As a preceding study for investigating the influence of sound wave stimulus on Arabidopsis thaliana metabolomics, the polar secondary metabolomes of the plant were determined using high performance liquid chromatography coupled with tandem mass spectrometry. A total of 10 polar secondary metabolomes were characterized and quantified. Among them, 4 metabolomes, p-coumaroylagmatine isomer (7 and 8), p-coumaroylagmatine isomer (9 and 10) were identified in the plant for the first time. The validation was conducted in terms of linearity, recovery, precision, limit of detection (LOD) and limit of quantification (LOQ). The validated method was applied to the simultaneous quantification of the 10 polar secondary metabolomes.
Chlortetracycline (CTC) is one of the most important compounds in antibiotic production, and its distribution has been widely investigated due to health and ecological concerns. This study presents systematic approach to optimize the high-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry for analyzing CTC in a multiple reaction monitoring mode ($479{\rightarrow}462m/z$). One-factor-at-a-time (OFAT) test with response surface analysis (RSA) was used as optimization strategy. In OFAT tests, the fragmentor voltage, collision energy, and ratio of acetonitrile in the mobile phase were selected as major factors for RSA. The experimental conditions were determined using a composite in cube design (CCD) to maximize the peak area. As a result, the partial cubic model precisely predicted the peak area response with high statistical significance. In the model, the (solvent composition) and (collision $energy^2$) terms were statistically significant at the 0.1 ${\alpha}$-level, while the two-way interactions of the independent variables were negligible. By analyzing the model equation, the optimum conditions were derived as 114.9 V, 15.7 eV, and 70.9% for the fragmentor voltage, collision energy, and solvent composition, respectively. The RSA, coupled with the CCD, offered a comprehensive understanding of the peak area that responds to changes in experimental conditions.
Background: Panax notoginseng leaves (PNL) exhibit extensive activities, but few analytical methods have been established to exclusively determine the dammarane triterpene saponins in PNL. Methods: Ultra-performance liquid chromatography coupled with time-of-flight mass spectrometry (UPLC/Q-TOF MS) and HPLC-UV methods were developed for the qualitative and quantitative analysis of ginsenosides in PNL, respectively. Results: Extraction conditions, including solvents and extraction methods, were optimized, which showed that ginsenosides Rc and Rb3, the main components of PNL, are transformed to notoginsenosides Fe and Fd, respectively, in the presence of water, by removing a glucose residue from position C-3 via possible enzymatic hydrolysis. A total of 57 saponins were identified in the methanolic extract of PNL by UPLC/Q-TOF MS. Among them, 19 components were unambiguously characterized by their reference substances. Additionally, seven saponins of PNL-ginsenosides Rb1, Rc, Rb2, and Rb3, and notoginsenosides Fc, Fe, and Fd-were quantified using the HPLC-UV method after extraction with methanol. The separation of analytes, particularly the separation of notoginsenoside Fc and ginsenoside Rc, was achieved on a Zorbax ODS C8 column at a temperature of $35^{\circ}C$. This developed HPLC-UV method provides an adequate linearity ($r^2$ > 0.999), repeatability (relative standard deviation, RSD < 2.98%), and inter- and intraday variations (RSD < 4.40%) with recovery (98.7-106.1%) of seven saponins concerned. This validated method was also conducted to determine seven components in 10 batches of PNL. Conclusion: These findings are beneficial to the quality control of PNL and its relevant products.
Background: The biological activity and pharmacological effects of rare ginsenosides have been proven to be superior to those of the major ginsenosides, but they are rarely found in ginseng. Methods: Ginsenoside Rb1 was chemically transformed with the involvement of methanol molecules by a synthesized heterogeneous catalyst 12-HPW@MeSi, which was obtained by the immobilization of 12-phosphotungstic acid on a mesoporous silica framework. High-performance liquid chromatography coupled with mass spectrometry was used to identify the transformation products. Results: A total of 18 transformation products were obtained and identified. Methanol was found to be involved in the formation of 8 products formed by the addition of methanol molecules to the C-24 (25), C-20 (21) or C-20 (22) double bonds of the aglycone. The transformation pathways of ginsenoside Rb1 involved deglycosylation, addition, elimination, cycloaddition, and epimerization reactions. These pathways could be elucidated in terms of the stability of the generated carbenium ion. In addition, 12-HPW@MeSi was able to maintain a 60.5% conversion rate of Rb1 after 5 cycles. Conclusion: Tandem and high-resolution mass spectrometry analysis allowed rapid and accurate identification of the transformation products through the characteristic fragment ions and neutral loss. Rare ginsenosides with methoxyl groups grafted at the C-25 and C-20 positions were obtained for the first time by chemical transformation using the composite catalyst 12-HPW@MeSi, which also enabled cyclic heterogeneous transformation and facile centrifugal separation of ginsenosides. This work provides an efficient and recyclable strategy for the preparation of rare ginsenosides with the involvement of organic molecules.
