We tested biomarker systems [enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and immunochromatography assay (ICG) kits] for the screening of endocrine-disrupting chemicals in contaminated environments using antibodies resulting from $17{\beta}$-Estradiol-induced vitellogenin (Vtg) in the wild scorpion fish Sebastiscus marmoratus. Monoclonal antibodies of two clones (S28 and S15) were used as capture and tracer antibodies for ELISA and ICG assays. ELISA detected Vtg at levels greater than $0.1{\mu}g/mL$, while ICG detected Vtg at levels greater than $1{\mu}g/mL$. However, the ICG system was able to detect antibodies from $17{\beta}$-Estradiol-induced Vtg serum that had been diluted 1,000 times. Our results suggest that previously developed biomarker assays can be used as detection systems to detect known endocrine-disrupting chemicals in contaminated environments, and to measure their activity.
An immunochromatography (ICG) strip test using a nanocolloidal gold-antibody probe was developed and optimized for the rapid detection of aflatoxin B1 (AFB1). A monoclonal antibody specific to AFB1 was produced from the cloned hybridoma cell (AF78), coupled with nanocolloidal gold, and distributed on the conjugate pad of the ICG strip test. The visual detection limit of the ICG strip test was 0.5 ng/ml, and this method showed a cross-reaction to aflatoxin B2, G1, and G2. In total, 172 grain and feed samples were collected and analyzed by both the ICG strip test and HPLC. The results of the ICG strip test showed a good agreement with those obtained by HPLC. These results indicated that the ICG strip test has a potential use as a rapid and cost-effective screening tool for the determination of AFB1 in real samples and could be applied to the preliminary screening of mycotoxin in food and agricultural products, generating results within 15 min without complicated steps.
본 연구에서는 L. monocytogenes를 신속하게 분석할 수 있는 면역크로마토그래피법을 개발하고자 하였다. 먼저 L. monocytogenes에 대한 단크론성 항체(FKLM-3B12-37)를 개발하여 직경 40nm로 제작된 colloidal gold와 합성한 후 conjugate pad에 처리하였고 nitrocellulose membrane 상의 test line과 control line에 단크론성 항체와 anti-mouse IgG를 각각 처리하여 면역크로마토그래피법을 개발하였다. 개발된 면역크로마토그래피법의 검출한계는 $10^{5}$ cell/mL 수준까지 검출이 가능했으며 다른 식중독 세균과는 교차 반응이 없는 것으로 나타났다. 임으로 오염시킨 식품시료의 경우 증균과정 없이 $10^{4}$ cell/25g까지 바로 분석하는데 어려움이 있으며 24시간의 증균과정을 거친 후에는 $10^{4}$ cell/25g까지 검출할 수 있었다. 본 연구에서 개발된 면역크로마토그래피법은 24시간의 증균 만으로 식품에 오염되어있는 L. monocytogenes를 검출할 수 있는 것으로 사료되었고, 기존의 식중독균 진단방법에 비해 신속하고 간편하게 그 결과를 확인할 수 있었다.
An immunochromatography (ICG) strip test based on a monoclonal antibody for the rapid detection of L. monocytogenes in meat and processed-meat samples was developed in this study. A monoclonal antibody (MAb) specific to L. monocytogenes was produced from cloned hybridoma cells (FKLM-3B12-37) and used to develop an ICG strip test. The antibody showed a stronger binding to L. monocytogenes than other Listeria species, and a weak cross-reaction to S. aureus based on an ELISA. The detection limit of the ICG strip test was $10^5\;cell/ml$. In total, 116 meat and processed-meat samples were collected and analyzed using both the ICG strip test and a PCR. The ICG strip test and PCR indicated L. monocytogenes contamination in 34 and 27 meat samples, respectively. The 7 meat samples not identified as L. monocytogenes positive by the PCR were also tested using an API kit and found to be contaminated by Listeria species. In conclusion, the ICG strip test results agreed well with those obtained using the PCR and API kit. Thus, the developed ICG has potential use as a primary screening tool for L. monocytogenes in various foods and agricultural products, generating results within 20 min without complicated steps.
