycerol. Penirillium sp. KJ-UV29 produced as much as 15.1 g/L of erythritol, whereas the wild-type Penirillium sp. KJ81 only produced 11.7 g/L. Penicillium sp. KJ-UV29 only generated 6.1 g/L of glycerol, compared to 19.4 g/L produced by the wild strain. When investigating the optimal culture conditions for erythritol production by the mutant strain Penicillium sp. KJ-UV89, sucrose was identified as the most effective carbon source, and the mutant was even able to produce erythritol in a 70% sucrose-containing medium, although a 30% sucrose medium exhibited the highest productivity. The production of erythritol by Penirillium sp. KJ-UV29 was also significantly increased by the addition of ammonium carbonate, potassium nitrate, and sodium nitrate. Accordingly, under optimal conditions, Penicillium sp. KJ-UV29 produced 45.2 g/L of erythritol in a medium containing 30% sucrose, 0.5% yeast extract, 0.5% (NH$_4$)$_2$C$_2$O$_4$, 0.1% KNO$_3$, 0.1% NaNO$_3$, and 0.01% FeSO$_4$ with 1 vvm aeration and 200 rpm agitation at 37$^{\circ}C$ for 7 days in a 5-L jar fermentor.
A bacterial strain KN, which highly produced a protease, was isolated from several soil samples and identified to to belong to the genus Bacillus. We selected mutant strain Bacillus sp. KN103N, which was hyperproducer of protease and was resistant to D-cyclowerine, from the strain KN by several steps of mutagenesis. Neutral protease productivity of mutant strain KN103N was about 55 times as much as that of the original strain KN. The optimum pH and temperature for the enzyme activity were 7.0 and 50$^{\circ}C$, respectively and the enzyme was relatively stable at pH6.0~8.0 and below 40$^{\circ}C$. The enzyme was inactivated by EDTA, but not by DFP. These results indicate that the enzyme from Bacillus sp. KN103N was a neutral (metallo-) protease.
A bacterial strain No.71, which produced alkaline protease, was isolated from soil and identified to the genus Bacillus. With the successive mutation, a mutant strain No. M-71, having high alkaline protease productivity, was obtanined from the parental strain No 71. Alkaline protease productivity of mutant strain No. M-71 was about 50 times as much as that of the parental strain No.71. The enzyme preparations showed strong activities toward casein, the optimum pH being 11.0 and the optimum temperature about $55^{\circ}C$.
A fungal strain producing a high level of cellulase was selected from 320 fungal isolates and identified as Aspergillus sp. This strain was further improved for cellulase production by sequential treatments by two repeated rounds of $\gamma$-irradiation of $Co^{60}$, ultraviolet treatment and four repeated rounds of treatment with N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine. The best mutant strain, Aspergillus sp. XTG-4, was selected after screening and the activities of carboxymethyl cellulase, filter paper cellulase and $\beta$-glucosidase of the cellulase were improved by 2.03-, 3.20-, and 1.80-fold, respectively, when compared to the wild type strain. After being subcultured 19 times, the enzyme production of the mutant Aspergillus sp. XTG-4s was stable.
S. cerevisiae HBC52와 S, diataticus K114 의 rare mating 에 의해 개발된 HCS 균주들은 크기가 약 $13\mu\textrm{m}$ karyotype 분석결과 K114 균주에만 있는 약 1150kb 분자량을 가지는 염색체 band를 유지하였으며 전분을 분해하여 halo 를 형성하였다. Glucoamylase 활성은 약 2.7~3.4 unti/ml 를 가진 균주임이 밝혀졌으며 당 발효실험과 응집성 실험을 수행한 결과 HBC52 균주와 유사한 당 발효특성을 보이고 응집성 특성도 약응집성의 floculation type으로 비슷하였다. 그리고 HCS 균주의 포자형성과 피막형성 유무 실험에서는 양조효모인 HBC52 균주와 같이 포자가 형성되지 않았으며, 피막도 형성되지않았다. 균주들의 최종당도 실험은 HBC52균주가 약 68%의 발효수준을 나타냈고, HCS 균주들은 이 보다 높은 76~78%의 수준을 보였따. 즉 HBC52 균주가 최종당도($ 2.00^{\circ}$P)를 보인 반면 HCS 균주들은 ($0.7~0.93^{\circ}$P)를 보이는 결괄르 나타내어 맥주양조에서 low carbohydrate beer를 생산할 수있음이 확인되었다.
