The bioleaching experiment under $42^{\circ}C$ was effectively carried out to leach the more valuable element ions from the pyrite in the Gangyang mine waste. Bacteria can survive at this temperature, as indigenous acidophilic bacteria were collected in the Hatchobaru acidic hot spring, in Japan. To enhance the bacterial activity, yeast extract was added to the pyrite-leaching medium. The indigenous acidophilic bacteria appeared to be rod-shaped in the growth-medium which contained elemental sulfur and yeast extract. The rod-shaped bacteria ($0.7\times2.6\;{\mu}m$, $0.6\times7\;{\mu}m$, $0.8\times5\;{\mu}m$ and $0.7\times8.4\;{\mu}m$) were attached to the pyrite surface. The colonies of the rod-shaped bacteria were selectively attached to the surroundings of a hexagonal cavity and the inner wall of the hexagonal cavity, which developed on a pyrite surface. Filament-shaped bacteria ranging from $4.92\;{\mu}m$ to $10.0\;{\mu}m$ in length were subsequently attached to the surrounding cracks and inner wall of the cracks on the pyrite surface. In the XRD analysis, the intensity of (111), (311), (222) and (320) plane on the bacteria pyrite sample relatively decreased in plane on the control pyrite sample, whereas the intensity of (200), (210) and (211) increased in these samples. The microbiological leaching content of Fe ions was found to be 3.4 times higher than that of the chemical leaching content. As for the Zn, microbiological leaching content, it was 2 times higher than the chemical leaching content. The results of XRD analysis for the bioleaching of pyrite indicated that the indigenous acidophilic bacteria are selectively attacked on the pyrite specific plane. It is expected that the more valuable element ions can be leached out from the mine waste, if the temperature is increased in future bioleaching experiments.
Muscat Bailey A (MBA) wine was fermented using the indigenous Korean Saccahromyces cerevisiae strains S13 and D8, and the fermentation characteristics were compared with those of S. cerevisiae W-3, an industrial wine yeast. The strains S13 and D8 showed delayed alcohol fermentation compared with the W-3 strain, but the final alcohol contents of the S13 and D8 wines after fermentation were similar to those of the W-3 wine. The S13 wine showed significantly lower malic-acid content than the W-3 wine, but the D8 wine showed a similar level. Both the wines fermented using the S13 and D8 strains showed significantly lower acetaldehyde, methanol, and fusel oil contents, including n-propanol, iso-butyl alcohol, and iso-amyl alcohol, compared to the W-3 wine. Especially, the methanol content was 98.6 mg/L in the S13 wine and 112.0 mg/L in the D8 wine, which were much lower than 192.8 mg/L in the W-3 wine. The S13 wine obtained the highest score in terms of color among the three wines in the sensory evaluation, with lower Hunter's L, a, and b values compared to the W-3 wine.
Adhikari, Mahesh;Gurung, Sun Kumar;Kim, Sang Woo;Lee, Hyun Goo;Ju, Han Jun;Gwon, Byeong Heon;Kosol, San;Bazie, Setu;Lee, Hyang Burm;Lee, Youn Su
The Korean Journal of Mycology
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v.46
no.4
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pp.383-392
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2018
During the study of indigenous fungal communities in soil samples collected from various field soils in Sancheong, Gyeongsangnam-do, Korea in 2017, several species of Aspergillus were discovered. Aspergillus caninus (KNU17-7) was isolated, identified, and described based on the results from macro and micro morphological characteristics and molecular characterization. Morphologically, it was identified using five different growth media: potato dextrose agar, oatmeal agar, yeast extract sucrose agar, czapek yeast extract agar, and malt extract agar. For the molecular identification, sequencing of internal transcribed spacer, ${\beta}-tubulin$, and calmodulin genes was performed. Based on this characterization, our study isolate was identified as Aspergillus caninus. This fungal species has not been officially reported in Korea before, and we report here with its morphological and molecular phylogenetic characterization.
