Polyphenol oxidase was purified from an extract of tea leaf by ammonium sulfate fractionation followed by Sephadex G-150 column chromatography, which resulted in a 67-fold increase in specific activity. The enzyme had optimum pH 6.5 and was relatively heat stable. The substrate specificity of the tea leaf PPO showed high affinity toward pyrogallol and catechol. Potassium cyanide, sodium diethyldithiocarbamate, L-cysteine, 2-mercaptoethanol and ascorbic acid were potent inhibitors.
The gene ADH encoding NAD-dependent alcohol dehydrogenase from Bacillus stearothennophilus was cloned and overexpressed as a GST fusion protein at a high level in Escherichia coli. The expressed fusion protein was purified simply by glutathione affinity chromatography. GST fusion protein was then cleaved by thrombin, while soluble enzyme was further purified by glutathione affinity chromatography. The recombinant enzyme had the same elctrophoretic mobility as the native enzyme from Bacillus stearothennophilus. The recombinant enzyme catalyzed the oxidation of a number of alcohols and exhibited high activities towards secondary alcohols. The $K_m\;and\;V_{max}$ values of the recombinant enzyme for ethanol were 5.11 mM and 61.35 U/mg, respectively. Pyridine and imidazole notably inhibited the enzymatic activity. The activity of the recombinant enzyme optimally proceeded at pH 9.0 and $70^{\circ}C$. The midpoint of the temperature-stability curve for the recombinant enzyme was approximately $68^{\circ}C$, and the enzyme was not completely inactivated even at $85^{\circ}C$. The recombinant enzyme showed a high resistance towards denaturing agents (0.05% SDS, 0.1 M urea). Therefore, due to its stability and relatively broad substrate specificity, the recombinant enzyme could be utilized in bio-industrial processes and biosensors.
Laccase is one of the ligninolytic enzymes of white rot fungus Trametes versicolor 951022, a strain first isolated in Korea. This laccase was purified 209-fold from culture fluid with a yield of $6.2\%$ using ethanol precipitation, DEAE-Sepharose, Phenyl-Sepharose, and Sephadex G-100 chromatography. T. versicolor 951022 excretes a single monomeric laccase showing a high specific activity of 91,443 U/mg for 2,2'-azino-bis-(3-ethylbenzthiazoline-6-sulfonic acid) (ABTS) as a substrate. The enzyme has a molecular mass of approximately 97 kDa as determined by SDS-PAGE, which is larger than those of other laccases reported. It exhibits high enzyme activity over broad pH and temperature ranges with optimum activity at pH 3.0 and a temperature of $50^{\circ}C$. The $K_m$ value of the enzyme for substrate ABTS is $12.8{\mu}M$ and its corresponding $V_{max}$ value is 8125.4 U/mg. The specific activity and substrate affinity of this laccase are higher than those of other white rot fungi, therefore, it may be potentially useful for industrial purposes.
This study predicts the of the hysteretic friction of a rubber block sliding on an SMA asphalt road. The friction of filled rubber on a rough surface is primarily determined by two elements:the viscoelasticity of the rubber and the multi-scale perspective asperities of the road. The surface asperities of the substrate exert osillating forces on the rubber surface leading to energy dissipation via the internal friction of the rubber when rubber slides on a hard and rough substrate. This study defines the power spectra at different length scales by using a high-resolution surface profilometer, and uses rubber and road surface samples to conduct friction tests. I consider in detail the case when the substrate surface has a self affine fractal structure. The theory developed by Persson is applied to describe these tests through comparison with the hysteretic friction coefficient relevant to the energy dissipation of the viscoelastic rubber attributable to cyclic deformation. The results showed differences in the absolute values of predicted and measured friction, but with high correlation between these values. Hence, the friction prediction model is an appropriate tool for separating the effects of each factor. Therefore, this model will contribute to clearer understanding of the fundamental principles of rubber friction.
A major problem in the enzymatic hydrolysis of lignocellulosic substrates is the very strong bonding of cellulase to lignin and even cellulose in the hydrolysis residues. This phenomenon inhibits recycle of the cellulase which is a major expense of the enzymatic hydrolysis process. In this paper, autohydrolyzed wood was delignified by two-stage with a 0.3% Na OH extraction and oxygen-alkali bleaching and was subjected to enzymatic hydrolysis with cellulase. Also, an improved almost quantitative recycle process of cellulase enzyme was discussed. In enzyme recovery by affinity method. the first recycling showed relatively high hydrolysis rate of 97.4%. Even at the third recycle. hydrolysis rate was 86.7 percents. In the case of cellulase recovery by ultrafiltration method, first 2 recycling treatments resulted very high hydrolysis rate(97.0-97.7%). Even the third recycling showed about 94.2%. Authoydrolysis of oak wood followed by 2-stage delignification with alkali and oxygen-alkali produced a substrate for enzymatic hydrolysis that allowed almost quantitative recycle of cellulase.
Steam-exploded woods were delignified by two-stage with a 0.3% NaOH extraction and oxygen-alkali bleaching and were subjected to the enzymatic hydrolysis with cellulase enzyme. Also, an improved almost quantitative recycle process of cellulase enzyme was discussed. In enzyme recovery by affinity method, The first recycling showed relatively high hydrolysis rate of 96.4%. Even at the third recycle, hydrolysis rate was 87.0 percents. In the case of cellulase recovery by ultrafiltration method, first 2 recycling treatments resulted in very high hydrolysis rates, 96.8% and 95.0%, respectively. Even the third recycling showed about 93.6%. Steam-explosion treatment of oak wood followed by 2-stage delignification with alkali and oxygen-alkali produced a excellant substrate for the enzymatic hydrolysis that allowed almost quantitative recycle of cellulase.