The role of glyoxylate bypass in a lysine-producing Corynebacterium lactofermentum strain was analyzed. Unlike the wild type, the strain expressed enzymes of glyoxylate bypass during growth in the fermentation broth containing glucose as the carbon source. To evaluate the importance of glyoxylate bypass in the strain, we disrupted chromosomal aceA by using a cloned fragment of the gene. Site-specific disruption of aceA which codes for the isocitrate lyase, the first enzyme of the bypass, was confirmed by Southern blot analysis. The aceA mutant strain completely lost isocitrate lyase activity and ability to grow in a minimal medium containing acetate as the sole carbon source. The mutant strain was similar to its parental strain in growth characteristics and produced comparable amounts of lysine in shake flasks containing glucose as the carbon source. The amount of oxaloacetate accumulated in the fermentation medium was similar for both strains, suggesting that expression of glyoxylate bypass does not necessarily lead to the increase in intracellular oxaloacetate. These data clearly demonstrate that glyoxylate bypass does not function as one of the routes of carbon supply for lysine production in the strain. It appears that the leakiness of the glyoxylate bypass in the strain might be the result of a secondary mutation which arose during previous strain development by random mutagenesis.
Penicillin amidase (EC 3.5.1.11) was produced by a mutant strain of Bacillius megaterium ATCC 14945. Hydroxylamine assay method for the determination of 6-APT was modified by using "HCl addition techniques" in order to simplify the time consuming orginal assay method without sacrifice of accuracy. Using the new mutant strain, the effects of fermentation conditions on enzyme production were studied.e studied.
Since the original productivity of new aminopeptidase M inhibitors MR-387A and B by Streptomyces sp. SL-387 (KCTC 0102BP) was not enough for further chemical and biological evaluation, mutation of parent strain by the treatment of N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine was performed in order to obtain a clone with greater inhibitory activity. Mutant N-3 was selected due to a 6-fold greater productivity (40 $\mu$g/ml) than that of the wild type(6.7 $\mu$g/ml). This mutant was resistant to 3,4-dehydro-DL-proline, an antimetabolite of proline, with 25 $\mu$g/ml of minimum inhibitory concentration. Furthermore, the characteristic morphological change from spiral spore chain in wild type to straight in mutant was observed. An aminopeptidase M nhibitor different from MR-387A and B was isolated from the culture broth of the mutant. This inhibitor was composed of 2 proline, 1 valine, and an unknown amino acid which is presumably 3-amino-4-phenylbutanoic acid. IC$_{50}$ value (89.1 $\MU$g/ml) of the purified inhibitor was lower than that of other inhibitors, which may be due to the absence of 2(S)-hydroxyl group within the structure of 3-amino-4-phenyl- butanoic acid.
Baek, Jaewon;Choi, Jong-il;Park, Hyun;Lim, Sangyong;Park, Si Jae
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제26권12호
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pp.2066-2075
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2016
In this study, an enhanced lipid-producing mutant strain of the microalga Chlamydomonas reinhardtii was developed by gamma irradiation. To induce the mutation, C. reinhardtii was gamma irradiated at a dose of 400 Gy. After irradiation, the surviving cells were stained with Nile red. The mutant (Cr-4013) accumulating 20% more lipid than the wild type was selected. Thin-layer chromatography revealed the triglyceride and free fatty acid contents to be markedly increased in Cr-4013. The major fatty acids identified were palmitic acid, oleic acid, linoleic acid, and linolenic acid. Random amplified polymeric DNA analysis showed partial genetic modifications in Cr-4013. To ascertain the changes of protein expression in the mutant strain, two-dimensional electrophoresis was conducted. These results showed that gamma radiation could be used for the development of efficient microalgal strains for lipid production.
Quorum sensing and the stringent response are well-known regulation systems for the expression of virulence genes in enterohemorrhagic Escherichia coli (EHEC). However, how these two systems interact is not well known. E. coli strains with mutations in two regulation systems, ${\Delta}luxS$ (ECM101) and ${\Delta}luxS{\Delta}relA{\Delta}spoT$ (ECM201), and the ${\Delta}luxS$ complement strain to ECM201 (ECM202) were created from EHEC O157:H7 EDL933 to investigate how the regulatory systems interact. The phenotypic changes of the mutant strains were characterized and compared with the wild type. The mutant strains exhibited no obvious growth defects, although acid resistance and cellular cytotoxicity were decreased significantly in all the mutant strains. Phenotypic characterization revealed that mutations in the stringent response system (ECM201 and ECM202) influenced the metabolic (defective utilization of arabinose and L-sorbose) and enzymatic activities (decreased trypsin activity, and increased ${\alpha}$-glucosidase activity). In contrast, the quorum sensing system mutant (ECM101) did not display these phenotypes. The motility of the quorum sensing system mutant (ECM101) was unchanged, but mutation in the stringent response system influenced the motility. Our results suggest that quorum sensing interacts with the stringent response regulation system.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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