Acetyl xylan esterase gene (AXE) from Aspergillus ficuum was cloned and its Pichia expression plasmid, pPICZ$\alpha$C-AXE (4.6 kb), was constructed, in which the AXE gene was under the control of the AOXI promoter and connected downstream of mating factor u-1 signal sequence. The plasmid linearized by Sacl was integrated into the 5'AOXI region of the chromosomal DNA of P. pastoris. In the flask batch culture of P. pastoris transformant on methanol medium, the cell concentration and total AXEase activity reached at 6.0 g-dry cell weight/1 and 77 unit/ml after 36 h cultivation, respectively. In the fed-batch culture employing the optimized methanol and histidine feeding strategy, the cell concentration and total AXEase activity were significantly increased to about 97 g-dry cell weight/1 and 930 unit/ml. Most of AXEase activity (>90%) was found in the extracellular medium and the majority of extracellular protein (>80%) was AXEase enzyme (33.5 kDa). This result means that about 9.8 g/1 of AXEase protein was produced in the extracellular medium.
The major urinary proteins(MUPs) of mice that bind hydrophobic molecules known as pheromones are regulated in part by the actions of growth hormone. The expression of the MUPs was therefore investigated in transgenic mice that express a human growth hormone-releasing factor gene from a metallothionein gene promoter(MT-GRF) and as a result have elevated growth hormone levels. MUPs were severely down-regulated in the urine of these animals compared to normal mice or to control transgenic mice expressing another gene(the inhibin a subunit) from the same metallothionein promoter(MT-Inh) and more MUPs disappeared in male mice than female ones. MUPs were also down-regulated in the urine of the UT-GRF-injected mice. In addition, it was observed that the urine of the MT-GRF mice included a high molecular weight protein that co-migrates with the major serum protein albumin, indicating an impairment in glomerular filtration within the kidney. The urinary loss of serum proteins was more severe in male MT-GRF mice than female ones. Thus the overexpression of human GRF mimics changes observed in MUP protein expression and glomerular function in other models of growth hormone hypersecretion with sex-dependent differential effects.
Kim, Hyukmin;Kim, Jinsu;Lee, Yoonsoo;Yang, Jaeyeon;Han, Kyuhyung
Molecules and Cells
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v.21
no.2
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pp.261-268
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2006
The Drosophila methuselah (mth) mutant has an approximately 35 percent increase in average lifespan, and enhanced resistance to various forms of stress, including starvation, high temperature, and dietary paraquat. To examine the transcriptional regulation of mth, we used luciferase assays employing Drosophila S2 cells. Two positive control elements were found at -542 ~ -272 (PE1) and +28 ~ +217 (PE2), where putative binding sites for transcription factors including Dorsal (Dl) were identified. Cotransfection of a Dl expression plasmid with a mth-luciferase reporter plasmid resulted in decreased reporter activity. PE1 and PE2, the minimal elements for strong promoter activity, were required for maximal repression by Dl protein. The N-terminal Rel homology domain (RHD) of Dl was not sufficient for repression of mth. We demonstrated by chromatin affinity precipitation (ChAP) assays in S2 cells that Dl bound to the putative PE1 binding site. Unexpectedly, semi-quantitative RT-PCR analysis revealed that the level of mth transcripts was reduced in dl flies. However, the in vivo result support the view that mth expression is regulated by dl, since it is well known that Dl functions as both a transcriptional activator and repressor depending on what other transcription factors are present. These findings suggest that both innate immunity and resistance to stress are controlled by Dl protein.
${\beta}$-Glucosidase is necessary for the bioconversion of glycosidic phytochemicals in food. Two Bifidobacterium strains (Bifidobacterium animalis subsp. lactis SH5 and B. animalis subsp. lactis RD68) with relatively high ${\beta}$-glucosidase activities were selected among 46 lactic acid bacteria. A ${\beta}$-glucosidase gene (bbg572) from B. lactis was shotgun cloned, fully sequenced, and analyzed for its transcription start site, structural gene, and deduced transcriptional terminator. The structural gene of bbg572 was 1,383 bp. Based on amino sequence similarities, bbg572 was assigned to family 1 of the glycosyl hydrolases. To overexpress bbg572 in Bifidobacterium, several bifidobacteria expression vectors were constructed by combining several promoters and a terminator sequence from different bifidobacteria. The maximum activity of recombinant Bbg572 was achieved when it was expressed under its own promoter and terminator. Its enzyme activity increased 31-fold compared with those of its parental strains. The optimal pH for Bbg572 was pH 6.0. Bbg572 was stable at $37-40^{\circ}C$. It hydrolyzed isoflavones, quercetins, and disaccharides with various ${\beta}$-glucoside linkages. Bbg572 also converted the ginsenosides Rb1 and Rb2. These results suggest that this new ${\beta}$-glucosidase-positive Bifidobacterium transformant can be utilized for the production of specific aglycone products.