The indigenous Saccharomyces cerevisiae strains S13 and D8 were isolated at the microbial succession stage during spontaneous fermentation of Campbell Early wine as a resistant to potassium metabisulfite and a high sugar concentration. In this study, the fermentation characteristics of Campbell Early wine were investigated and compared with those of S. cerevisiae W-3, an industrial wine yeast. Alcohol production by the two strains was delayed at the initial fermentation stage, but increased fast when the fermentation continued. After the fermentation, the S13 and D8 wines contained 12.6% and 13.2% (v/v) alcohol, respectively, which were significantly higher than the alcohol content of the W-3 wine (12%, v/v). No marked differences were observed in the residual soluble solid content and the pH. However, the S13 and D8 wines showed high levels of total acid content, including malic and lactic acids. Especially, the lactic acid content was 8.9-fold in the S13 wine and six-fold in the D8 wine, compared with that of the W-3 wine. The two strains produced a higher level of acetaldehyde and a lower amount of methanol in the wine than the W-3 strain. The iso-Butanol content was lower in the two indigenous yeast wines with similar levels of n-propanol and iso-amyl alcohol contents than that in the W-3 wine. In the sensory evaluation, the S13 and D8 wines had higher scores for their color, flavor, taste and overall preferences than the W-3 wine. Especially, the S13 and D8 wines had much higher scores than the W-3 wine for flavor and color, respectively.
Rho, Min-Suk;Su, Xuefeng;Lee, Yoon-Shik;Kim, Woo-Ho;Dowhan, William
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.1
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pp.84-91
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2006
A Saccharomyces cerevisiae pgs1 nulI mutant, which is deficient with phosphatidyl glycerol (PG) and cardiolipin (CL) biosynthesis, grows well on most fermentable carbon sources, but fails to grow on non-fermentable carbon sources such as glycerol, ethanol, and lactate. This mutant also cannot grow on galactose medium as the sole carbon source. We found that the incorporation of $[^{14}C]-galactose$, which is the first step of the galactose metabolic pathway (Leloir pathway), into the pgs 1 null mutant cell was extremely repressed. Exogenously expressed PGS1 (YCpPGS1) under indigenous promoter could completely restore the pgs1 growth defect on non-fermentable carbon sources, and dramatically recovered $[^{14}C]-galactose$ incorporation into the pgs1 mutant cell. However, PGS1 expression under the GALl promoter $(YEpP_{GAL1}-PGS1myc)$ could not complement pgs1 mutation, and the GAL2-lacZ fusion gene $(YEpP_{GAL2}-lacZ)$ also did not exhibit its $\beta-galactosidase$ activity in the pgs1 mutant. In wild-type yeast, antimycin $A(1\;{\mu}g/ml)$, which inhibits mitochondrial complex III, severely repressed not only the expression of the GAL2-lacZ fusion gene, but also uptake of $[^{14}C]-galactose$. However, exogenously expressed PGS1 partially relieved these inhibitory effects of antimycin A in both the pgs1 mutant and wild-type yeast, although it could not basically restore the growth defect on galactose by antimycin A. These results suggest that the PGSI gene product has an important role in utilization of galactose by Gal genes, and that intact mitochondrial function with PGS1 should be required for galactose incorporation into the Leloir pathway. The PGS1 gene might provide a clue to resolve the historic issue about the incapability of galactose with deteriorated mitochondrial function.
Lactic acid fermentation of prickly pear extract (PPE) was performed by Lactobacillus rhamnosus LS, Lactobacillus bulgaricus, and Lactobacillus brevis. The PPE was pasteurized to eliminate indigenous microorganisms as well as to dissolve the partially insoluble pulp. The PPE fermented without yeast extract by L. rhamnosus LS exhibited 0.57% acidity and 3.5${\times}$10$^{8}$ CFU/mL bacteria count. With the addition of 0.2% edible yeast extract the PPE fermented by L. rhamnosus LS exhibited 1.15% acidity,2.7${\times}$10$^{9}$ CFU/mL bacteria count and 95.0% retention of red color. When 5% fructose syrup was added, the PPE fermented by L. rhamnosus LS had 1.09% acidity, 6.5${\times}$10$^{8}$ CFU/mL, and 97.7% retention of red color. With 1∼3% (w/v) concentrations of starter, the PPE fermented by L. bulgaricus and L. brevis showed 0.97% and 0.65% acidities, respectively. The viable cell counts from L. rhamnosus LS fermentation were higher compared with those of other LAB. During cold storage at 4$^{\circ}C$, the viable cell count was well maintained for 3 weeks, but then rapidly decreased. The red pigment was highly stable during cold storage for 4 weeks. The pasteurized PPE fortified with 5% fructose syrup, 0.2% yeast extract, and 0.05% CaCO$_3$ was successfully fermented by inoculating with 3% LAB and incubating at 3$0^{\circ}C$ for 2 days. Both viable cell counts and the red color of the fermented PPE were well maintained during cold storage for 3 weeks.
