To investigate the promoter effect on heterologous gene expression in S. cerevisiae, the recombinant plasmids pYI11, pYI12, pYI10-2, and pYIGP were constructed to contain the inulinase gene (INUI) as a reporter under the control of GAL10, GAL7, GAL1, and GAP promoters, respectively. When the yeasts transformants were cultivated on galactose-containing rich media, the cell growth reached to 36-39 OD600 at 72 hours of cultivation. The specific growth rates of the cells harboring the four different plasmids decreased similarly : they dropped from $0.24 h^{-1}$ during the glucose-consuming period to 0.04 -$0.10 h^{-1}$ during the galactose-consuming period (gene expression phase for GAL promoter system). After the depletion of glucose, the expression of inulinase gene was started and reached to maximal levels of 4.3(GAL1 promoter), 4.0(GAL10 promoter), 3.8(GAL7 promoter), and 1.6(GAP promoter) unit/mL at 72 hours of cultivation. Based on the maximal expression level and activity staining on the plate, the promoter strength was in the order of GAL1, GAL10, GAL7 and GAP promoter. While the GAL-promoter systems showed a high plasmid stabilities of more than 78%, the GAP-promoter plasmid revealed a lower plasmid stability of 55%. Most of inulinase activity (98%) was found in the extracellular medium, indicating that the secretion efficiency of inulinase is independent on the type of promoter.
Ryu, Sang Eun;Shim, Tammy;Yi, Ju-Yeon;Kim, So Yeun;Park, Sun Hwa;Kim, Sung Won;Ronnett, Gabriele V.;Moon, Cheil
Molecules and Cells
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v.40
no.12
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pp.954-965
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2017
Mammalian genomes are well established, and highly conserved regions within odorant receptors that are unique from other G-protein coupled receptors have been identified. Numerous functional studies have focused on specific conserved amino acids motifs; however, not all conserved motifs have been sufficiently characterized. Here, we identified a highly conserved 18 amino acid sequence motif within transmembrane domain seven (CAS-TM7) which was identified by aligning odorant receptor sequences. Next, we investigated the expression pattern and distribution of this conserved amino acid motif among a broad range of odorant receptors. To examine the localization of odorant receptor proteins, we used a sequence-specific peptide antibody against CAS-TM7 which is specific to odorant receptors across species. The specificity of this peptide antibody in recognizing odorant receptors has been confirmed in a heterologous in vitro system and a rat-based in vivo system. The CAS-TM7 odorant receptors localized with distinct patterns at each region of the olfactory epithelium; septum, endoturbinate and ectoturbinate. To our great interests, we found that the CAS-TM7 odorant receptors are primarily localized to the dorsal region of the olfactory bulb, coinciding with olfactory epithelium-based patterns. Also, these odorant receptors were ectopically expressed in the various non-olfactory tissues in an evolutionary constrained manner between human and rats. This study has characterized the expression patterns of odorant receptors containing particular amino acid motif in transmembrane domain 7, and which led to an intriguing possibility that the conserved motif of odorant receptors can play critical roles in other physiological functions as well as olfaction.
The optimum conditions for glucoamylase production, and ethanol productivity of the transformant TSD-14 were investigated as compared with the parental strains. The properties of TSD-14 were comparatively similar to the donor S. diastaticus IFO 1046 as regards the conditions of glucoamylase production and ethanol productivity. The soluble starch was the most effective carbon source for the glucoamylase production. While inorganic nitrogen sources did not prompt cell growth and enzyme production, the organic nitrogen sources generally enhanced both cell growth and glucoamylase production. The metal salts such as FeSO$_4$, MgSO$_4$, MnCl$_2$, and NiSO$_4$were favorable to the enzyme production. And the optium temperature and initial pH for glucoamylase production were 3$0^{\circ}C$ and 5. The transformant TSD-14 produced 8.3%(v/v) ethanol from 15% sucrose medium, 4.8%(v/v) ethanol from 15% soluble starch medium, and 7.5%(v/v) ethanol from 15% liquefied potato starch medium. The corresponding fermentation efficiency were 84% , 45% and 70%, respectively.