Objectives: We aimed to develop a measurement method of five metabolites of trichloroethylene (TCE) in a concurrent biological sample, e.g., trichloroacetic acid (TCA), dichloroacetic acid (DCA), S-(1,2-dichlorovinyl) glutathione (DCVG), S-(1,2-dichlorovinyl)-L-cysteine (DCVC), and N-Acetyl-S-(1,2-dichlorovinyl)-L-cysteine (NAcDCVC) and to validate the method before application to pharmacokinetic study. Methods: TCE metabolites were simultaneously analyzed using high performance liquid chromatography coupled with electrospray ionization mass spectrometry (HPLC-ESI-MS/MS) with as little as 50 ${\mu}L$ of serum and urine. DCA, TCA and NAcDCVC were extracted with diethyl ether, while DCVC and DCVG were extracted by solid phase extraction. This method was validated according to the guidelines for bioanalytical method validation of the Korean National Institute of Toxicological Research. Then, we determined the five metabolites in five strains of mice at 24 hr after exposure to 1 g TCE /kg body weight. Results: The limits of detection for the five metabolites in biological samples ranged from 0.001 to 0.076 nmol/mL, which is comparable to or better than those previously reported. Most calibration curves showed good linearity ($R^2=0.99$), and between-batch variation was less than 20% expressing acceptable robustness and reproducibility. Using this method, we found TCA and DCA were detected in all test mice at 24 hr after the oral administration while NAcDCVC and DCVC were detected in some strains, which showed strain-dependent metabolism of TCE. Conclusions: The present method could provide robust and accurate measurements of major key metabolites of TCE in biological media, which allowed concurrent analysis of TCE metabolism for limited amounts of biospecimens.
Background: Ginsenosides are the characteristic and principal components which manifest a variety of the biological and pharmacological activities of the roots and rhizomes of Panax ginseng (GRR). This study was carried out to qualitatively and quantitatively determine the ginsenosides in the cultivated and forest GRR. Methods: A rapid and sensitive ultra-high-performance liquid chromatography coupled with diode-array detector and quadrupole/time of flight tandem mass spectrometry (UPLC-DAD-QTOF-MS/MS) was applied to the qualitative analysis of ginsenosides and a 4000 QTRAP triple quadrupole tandem mass spectrometer (HPLC-ESI-MS) was applied to quantitative analysis of 19 ginsenosides. Results: In the qualitative analysis, all ingredients were separated in 10 min. A total of 131 ginsenosides were detected in cultivated and forest GRR. The method for the quantitative determination was validated for linearity, precision, and limits of detection and quantification. 19 representative ginsenosides were quantitated. The total content of all 19 ginsenosides in the forest GRR were much higher than those in the cultivated GRR, and were increased with the growing ages. Conclusion: This newly developed analysis method could be applied to the quality assessment of GRR as well as the distinction between cultivated and forest GRR.
A total of 49 phenolic compounds were identified from the aged red wines made from Cabernet Gernischt (Vitis vinifera L. cv.) grapes, a Chinese characteristic variety, including 13 anthocyanins, 4 pryanocyanins, 4 flavan-3-ol monomers, 6 flavan-3-ol polymers, 7 flavonols, 6 hydroxybenzoic acids, 5 hydroxycinnamic acids, 3 stilbenes, and 1 polymeric pigment. Evolution of these compounds was investigated in wines aged 1 to 13 months. Variance analysis showed that the levels of most phenolics existed significant difference in between wines aged 3 and 9 months. Cluster analysis indicated that 2 groups could be distinguished, one corresponding to wines aged 1 to 3 months and the other to wines aged 4 to 13 months. It was thus suggested that there were 2 key-stages for the development of fine wine quality, at the aged 3 and 9 months, respectively. This work would provide some helpful information for quality control in wine production.