Dichloromethane, ethanol, and boiling water extracts of the brown alga Ecklonia cava were examined in vivo for their antipyretic, analgesic, and anti-inflammatory activities in mice. These activities were evaluated by yeast-induced pyrexia, tail-flick test, and phorbol myristate acetate-induced inflammation (edema, erythema, and blood flow). Ethanol extract of E. cava (0.4 mg/ear) inhibited the inflammatory symptoms of mouse ear edema, erythema, and blood flow by 82.6%, 69.0%, and 65.4%, respectively. This extract also demonstrated potent analgesic activity. No acute toxicity was observed after p.o. administration of each extract (5 g/kg bw). These in vivo data are in agreement with the claims of the health care industry and indigenous medicine that E. cava is an effective remedy for inflammation-related symptoms.
An indigenous antagonistic bacterium Bacillus sp. 7079 was isolated from a local soil sampled at Kyongju area in Korea . The strain has strong antagonistic ability which was originated from multifunctional mechanisms of chitinase and antibiotic and is a powerful antagonistic biocontrol agent against red-pepper rotting fungus Phytophthora capsici and Wilt fungus Fusarium oxysporum. The chitinase might degrade the cell wasll for Fusarium species. The selected Bacilus sp. 7079 was identified as a Bacillus amyloliquefaciens 7079. The maximal production of the chitinase from B, amyloliquefaciens 7079 were obtained in chitin-yeast extract medium containing 0.7%, $K_2$$HPO_4$, $0.2KH_2$$PO_4$, 0.1% ($NH_4$)$_2$$SO_4$, 0.05% sodium cirate, 0.01% $MgSO_4$$7H_2$O, 0.1% yeast extract and 0.1% colloidal chitin after cultivation of 3 days at pH 7.0 and $30^{\circ}C$. The best carbon and nitrogen sources for the production of the chitinase from B amyloliquefaciens 7079 were determined to be 0.1% colloi- dal chitin and 0.15% proteose peptone NO 3 respectively, The antagonistic activity of B amyloliquefaciens 7079 was confirmed using P. capsici by in vivo pot test with red-pepper plant.
Lai, W.H.;Murni, M.J. Siti;Fauzi, D.;Mazni, O. Abas;Saleh, N.M.
Mycobiology
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v.39
no.2
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pp.92-95
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2011
Lignosus rhinocerus is a macrofungus that belongs to Polyporaceae and is native to tropical regions. This highly priced mushroom has been used as folk medicine to treat diseases by indigenous people. As a preliminary study to develop a culture method for edible mushrooms, the cultural characteristics of L. rhinocerus were investigated in a range of culture media under different environmental conditions. Mycelial growth of this mushroom was compared on culture media composed of various carbon and nitrogen sources in addition to C/N ratios. The optimal conditions for mycelial growth were $30^{\circ}C$ at pH 6 and 7. Rapid mycelial growth of L. rhinocerus was observed on glucose-peptone and yeast extract peptone dextrose media. Carbon and nitrogen sources promoting mycelial growth of L. rhinocerus were glucose and potassium nitrate, respectively. The optimum C/N ratio was approximately 10 : 1 using 2% glucose supplemented as a carbon source in the basal media.
With the increasing demand for enzymes in industrial applications there is a growing need to easily produce industrially important microbial enzymes. This study was carried out to screen the indigenous refinery bacterial isolates for their production of two industrially important enzymes i.e. lipase and protease. A total of 15 bacterial strains were isolated using Soil Extract Agar media from the oil-contaminated environment and one was shown to produce high quality lipase and protease enzymes. The culture conditions (culture duration, temperature, source of nitrogen, carbon, and pH) were optimized to produce the optimum amount of both the lipase (37.6 ± 0.2 Uml-1) and the protease (41 ± 0.4 Uml-1) from this isolate. Productivity of both enzymes was shown to be maximized at pH 7.5 in a medium containing yeast extract and peptone as nitrogen sources and sucrose and galactose as carbon sources when incubated at 35 ± 1℃ for 48 h. Bacterial strain SAB06 was identified as Bacillus licheniformis (MT250345) based on biochemical, morphological, and molecular characteristics. Further studies are required to evaluate and optimize the purification and characterization of these enzymes before they can be recommended for industrial or environmental applications.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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