Iron-sulfur (Fe-S) clusters are one of the most ancient yet essential cofactors mediating various essential biological processes. In prokaryotes, Fe-S clusters are generated via several distinctive biogenesis mechanisms, among which the ISC (Iron-Sulfur Cluster) mechanism plays a house-keeping role to satisfy cellular needs for Fe-S clusters. The Escherichia coli ISC mechanism is maintained by several essential protein factors, whose structural characterization has been of great interest to reveal mechanistic details of the Fe-S cluster biogenesis mechanisms. In particular, nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopic approaches have contributed much to elucidate dynamic features not only in the structural states of the protein components but also in the interaction between them. The present minireview discusses recent advances in elucidating structural features of IscU, the key player in the E. coli ISC mechanism. IscU accommodates exceptional structural flexibility for its versatile activities, for which NMR spectroscopy was particularly successful. We expect that understanding to the structural diversity of IscU provides critical insight to appreciate functional versatility of the Fe-S cluster biogenesis mechanism.
IscR (iron-sulfur cluster regulator) has been reported to be a repressor of the iscRSUA operon, and in vitro transcription reactions have revealed that IscR has a repressive effect on the iscR promoter in the case of [$Fe_{2}S_{2}$] cluster loading. In the present study, the iscR gene from A. ferrooxidans ATCC 23270 was cloned and successfully expressed in Escherichia coli, and then purified by one-step affinity chromatography to homogeneity. The molecular mass of the IscR was 18 kDa by SDS-PAGE. The optical and EPR spectra results for the recombinant IscR confirmed that an iron-sulfur cluster was correctly inserted into the active site of the protein. However, no [$Fe_{2}S_{2}$] cluster was assembled in apoIscR with ferrous iron and sulfide in vitro. Therefore, the [$Fe_{2}S_{2}$] cluster assembly in IscR in vivo would appear to require scaffold proteins and follow the Isc "AUS" pathway.
Ferredoxin is a typical iron-sulfur protein that is ubiquitous in biological redox systems. This study investigates the in vitro assembly of a [$Fe_2S_2$] cluster in the ferredoxin from Acidithiobacillus ferrooxidans in the presence of three scaffold proteins: IscA, IscS, and IscU. The spectra and MALDI-TOF MS results for the reconstituted ferredoxin confirm that the iron-sulfur cluster was correctly assembled in the protein. The inactivation of cysteine desulfurase by L-allylglycine completely blocked any [$Fe_2S_2$] cluster assembly in the ferredoxin in E. coli, confirming that cysteine desulfurase is an essential component for iron-sulfur cluster assembly. The present results also provide strong evidence that [$Fe_2S_2$] cluster assembly in ferredoxin follows the AUS pathway.
Neisseria gonorrhoeae is a Gram-negative aerobic diplococcus bacterium that primarily causes sexually transmitted infections through direct human sexual contact. It is a major public health threat due to its impact on reproductive health, the widespread presence of antimicrobial resistance, and the lack of a vaccine. In this study, we used a bioinformatics approach and performed subtractive genomic methods to identify potential drug targets against the core proteome of N. gonorrhoeae (12 strains). In total, 12,300 protein sequences were retrieved, and paralogous proteins were removed using CD-HIT. The remaining sequences were analyzed for non-homology against the human proteome and gut microbiota, and screened for broad-spectrum analysis, druggability, and anti-target analysis. The proteins were also characterized for unique interactions between the host and pathogen through metabolic pathway analysis. Based on the subtractive genomic approach and subcellular localization, we identified one cytoplasmic protein, 2Fe-2S iron-sulfur cluster binding domain-containing protein (NGFG RS03485), as a potential drug target. This protein could be further exploited for drug development to create new medications and therapeutic agents for the treatment of N. gonorrhoeae infections.