Background: Notoginsenoside Ft1 is a promising potential candidate for cardiovascular and cancer disease therapy owing to its positive pharmacological activities. However, the yield of Ft1 is ultralow utilizing reported methods. Herein, an acid hydrolyzing strategy was implemented in the acquirement of rare notoginsenoside Ft1. Methods: Chemical profiles were identified by ultraperformance liquid chromatography coupled with quadruple-time-of-flight and electrospray ionization mass spectrometry (UPLC-Q/TOF-ESI-MS). The acid hydrolyzing dynamic changes of chemical compositions and the possible transformation pathways of saponins were monitored by ultrahigh-performance LC coupled with tandem MS (UHPLC-MS/ MS). Results and conclusion: Notoginsenoside Ft1 was epimerized from notoginsenoside ST4, which was generated through cleaving the carbohydrate side chains at C-20 of notoginsenosides Fa and Fc, and vinaginsenoside R7, and further converted to other compounds via hydroxylation at C-25 or hydrolysis of the carbohydrate side chains at C-3 under the acid conditions. High temperature contributed to the hydroxylation reaction at C-25 and 25% acetic acid concentration was conducive to the preparation of notoginsenoside Ft1. C-20 epimers of notoginsenoside Ft1 and ST4 were successfully separated utilizing solvent method of acetic acid solution. The theoretical preparation yield rate of notoginsenoside Ft1 was about 1.8%, which would be beneficial to further study on its bioactivities and clinical application.
This study presents a method validation for extraction and quantitative analysis of trichothecene mycotoxins in nuts based on quick, easy, cheap, effective, rugged, and safe (QuEChERS) approach for extraction and enhanced matrix removal (EMR)-lipid-disperive-SPE (d-SPE) cleanup method, with detection and quantification by high-performance liquid chromatography coupled with tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) in positive- and negative-ion modes. Linearity, precision, and accuracy were validated for LC-MS/MS methods. Results obtained with LC-MS/MS were linear, with correlation coefficient ($R^2$) of 0.998. Limits of detection and quantification for mycotoxins were $0.41-3.57{\mu}g/kg$ and $1.23-10.82{\mu}g/kg$, respectively. Intra- and inter-day precisions (RSD, %) were 0.40-8.44% and 1.93-12.46%, respectively. Results indicated to be rapidly and accurately identifying trichothecene mycotoxins and may be used as a suitable safety management method for nuts and nuts related commodities.
Park, Sin-Hee;Do, Yung-Suk;Kim, Youn-Sung;Kim, Nan-Young;Lee, Jin-Hee;Kim, Jong-Hwa;Yoon, Mi Hye
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.32
no.5
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pp.389-395
/
2017
A simultaneous determination of 5 phenolic acids (gallic acid, chlorogenic acid, caffeic acid, pcoumaric acid, trans ferulic acid) and 9 flavonoids (procyanidin b1, aspalathin, rutin, vitexin, hyperoside, isoquercitrin, luteolin, quercetin, chrysoeriol) in rooibos tea has been carried out by ultra-high performance liquid chromatography coupled to tandem mass spectrometry (UPLC-MS/MS). A validated analysis method in this study was applied to rooibos aqueous infusions. Rooibos tea is an antioxidant-rich tea which has anti-cancer, anti-aging, anti-inflammatory, anti-diabetic effect. Extraction yield of phenolics depends on steeping time and temperature of water. Tea infusions were prepared by placing 1 g of tea leaves or 1 tea bag in 100 mL of boiled water, and then at 3, 6 and 30 minutes intervals the infused teas were taken to carry out the analysis of phenolic contents. Another tea infusion was conducted with cold water ($25-30^{\circ}C$) for 30 minuntes. As a result, the total amount of phenolics was highest in rooibos tea steeped with hot water for 30 minutes, followed by 6 minutes, 3 minutes and cold water 30minutes and the result has statistical significance.
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