Cadmium is known to be very toxic to human health and can be relative easily translocated from soils in plants. Therefore, a rapid method for screening Cd in soils and crops has become more and more important. For this reason, we examined a rapid immunochromatograpy (ICG) test kit which uses antigen-antibody reaction based on immunoassay and chromatography. Soils and rice grains collected from mine waste-contaminated sites were determined for their Cd contents using this kit. For comparison purposes, 0.1 M HCl and ICP-OES were employed as a conventional extraction and determination method. Cadmium contents in rice grains determined using ICG technique were $0.46{\sim}2.39mg\;kg^{-1}$ and Cd contents determined using 0.1 M HCl and ICP-OES were $0.52{\sim}1.97mg\;kg^{-1}$. The correlation between these two Cd contents were statistically significant ($r^2$=0.930). The results of Cd contents in soils also showed a statistically significant relationship between these two methods ($r^2$=0.975). On the basis of these results, ICG technique can be applied to rapidly quantify Cd in crops and soils. However, further research is necessary to apply ICG technique for the field screening.
Shim, Won-Bo;Dzantiev, Boris B.;Eremin, Sergei A.;Chung, Duck-Hwa
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제19권1호
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pp.83-92
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2009
Individual immunochromatographic assays (ICG) for ochratoxin A (OTA) and zearalenone (ZEA) were optimized and used in the development of a one-step simultaneous immunochromatographic assay (OS-ICG) for the rapid multianalysis of two mycotoxins in corn samples. The nitrocellulose membrane of the OS-ICG was treated with OTA-bovine serum albumin (BSA), ZEA-ovalbumin (OVA), and anti-mouse IgG in the OTA test, ZEA test, and control zones, respectively. Monoclonal antibody-gold conjugates (OTA3 MAb-gold and ZEA2C5 MAb-gold) were sprayed onto the conjugate pad. The visual detection limits were 2.5 and 5 ng/ml for OTA and ZEA, respectively, and the results were obtained within 15 min after starting the analysis. An efficient, simple, and rapid extraction method using 30% MeOH/PBS was established and validated by analyzing the corn samples spiked with OTA/ZEA mixtures (0/0, 5/10, 10/20, and $20/30\;{\mu}g/kg$). The cut-off values of the OS-ICG for the spiked corn were 5 and $10\;{\mu}g/kg$ for OTA and ZEA, respectively. Natural corn samples were analyzed by OS-ICG, direct competitive enzyme-linked immunosorbent assay (DC-ELISA), and HPLC. Results of the OS-ICG were in good agreement with those obtained by DC-ELISA and HPLC. The developed OS-ICG offers a rapid, easy-to-use, and portable analytical system and can be used as a convenient qualitative tool for the on-site simultaneous determination of OTA and ZEA in cereals, food, and agricultural products in one analytical cycle.
E. coli O157:H7은 요독증후군, 출혈성 대장염 및 설사 등을 유발하는 원인균으로, 전세계적으로 이들의 오염에 따른 식중독 발생이 증가하고 있어, 본 연구에서는 E. coli O157:H7을 신속 정확하게 분석할 수 있는 면역크로마토그래피법을 개발하였고, 보다 신속한 검출을 위하여 육류와 새싹시료를 대상으로 최소 증균시간을 확인하였다. 먼저, 면역크로마토그래피법의 개발을 위해 colloidal gold와 EC MAb를 합성하여 EC MAb-gold conjugate를 제작한 다음, 접합여부를 확인한 결과, test line과 control line에 각각 처리되는 EC MAb와 anti-mouse IgG에 특이적으로 반응하였다. 제작된 EC MAb-gold conjugate를 이용하여 개발된 면역크로마토그래피법의 검출한계는 $1{\times}10^5$ CFU/mL 수준까지 검출이 가능한 것으로 확인되었고, 다른 대장균속 및 주요 식중독균과의 교차반응성은 나타나지 않았다. 개발된 면역크로마토그래피법을 이용하여 임의로 E. coli O157:H7을 오염시킨 돼지고기, 소고기, 닭고기 및 새싹채소를 증균하는 동안 분석한 결과, 돼지고기와 닭고기는 6시간, 소고기는 10시간, 특히 새싹채소는 2시간 후부터 $1{\times}10$ CFU/100 ${\mu}L$ 수준까지 검출이 가능한 것으로 나타났다. 따라서 본 연구에서 개발된 면역크로마토그래피법을 이용하여 육류와 채소 등에 오염된 E. coli O157:H7을 최대 10시간 이내로 신속히 분석할 수 있을 것으로 판단된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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