Non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD) has become the most prevalent liver disease in parallel with worldwide epidemic of obesity. Reactive oxygen species (ROS) contributes to the development and progression of NAFLD. Peroxisomes play an important role in fatty acid oxidation and ROS homeostasis, and catalase is an antioxidant exclusively expressed in peroxisome. The present study examined the role of endogenous catalase in early stage of NAFLD. 8-week-old male catalase knock-out (CKO) and age-matched C57BL/6J wild type (WT) mice were fed either a normal diet (ND: 18% of total calories from fat) or a high fat diet (HFD: 60% of total calories from fat) for 2 weeks. CKO mice gained body weight faster than WT mice at early period of HFD feeding. Plasma triglyceride and ALT, fasting plasma insulin, as well as liver lipid accumulation, inflammation (F4/80 staining), and oxidative stress (8-oxo-dG staining and nitrotyrosine level) were significantly increased in CKO but not in WT mice at 2 weeks of HFD feeding. While phosphorylation of Akt (Ser473) and $PGC1{\alpha}$ mRNA expression were decreased in both CKO and WT mice at HFD feeding, $GSK3{\beta}$ phosphorylation and Cox4-il mRNA expression in the liver were decreased only in CKO-HF mice. Taken together, the present data demonstrated that endogenous catalase exerted beneficial effects in protecting liver injury including lipid accumulation and inflammation through maintaining liver redox balance from the early stage of HFD-induced metabolic stress.
BACKGROUND/OBJECTIVES: Non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD) is becoming an important public health problem as metabolic syndrome and type 2 diabetes have become epidemic. In this study we investigated the protective effect of Cordyceps militaris (C. militaris) against NAFLD in an obese mouse model. MATERIALS/METHODS: Four-week-old male ob/ob mice were fed an AIN-93G diet or a diet containing 1% C. militaris water extract for 10 weeks after 1 week of adaptation. Serum glucose, insulin, free fatty acid (FFA), alanine transaminase (ALT), and proinflammatory cytokines were measured. Hepatic levels of lipids, glutathione (GSH), and lipid peroxide were determined. RESULTS: Consumption of C. militaris significantly decreased serum glucose, as well as homeostasis model assessment for insulin resistance (HOMA-IR), in ob/ob mice. In addition to lowering serum FFA levels, C. militaris also significantly decreased hepatic total lipids and triglyceride contents. Serum ALT activities and tumor necrosis factor-${\alpha}$ (TNF-${\alpha}$) and interleukin-6 (IL-6) levels were reduced by C. militaris. Consumption of C. militaris increased hepatic GSH and reduced lipid peroxide levels. CONCLUSIONS: These results indicate that C. militaris can exert protective effects against development of NAFLD, partly by reducing inflammatory cytokines and improving hepatic antioxidant status in ob/ob mice.
Xu, C.L.;Wang, Y.H.;Huang, Y.H.;Liu, J.X.;Feng, J.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.20
no.6
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pp.811-816
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2007
Adipocyte fatty acid-binding protein (A-FABP), which belongs to the FABP family, plays an essential role in long-chain fatty acid uptake and metabolic homeostasis, especially in adipose tissue. The pattern of A-FABP gene mRNA expression in different growth stages and its relation to intramuscular fat (IMF) accretion in pigs was studied. Fifteen female $Duroc{\times}Landrace{\times}Yorkshire$ pigs in five groups of three pigs each, weighing 1, 30, 50, 70 and 90 kg were used to study developmental gene mRNA expression of A-FABP in various adipose tissues by means of semi-quantitative RT-PCR. Results showed that A-FABP mRNA levels in subcutaneous and ventral adipose tissues first increased from 1 to 50 kg, then gradually declined from 50 to 90 kg. Moreover, the rank order of A-FABP mRNA levels determined in three adipose tissues was as follows: subcutaneous adipose>ventral adipose>mesenteric adipose. A-FABP mRNA expression in mesenteric adipose tissue was constant during development. In addition, a positive correlation from 1 to 50 kg BW pigs and a negative correlation from 50 to 90 kg BW between A-FABP mRNA levels in subcutaneous and ventral adipose and IMF content were found.
Quercetin is a flavonoid molecule that is known to tie in various sources of natural products such as vegetables and fruits. It has been proven that quercetin plays a crucial role in the prevention of colon cancer as well as homeostasis as radical scavenger in human body. It is also well-known that glycosidases, including $\alpha$-glucosidase, are involved in a variety of degenerative metabolic disorders. In the course of screening useful $\alpha$-glucosidase inhibitors, we screened out quercetin as a $\alpha$-glucosidase inhibitor from chemical libraries. Quercetin was shown to be a reversible, slow-binding, and noncompetitive inhibitor of yeast a-glucosidase with a K$_i$ value of $6.3\times10^{-8}$ M when it was included with an enzyme mixture. Together, these results show that quercetin has potential in treating disorders including diabetes, although the further mechanistic study is needed.