Martins, Maria Luisa Louro;De Freitas Barbosa, Miguel Pedro;De Varennes E Mendonca, Amarilis Paula Alberti
BMB Reports
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v.35
no.2
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pp.220-227
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2002
Two aspartate aminoransferase (EC 2.6.1.1) isoenzymes (AAT-1 and AAT-2) from Lupinus albus L. cv Estoril were separated, purified, and characterized. The molecular weight, pI value, optimum pH, optimum temperature, and thermodynamic parameters for thermal inactivation of both isoenzymes were obtained. Studies of the kinetic mechanism, and the kinetics of product inhibition and high substrate concentration inhibition, were performed. The effect of some divalent ions and irreversible inhibitors on both AAT isoenzymes was also studied. Native PAGE showed a higher molecular weight for AAT-2 compared with AAT-1. AAT-1 appears to be more anionic than AAT-2, which was suggested by the anion exchange chromatography. SDS-PAGE showed a similar sub-unit molecular weight for both isoenzymes. The optimum pH (between 8,0 and 9.0) and temperature ($60-65^{\circ}C$) were similar for both isoenzymes. In the temperature range of $45-65^{\circ}C$, AAT-2 has higher thermostability than AAT-1. Both isoenzymes showed a high affinity for keto-acid substrates, as well as a higher affinity to aspartate than glutamate. Manganese ions induced an increase in both AAT isoenzymes activities, but no cooperative effect was detected. Among the inhibitors tested, hydroxylamine affected both isoenzymes activity by an irreversible inhibition mechanism.
Habrylo, Olivier;Song, Xinghan;Forster, Anne;Jeltsch, Jean-Marc;Phalip, Vincent
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.22
no.8
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pp.1118-1126
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2012
Four putative GH12 genes were found in the Fusarium graminearum genome. The corresponding proteins were expressed in Escherichia coli, purified, and evaluated. FGSG_05851 and FGSG_11037 displayed high activities towards xyloglucan ($V_{max}$ of 4 and $11{\mu}mol/min$, respectively), whereas FGSG_07892 and FGSG_16349 were much less active with this substrate (0.081 and $0.004{\mu}mol/min$, respectively). However, all four of these enzymes had a similar binding affinity for xyloglucan. Xyloglucan was the substrate preferred by FGSG_05851, in contrast to the three other enzymes, which preferred ${\beta}$-glucan or lichenan. Therefore, FGSG_05851 is a xyloglucan-specific glucanase (E.C. 3.2.1.151) rather than an endoglucanase (E.C. 3.2.1.4) with broad substrate specificity. FGSG_11037 displayed a peculiar behavior in that the xyloglucan binding was highly cooperative, with a Hill coefficient of 2.5. Finally, FGSG_05851 essentially degraded xyloglucan into hepta-, octa-, and nonasaccharides, whereas the three other enzymes yielded hepta- and octa-saccharides as well as larger molecules.
Unlike the mammalian glucose transporter GLUT1, little is known about the nature of the endogenous sugar transporter(s) in insect cells. In order to establish the transport characteristics and other properties of the sugar transport proteins of Sf9 cells, a series of kinetic analyses was performed. A saturable transport system for hexose uptake has been revealed in the insect cells. The apparent affinity of this transport system(s) for 2-deoxy-D-glucose was relatively high, the $K_m$ for uptake being <0.5 mM. To further investigate the substrate and inhibitor recognition properties of the insect cell transporter, the ability of other sugars or drugs to inhibit 2-deoxy-D-glucose transport was examined by measuring inhibition constants ($K_j$). Transport was inhibited by D-mannose, D-glucose, and D-fructose. However, the apparent affinity of the C-4 epimer, D-galactose, for the Spodoptera transporter was relatively low, implying that the hydroxyl group at the C-4 position may play a role in the strong binding of glucose and mannose to the transporter. The results also showed that transport was stereoselective, being inhibited by D-glucose but not by L-glucose. It is therefore concluded that insect cells contain an endogenous glucose transport activity that in several aspects resembles the human erythrocyte glucose transporter. However, the mammalian and insect transporters were different in some of their kinetic properties, namely, their affinities for fructose and for cytochalasin B.
Two O-methyltransferases, OMTII-1 and OMTII-4 of meadow rue Thalictrum tuberosum showed a high sequence identity. Of 364 amino acids only one residue is not the same, which is Tyr21 or Cys21. Even if the 21st residues in these OMTs are not included in the binding sites of the enzymes, binding affinities of the enzyme homodimers over the same substrate are very different. While the binding affinity of one homodimer over caffeic acid is 100%, that of the other is 25%. Authors tried to predict the three-dimensional structures of Thalictrum tuberosum O-methyltransferases using homology-based modelling by a comparison with caffeic acid O-methyltransferase, and explain the reason of the phenomenon mentioned above based on their three dimensional structural studies. In the enzyme homodimer, the better binding affinity may be caused by the shorter distance between the 21st residue and the binding site of the other monomer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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