The influence of the nature of plasmids on fermentation parameters such as cell growth, cell viability, plasmid stability, and product formation has been investigated using E. coli M5248 and its recombinant derivatives M5248 [pBR322], M5248[pAS1], and M5248[pNKM21]. At a low temperature ($30^\circ{C}$), the cell growth, cell viability, and protein synthesis of the recombinants were nearly identical to those of the host cell. However, at high temperature ($42^\circ{C}$), in which transcription from the P_L$ promoter is derepressed, the recombinant cells showed decreased stability along with lower growth rates and cell viability. The ratio of total protein to cell mass was in the order of E. coli M5248>M5248[pBR322]>M5248[pAS1]>M5248[pNKM21]. It was found that transcription from the $P_L$ promoter adversely affect the plasmid maintenance and host cell metabolism even in the absence of the cloned-gene expression. Furthermore, profiles of ${\beta}$ activity were shown to vary with recombinant strains. E coli M5248[pBR322] showed highest ${\beta}-lactamase$ activity at $30^\circ{C}$, while at $42^\circ{C}\;{\beta}-lactamase$ activity was significantly reduced irrespective of the strains. The effect of the plasmid properties on plasmid-encoded gene expression has been further examined based on the relationship between $\{beta}-lactamase$ activity and plasmid-harboring cell numbers.
Background: The human mic2 gene is a pseudoautosomal gene that encodes a cell surface antigen, CD99. High levels of CD99 constitute a tumor marker in Ewing s sarcoma (ES). We have recently demonstrated that CD99-induced apoptosis occurs only in undifferentiated ES cells, not in differentiated ES cells, raising the possibility of the involvement of CD99 in neural ontogeny. Methods: To elucidate the relations between the expression of CD99 and the differentiation of neural cells and the mechanism by which the expression of CD99 is regulated, we analyzed the differential patterns of CD99 expression in SH-SY5Y by treatment of 12-O-tetradecanoyl-13-phorbol acetate (TPA) and retinoic acid. In addition, to explore the transcriptional activity of CD 99 during neural cell differentiation, SH-SY5Y cells were transiently transfected with a CD99 promoter-driven luciferase construct, and treated with the inducers. Results: In immunoblotting and flow cytometry, the expression level of CD99 was increased on differentiated SH-SY5Y cells induced by TPA and retinoic acid. The luciferase activity was elevated by the treatment with TPA, known to mature SH-SY5Y cells toward a sympathetic neuronal lineage, whereas retinoic acid inducing a sympathetic chromaffin lineage displayed little effect. Conclusion: The result indicates that CD99 might be expressed only on cells maturing toward a neuronal lineage among differentiating primitive neuronal cells. In addition, the expression of CD99 seems to be regulated at the transcriptional level during the differentiation.
Kim, Yun-Hee;Han, Eun-Hee;Kwak, Sang-Soo;Lee, Shin-Woo
Journal of Plant Biotechnology
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v.45
no.4
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pp.364-368
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2018
The R2R3-type protein IbMYB1 transcription factor is a key regulator for anthocyanin biosynthesis in the storage roots of sweet potatoes. It was previously demonstrated that the IbMYB1 expression stimulates anthocyanin pigmentation in tobacco leaves, arabidopsis and storage roots of sweet potatoes. In this study, we generated the transgenic potato plants that express the IbMYB1 genes, which accumulated high levels of anthocyanins under the control of either the tuber-specific patatin (PAT) promoter or oxidative stress-inducible peroxidase anionic 2 (SWPA2) promoter. The PAT-MYB1 transgenic lines exhibited higher anthocyanin levels in the tuber than the empty vector control (EV) or SWPA2-MYB1 plants. When combined, our results indicated that overexpression of the IbMYB1 is a highly promising strategy for the generation of transgenic plants with enhanced tissue specific anthocyanin production.