Peroxisome proliferator-activated receptors (PPARs) are orphan nuclear hormone receptors that are known to control the expression of genes that are involved in lipid homeostasis and energy balance. PPARs activate gene transcription in response to a variety of compounds, including hypolipidemic drugs. Most of these compounds have high affinity to the ligand-binding domain (LBD) of PPARs and cause a conformational change within PPARs. As a result, the receptor is converted to an activated mode that promotes the recruitment fo co-activators such as the steroid receptor co-activator-1 (SRC-1). Based on the activation mechanism of PPARs (the ligand binding to $PPAR{\gamma}$ induces interactions of the receptor with transcriptional co-activators), we performed Western blot and ELISA. These showed that the indomethacin, a $PPAR{\gamma}$ ligand, increased the binding between $PPAR{\gamma}$ and SRC-1 in a ligand dose-dependent manner. These results suggested that the in vitro conformational change of $PPAR{\gamma}$ by ligands was also induced, and increased the levels of the ligand-dependent interaction with SRC-1. Collectively, we developed a novel and useful ELISA system for the mass screening of $PPAR{\gamma}$ ligands. This screening system (based on the interaction between $PPAR{\gamma}$ and SRC-1) may be a promising system in the development of drugs for metabolic disorders.
Type 2 diabetes mellitus (T2DM) is a chronic metabolic disease characterized by lack of insulin and high glucose levels. T2DM can cause bone loss and fracture, thus leading to diabetic osteoporosis. Promoting osteogenic differentiation of osteoblasts may effectively treat diabetic osteoporosis. We previously reported that Sirtuin 1 (Sirt1), a $NAD^+$-dependent deacetylase, promotes osteogenic differentiation through downregulation of peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR) ${\gamma}$. We also found that miR-132 regulates osteogenic differentiation by downregulating Sirt1 in a $PPAR{\beta}/{\delta}$-dependent manner. The ligand-activated transcription factor, $PPAR{\alpha}$, is another isotype of the peroxisome proliferator-activated receptor family that helps maintain bone homeostasis and promot bone formation. Whether the regulatory role of $PPAR{\alpha}$ in osteogenic differentiation is mediated via Sirt1 remains unclear. In the present study, we aimed to determine this role and the underlying mechanism by using high glucose (HG) and free fatty acids (FFA) to mimic T2DM in MC3T3-E1 cells. The results showed that HG-FFA significantly inhibited expression of $PPAR{\alpha}$, Sirt1 and osteogenic differentiation, but these effects were markedly reversed by $PPAR{\alpha}$ overexpression. Moreover, siSirt1 attenuated the positive effects of $PPAR{\alpha}$ on osteogenic differentiation, suggesting that $PPAR{\alpha}$ promotes osteogenic differentiation in a Sirt1-dependent manner. Luciferase activity assay confirmed interactions between $PPAR{\alpha}$ and Sirt1. These findings indicate that $PPAR{\alpha}$ promotes osteogenic differentiation via the Sirt1-dependent signaling pathway.
Cetaceans (whales, dolphins, and porpoises) are aquatic mammals that experienced drastic changes during the transition from terrestrial to aquatic environment. Morphological changes include streamlined body, alterations in the face, transformation of the forelimbs into flippers, disappearance of the hindlimbs and the acquisition of flukes on the tail. For a prolonged diving, cetaceans acquired hypoxia-resistance by developing various anatomical and physiological changes. However, molecular mechanisms underlying these adaptations are still limited. CREB-binding protein (CREBBP) is a transcriptional co-activator critical for embryonic development, growth control, metabolic homeostasis and responses to hypoxia. Natural selection analysis of five cetacean CREBBPs compared with those from 15 terrestrial relatives revealed strong purifying selection, supporting the importance of its role in mammals. However, prediction for amino acid changes that elicit functional difference of CREBBP identified three cetacean specific changes localized within a region required for interaction with SRCAP and in proximal regions to KIX domain of CREBBP. Mutations in CREBBP or SRCAP are known to cause craniofacial and skeletal defects in human, and KIX domain of CREBBP serves as a docking site for transcription factors including c-Myb, an essential regulator of haematopoiesis. In these respects, our study provides interesting insights into the functional adaptation of cetacean CREBBP for aquatic lifestyle.