IscU, the iron-sulfur (Fe-S) cluster scaffold protein, is an essential protein for biogenesis of Fe-S clusters. Previous studies showed that IscU manifests a metamorphic structural feature; at least two structural states, namely the structured state (S-state) and the disordered state (D-state), interconverting in a physiological condition, was observed. Moreover, subsequent studies demonstrated that the metamorphic flexibility of IscU is important for its Fe-S cluster assembly activity as well as for an efficient interaction with various partner proteins. Although solution nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy has been a useful tool to investigate this protein, the detailed molecular mechanism that sustains the structural heterogeneity of IscU is still unclear. To tackle this issue, we applied a high-pressure NMR (HP-NMR) technique to the IscU variant, IscU(I8K), which shows an increased population of the S-state. We found that the equilibrium between the S- and D-state was significantly perturbed by pressure application, and the specific regions of IscU exhibited more sensitivity to pressure than the other regions. Our results provide novel insights to appreciate the dynamic behaviors of IscU and the related versatile functionality.
The Iro protein is a member of the HiPIP family with the [$Fe_4S_4$] cluster for electron transfer. Many reports proposed that the conserved aromatic residues might be responsible for the stability of the iron-sulfur cluster in HiPIP. In this study, Tyr10 was found to be a critical residue for the stability of the [$Fe_4S_4$] cluster, according to site-directed mutagenesis results. Tyr10, Phe26, and Phe48 were essential for the stability of the [$Fe_4S_4$] cluster under acidic condition. Trp44 was not involved in the stability of the [$Fe_4S_4$] cluster. Molecular structure modeling for the mutant Tyr10 proteins revealed that the aromatic group of Tyr10 may form a hydrophobic barrier to protect the [$Fe_4S_4$] cluster from solvent.
IscA was proposed to be involved in the iron-sulfur cluster assembly encoded by the iscSUA operon, but the role of IscA in the iron-sulfur cluster assembly still remains controversial. In our previous study, the IscA from A. ferrooxidans was successfully expressed in Escherichia coli, and purified to be a [$Fe_4S_4$] -cluster-containing protein. Cys35, Cys99, and Cys101 were important residues in ligating with the [$Fe_4S_4$] cluster. In this study, Asp97 was found to be another ligand for the iron-sulfur cluster binding according to site-directed mutagenesis results. Molecular modeling for the IscA also showed that Asp97 was a strong ligand with the [$Fe_4S_4$] cluster, which was in good agreement with the experimental results. Thus, the [$Fe_4S_4$] cluster in IscA from A. ferrooxidans was ligated by three cysteine residues and one aspartic acid.
The NADH reductase component of the steroid 9.alpha.-hydroxylase from Mycobacterium fortuitum was purified to homogeneity. Recovery of the enzyme from the 50-60% ammonium sulfate saturated fraction was 49%, with a purification factor of 100-fold. The NADH reductase has a relative molecular of 60 KDa as determined by SDS-PAGE. The absorption maxima at 410 and 450 nm indicate the presence of iron-sulfur group and flavin. These prosthetic groups seemed to function as redox groups that transfer electrons from NADH to the following protein. The $K_M$ value for NADH as substrate was $68{\mu}M$. The $NH_2$-terminal amino acid sequence of the reductase was determined as Met-Asp-Ala-Ile-Thr-Asn-Val-Pro-Leu-Pro-Ala-Asn-Glu-Pro-Val-His-Asp-Tyr-Ala-Thr. This sequence does not show a homology with the $NH_2$ -terminal sequences reported for the reductase component of other monooxygenases, suggesting that the NADH reductase component of the steroid 9.alpha.-hydroxylase system is novel.
HscA is a Hsp70-type chaperone protein that plays an essential role to mediate the iron-sulfur (Fe-S) cluster biogenesis mechanism in Escherichia coli. Like other Hsp70 chaperones, HscA is composed of two domains: the nucleotide binding domain (NBD), which can hydrolyze ATP and use its chemical energy to facilitate the Fe-S cluster transfer process, and the substrate binding domain (SBD), which directly interacts with the substrate, IscU, the scaffold protein of an Fe-S cluster. In the present work, we prepared the isolated SBD construct of HscA (HscA(SBD)) and conducted the solution-state nuclear magnetic resonance (NMR) experiments to have its backbone chemical shift assignment information. Due to low spectral quality of HscA(SBD), we obtained all the NMR data from the sample containing the peptide LPPVKIHC, the HscA-interaction motif of IscU, from which the chemical shift assignment could be done successfully. We expect that this information provides an important basis to execute detailed structural characterization of HscA and appreciate its interaction with IscU.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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