Bacillus subtillis strains with transition state regulator mutations and a spore mutation were developed for the overexpression of apsE and for the enhancement of expression level. Among the many regulator genes, degU and hpr were chosen as a representative positive and negative regulator for the aprE, respectively. Spo II G was used for the construction of asporogeneous strains. All the mutants were constructed from two protease-deleted strain DB104 and the apsE gene was transformed with an integration vector pMK101. DB104(deg$U^h$(32) $his^+$)::pMK101(Cm) and DB104($\Delta$her(Em))::pMKl01(Cm) show 7-fold and about 2-fold increase in aprE expression level, respectively. But the effect of transition state regulator mutation on the aprE expression was diminished when the integrated aprE gene was amplified by the high concentration of chloramphenicol, i. e. 30 $\mu\textrm{g}$/ml. DB104($\Delta$spoIIG(Pm) degUh(32) his+)::pMK101(Cm) and DB104($\Delta$spoIIG(Pm) $\Delta$hpr(Em))::pMK101 double mutant show 10-fold and 3-fold increase in aprE expression level, respectively. The results suggest that sporulation mutation and transition state regulator mutation have independent and additive effect on the aprE expression, and the same gene dosage effect on the transition state regulator mutation was also identified.
Kim, Joongkyu;Choi, Young-Il;Park, Sang-D;Seong, Rho-H
Animal cells and systems
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v.1
no.4
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pp.657-663
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1997
The CD4 and CDS coreceptors, in conjunction with the T cell receptor (TCR) , make important contributions to the differentiation of thymocytes. They have been shown to be involved in the clonal deletion and positive selection processes during T cell development in thymus. To further analyze the role of CD4 and CDS proteins during T cell differentiation, we have generated transgenic mice constitutively expressing high levels of a native CD4 and a CD4{CDSa hybrid protein. The hybrid protein is composed of CD4 extracellular domain linked to the CD8a transmembrane region and cytoplasmic tail. The transgenes were driven by human beta-actin promoter, and therefore, they were expressed in all tissues examined including thymus, spleen, and lymph nodes. The resulting CD4 and CD4{CD8${\alpha}$transgenic mice were found to express the CD4 and CD4{CD8${\alpha}$ respectively, in developing thymocytes and peripheral T cells. The expression levels of transgenic proteins were 5-10 times higher than that of endogenous CD4 in thymus. However, total surface CD4 expression (CD4 or CD4{CD8${\alpha}$ transgenic protein plus endogenous CD4) of the transgenic mice were main. tained at similar levels compared to control littermates. Surface CD4 expression on CDS T cells, however, was significantly lower than that on cells expressing endogenous CD4. These results suggest that a total avidity between developing thymocytes and thymic stromal cells is impor. tant for differentiation of thymocytes.
The nucleotide sequence of the luxC gene coding for lux-specific fatty acyl-CoA reductase and the upstream DNA (325bp)of the structural gene from bioluminescent bacterium, Photobacterium phosphoreum, has been deternubed. An open reading frame extending for more than 20 codons in 325 bp DNA upstream of luxC was not present in both directions. The lux gene can be translated into a polypeptide of 54 kDa and the amino acid sequences of lux specific reductases of P. phosphoreum shares 80, 65, 58, and 62% identity with those of the Photobacterium leiognathi, Vibrio fischeri, Vibrio harveyi, and Xehnorhabdus luminescenens reductases, respectively. Analyses of codon usage, showing that a high frequency (2.3%) of the isoleucine codon, AUA, in the luxC gene compared to that found in Escherichia coli genes (0.2%) and its absence in the luxA and B genes, suggested that the AUA codon may play a modulator role in the expression of lux gene in E. coli. The structural genes (luxC, D, A, B, E) of the P. phosphoreum coding for luciferase (${\alpha}$,${\beta}$) and fatty acid reductase (r, s, t) polypeptides can be expressed exclusively in E. coli under the T7 phage RNA polymerase/promoter system and identificationof the [35S]methionine labelled polypeptide products. The degree of expression of lux genes in analyses of codon usage. High expression of the luxC gene could only be accomplished in a mutant E. coli 43R. Even in crude extracts, the acylated acyl-CoA reductase intermediate as well as acyl-CoA reductrase activities could be readily detected.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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