The1hepatic cell death induced by acetaminophen (APAP) is closely related to cellular adenosine triphosphate (ATP) depletion, which is mainly caused by mitochondrial dysfunction. Adenosine monophosphate (AMP)-activated protein kinase (AMPK) is a key sensor of low energy status. AMPK regulates metabolic homeostasis by stimulating catabolic metabolism and suppressing anabolic pathways to increase cellular energy levels. We found that the decrease in active phosphorylation of AMPK in response to APAP correlates with decreased ATP levels, in vivo. Therefore, we hypothesized that the enhanced production of ATP via AMPK stimulation can lead to amelioration of APAP-induced liver failure. A769662, an allosteric activator of AMPK, produced a strong synergistic effect on AMPK Thr172 phosphorylation with APAP in primary hepatocytes and liver tissue. Interestingly, activation of AMPK by A769662 ameliorated the APAP-induced hepatotoxicity in C57BL/6N mice treated with APAP at a dose of 400 mg/kg intraperitoneally. However, mice treated with APAP alone developed massive centrilobular necrosis, and APAP increased their serum alanine aminotransferase and aspartate aminotransferase levels. Furthermore, A769662 administration prevented the loss of intracellular ATP without interfering with the APAP-mediated reduction of mitochondrial dysfunction. In contrast, inhibition of glycolysis by 2-deoxy-glucose eliminated the beneficial effects of A769662 on APAP-mediated liver injury. In conclusion, A769662 can effectively protect mice against APAP-induced liver injury through ATP synthesis by anaerobic glycolysis. Furthermore, stimulation of AMPK may have potential therapeutic application for APAP overdose.
The balance between bone formation by osteoblasts and destruction of mineralized bone matrix by osteoclasts is important for bone homeostasis. The increase of osteoclast differentiation by RANKL induces bone diseases such as osteoporosis. Recent studies have shown that insulin is one of main factors mediating the cross-talk between bone remodeling and energy metabolism. However, the systemic examination of insulin-induced differential gene expression profiles in osteoclasts has not been extensively studied. Here, we investigated the global effects of insulin on osteoclast precursors at the level of gene transcription by microarray analysis. The number of genes that were up-regulated by ${\geq}1.5$ fold after insulin treatment for 6 h, 12 h, or 24 h was 76, 73, and 39; and 96, 83, and 54 genes were down-regulated, respectively. The genes were classified by 20 biological processes or 24 molecular functions and the number of genes involved in 'development processes' and 'cell proliferation and differentiation' was 25 and 18, respectively, including Inhba, Socs, Plk3, Tnfsf4, and Plk1. The microarray results of these genes were verified by real-time RT-PCR analysis. We also compared the effects of insulin and RANKL on the expression of these genes. Most genes had a very similar pattern of expressions in insulin- and RANKL-treated cells. Interestingly, Tnfsf4 and Inhba genes were affected by insulin but not by RANKL. Taken together, these results suggest a potential role for insulin in osteoclast biology, thus contributing to the understanding of the pathogenesis and development of therapeutics for numerous bone and metabolic diseases.
In this study, we examined the hepatic anti-steatosis activity of carnosic acid (CA), a phenolic compound of rosemary (Rosmarinus officinalis) leaves, as well as its possible mechanism of action, in a high-fat diet (HFD)-fed mice model. Mice were fed a HFD, or a HFD supplemented with 0.01% (w/w) CA or 0.02% (w/w) CA, for a period of 12 weeks, after which changes in body weight, blood lipid profiles, and fatty acid mechanism markers were evaluated. The 0.02% (w/w) CA diet resulted in a marked decline in steatosis grade, as well as in homeostasis model assessment of insulin resistance (HOMA-IR) index values, intraperitoneal glucose tolerance test (IGTT) results, body weight gain, liver weight, and blood lipid levels (P < 0.05). The expression level of hepatic lipogenic genes, such as sterol regulating element binding protein-1c (SREBP-1c), liver-fatty acid binding protein (L-FABP), stearoyl-CoA desaturase 1 (SCD1), and fatty acid synthase (FAS), was significantly lower in mice fed 0.01% (w/w) CA and 0.02% (w/w) CA diets than that in the HFD group; on the other hand, the expression level of ${\beta}$-oxidation-related genes, such as peroxisome proliferator-activated receptor ${\alpha}$ (PPAR-${\alpha}$), carnitine palmitoyltransferase 1 (CPT-1), and acyl-CoA oxidase (ACO), was higher in mice fed a 0.02% (w/w) CA diet, than that in the HFD group (P < 0.05). In addition, the hepatic content of palmitic acid (C16:0), palmitoleic acid (C16:1), and oleic acid (C18:1) was significantly lower in mice fed the 0.02% (w/w) CA diet than that in the HFD group (P < 0.05). These results suggest that orally administered CA suppressed HFD-induced hepatic steatosis and fatty liver-related metabolic disorders through decrease of de novo lipogenesis and fatty acid elongation and increase of fatty acid ${\beta}$-oxidation in mice.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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