Complex, ill-defined mixtures of natural origin are often used as nutrients in the production of biological products through microbial fermentation. Product yields are affected by variation in these natural products. Yeast extract is a typical example of these natural products. Since it is a mixture of amino acids, peptides and nucleic acids, its composition is not well characterized. In this study, we investigated the properties of thiamine hydrochloride, riboflavin and pyridoxine hydrochlride in yeast extract by using a gel filtration chromatography, ion exchange chromatography and high performance liquid chromatography. Yeast extract solution was fractionated by gel filtration chromatography and ion exchange chromatography, and then, each fraction was analyzed by using a high performance liquid chromatography.
Cysteamine has been used in cosmetics as an antioxidant, a hair straightening agent, and a hair waving agent. However, recent studies indicate that cysteamine can act as an allergen to hairdressers. The objective of this study was to develop and validate a simple and effective reversed-phase high-performance liquid chromatography (RP-HPLC) method for the measurement of cysteamine and its dimer, cystamine. Sodium 1-heptanesulfonate (NaHpSO) was used as an ion-pairing agent to improve chromatographic performance. Separation was performed on a Gemini C18 column ($250mm{\times}4.6mm$, $5{\mu}m$ particle size) using a mobile phase composed of 85:15 (v/v) 4 mM NaHpSO in 0.1% phosphoric acid:acetonitrile. UV absorbance was monitored at 215 nm. The RP-HPLC method developed in this study was validated for specificity, linearity, limit of detection, limit of quantitation, precision, accuracy, and recovery. Cysteamine and cystamine were chromatographically resolved from other reducing agents such as thioglycolic acid and cysteine. Extraction using water and chloroform resulted in the recovery for cysteamine and cystamine ranging from 100.2-102.7% and 90.6-98.7%, respectively. This validated RP-HPLC method would be useful for quality control and monitoring of cysteamine and cystamine in cosmetics.
Hong In-Suk;Choi Yoon-Hwa;Kwon Taek-Boo;Lee Jung-Hark
Korean Journal of Veterinary Service
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v.29
no.3
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pp.317-330
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2006
This study was conducted to develop the analytical method about simultaneous determination for synthetic antimicrobials in muscle by high performance liquid chromatography - mass selective detector (HPLC- MSD). Solid phase extraction (SPE), matrix solid phase dispersion (MSPD) and liquid-liquid extraction (LLE) have been adapted as pretreatment procedures for HPLC- MSD. Among various solvent tested, methanol was chosen for extraction of synthetic antimicrobials in muscles. For the optimized response, the values of various MS parameters including fragment voltage, drying gas flow, nebulizer pressure, drying gas temperature were verified. The average recovery rates using MSPD and SPE for muscles of bovine and pork were 78.9-127.1% and 78.3-121.7%, respectively. This method was verified the satisfactory performance for fourteen synthetic antimicrobials excepting carbadox in muscle of pork as detection limit of $0.05{\mu}g/g$ on API/ES SIM mode.
Many successive liquid-liquid extractions occur enabling purification of the crude material to occur. In high performance counter-current chromatography (HPCCC), crude material is partitioned between two immiscible layers of solvent phases. The stationary phase (SP) is retained by hydrodynamic force field effect and the mobile phase (MP) is pumped through the column. Purification occurs because of the different solubility of the components in the liquid mobile and stationary phases. There are many key benefits of liquid stationary phases such as high mass and volume injection loadings, total sample recovery, and easy scale-up. Many researchers showed that predictable scale-up from simple test is feasible with knowledge of the stationary phase retention for the planned process scale run. In this review we review the recent advances in HPCCC research and also describe the key applications such as natural products and synthetics (small or large molecules).
Kim, Gon-sup;Shin, Sun-hye;Kim, Jong-su;Ra, Do-kyung
Korean Journal of Veterinary Research
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v.41
no.1
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pp.13-19
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2001
A simple and rapid analytical method for the determination of tylosin in chicken, pork and muscle was established by High-Performance Liquid Chromatography(HPLC). Chicken, pork and beef muscle(5 g) were fortified by adding the $0.2{\mu}g/ml$ of standard tylosin and the drug was extracted from meats with 70% acetonitrile(ACN) and followed by liquid-liquid partition for clean-up procedure. Then $20{\mu}l$ portion of ACN elution was directly analyzed by HPLC with spectra 100 variable wavelength detector, and unfortified blank control were treated similarly. The average recovery rate of tylosin added to chicken, pork and beef muscle were $83{\pm}2.3$, $96{\pm}3.3$ and $92{\pm}1.6$(%) at the level 0.2 ppm, respectively. No tylosin residues in marketing meats. These results suggested that HPLC methodology could be acceptable for the extraction, determination and screening of tylosin residues in edible meats.
Analytical methods were developed to determine cyclosulfamuron residues in soil, water, rice grain and straw using high-performance liquid chromatography (HPLC) with ultraviolet absorption detection. In these methods, cyclosulfamuron was extracted with aqueous $Na_2HPO_4$/acetone and acetone/methanol mixture from soil and rice samples respectively. Liquid-liquid partition coupled with ion-associated technique, Florisil column chromatography, and solid-phase extraction (SPE) were used to separate cyclosulfamuron from interfering co-extractives prior to HPLC analysis. For water sample, the residue was enriched in $C_{18}$-SPE cartridge, cleaned up in situ, and directly subjected to HPLC. Reverse-phase HPLC under ion-suppression was successfully applied to determine cyclo-sulfamuron in sample extracts with the detection at its ${\lambda}_{max}$ (254 nm). Recoveries from fortified samples averaged $87.8{\pm}7.1%$ (n=12), $97.3{\pm}7.2%$ (n=12), $90.8{\pm}6.6%$ (n=6), and $78.5{\pm}6.7%$ (n=6) for soil, water, rice grain and straw, respectively. Detection limits of the methods were 0.004 mg/kg, 0.001 mg/L, 0.01 mg/kg and 0.02 mg/kg for soil, water, rice grain and straw samples, respectively.
Lee, Ju Sung;Paje, Leo Adrianne;Yoo, Sang-Woo;Lee, Seong;Ku, Ja-Jung;Lee, Sanghyun
Journal of Applied Biological Chemistry
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v.64
no.1
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pp.63-67
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2021
Isovitexin, a marker compound with various pharmacological activities, in Lespedeza cuneata, was analyzed using high performance liquid chromatography coupled with UV (HPLC/UV). There are no previous reports on using L. cuneata as the source material for the quantification of isovitexin. In this study, we developed an optimized method using HPLC-UV analysis, which was validated using various parameters. Our method demonstrated high specificity, and good separation of the chromatographic peak was achieved. Parameters such as linearity (r2≥0.9997), precision, and accuracy indicated that our proposed analytical method had good reliability and sensitivity. These results demonstrate the utility and convenience of our method for rapidly quantifying isovitexin in L. cuneata extracts.
An analytical method was developed to determine tricyclazole residues in rice grain, straw, and soil using high-performance liquid chromatography (HPLC) with ultraviolet absorption detection. Tricyclazole was extracted with methanol from moist rice grain, straw, and soil samples. n-Hexane washing was employed to remove nonpolar co-extractives during liquid-liquid partition. Tricyclazole was then extracted with dichloromethane from alkaline aqueous phase, while acidic interferences remained in the phase. Dichloromethane extract was further purified by silica gel column chromatography prior to HPLC determination. Reverse-phase HPLC using an octadecylsilyl column was successfully applied to separate and quantitate the tricyclazole residue in sample extracts monitored at ${\lambda}_{max}$ 225nm. Recoveries from fortified samples averaged $95.5{\pm}3.0%\;(n=6),\;87.5{\pm}20.%\;(n=6),\;and\;84.3{\pm}2.8%$ (n=12) for rice grain, straw, and soil, respectively. Detection limit of the method was 0.02 mg/kg for rice grain and soil samples while 0.05 mg/kg for rice straw samples. The proposed method was reproducible and sensitive enough to evaluate the safety of tricyclazole residues in rice grain, straw, and soil.
High-performance liquid chromatography (HPLC) and capillary electrophoresis (CE) were used to identify five active components in the modified herbal decoction Bo-Yang-Hwan-O-Tang (mBHT), i.e., amygdalin, decursin, paeoniflorin, salvianolic acid B, and calycosin-7-O-${\beta}$-D-glycoside. These components were identified by comparing their retention times and mass spectra with those of reference compounds. The conditions of both analytical methods were optimized and validated. Sufficient separation of target analytes was achieved using a buffer consisting of 40 mM sodium borate and 60 mM sodium dodecylsulfate (SDS) containing 10% methanol (pH 9.5) at 250 nm for CE analysis and gradient elution with a water-methanol mobile phase and ultraviolet (UV) photodiode array detector (DAD) at 250 nm for HPLC analysis. The mBHT components were determined within 65 min by HPLC and 16 min by CE. All calibration curves showed high linearity (R > 0.999) within the ranges tested. Intra-day and inter-day precision were less than 1.6% and 1.8% for HPLC and 2.5% and 4.8% for CE, respectively. The accuracy of the methods ranged from 98.8% to 102.3% for HPLC and from 95.9% to 108.2% for CE.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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