Park, Sung-Hee;Cha, Min-Ho;Kim, Eun-Jung;Yoon, Yeo-Joon;Sohng, Jae-Kyung;Lee, Hee-Chan;Liou, Kwang-Kyoung;Kim, Byung-Gee
KSBB Journal
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v.23
no.1
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pp.44-47
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2008
Anthracycline antibiotics doxorubicin (DXR) is clinically important cancer therapeutic agent produced by Streptomyces peucetius. DXR result by further metabolism of rhodomycin D (RHOD) and require a deoxy-sugar component for their biological activity. In this study, production of TDP-L-daunosamine and its attachment to ${\varepsilon}$-rhodomycinone (RHO) to generate RHOD has been achieved by bioconversion in Streptomyces venezuelae that bears eleven genes. S. peucetius seven genes (dnmUTJVZQS) were transformed by plasmid and S. venezuelae two genes desIII, IV and two more S. peucetius drrA, B genes were integrated into chromosomal DNA. To generate the feeding substrate RHO, 6L S. peucetius grown on agar plate was harvested, extracted with organic solvent and then purified using preparative HPLC. Recombinant S. venezuelae grown on agar plate containing RHO was harvested and its n-butanol soluble components were extracted. The glycosylated product of aromatic polyketide RHO using heterologous host S. venezuelae presents the minimal information for TDP-L-daunosamine biosynthesis and its attachment onto aglycone. Moreover, the structure of auxiliary protein, DnrQ, was predicted by fold recognition and homology modeling in this study. This is a general approach to further expand of new glycosides of antitumor anthracycline antibiotics.
To construct a highly sensitive detection system for endocrine disruptors (EDs), we have compared the activity of promoters with the n-alkane-inducible cytochrome P450 gene (ALK1), isocitrate lyase gene (ICL1), ribosomal protein S7 gene (RPS7), and the translation elongation factor-1${\alpha}$ gene (TEF1) for the heterologous gene in Yarrowia lipolytica. The promoters were introduced into the upstream of the lacZ or hERa reporter genes, respectively, and the activity was evaluated by ${\beta}$-galactosidase assay for lacZ and Western blot analysis for hER${\alpha}$. The expression analysis revealed that the ALK1 and ICL1 promoters were induced by n-decane and by EtOH, respectively. The constitutive promoter of RPS7 and TEF1 showed mostly a high level of expression in the presence of glucose and glycerol, respectively. In particular, the TEF1 promoter showed the highest ${\beta}$-galactosidase activity and a significant signal by Western blotting with the anti-estrogen receptor, compared with the other promoters. Moreover, the detection system was constructed with promoters linked to the upstream of the expression vector for the hER${\alpha}$ gene transformed into the Y. lipolytica with a chromosome-integrated lacZ reporter gene under the control of estrogen response elements (EREs). It was indicated that a combination of pTEF1p-hER${\alpha}$ and CXAU1-2XERE was the most effective system for the $E_2$-dependent induction of the ${\beta}$-galactosidase activity. This system showed the highest ${\beta}$-galactosidase activity at $10^{-6}\;M\;E_2$, and the activity could be detected at even the concentration of $10^{-10}\;M\;E_2$. As a result, we have constructed a strongly sensitive detection system with Y. lipolitica to evaluate recognized/suspected ED chemicals, such as natural/synthetic hormones, pesticides, and commercial chemicals. The results demonstrate the utility, sensitivity, and reproducibility of the system for identifying and characterizing environmental estrogens.
The Journal of the Korean Society for Microbiology
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v.13
no.1
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pp.17-24
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1978
Modulating effects of Candida albicans on the immune responses of mice immunized with sheep red blood cells(SRBC) were assessed both by footpad tests for anaphylactic, Arthus and delayed type hypersensitivity rections against homologous and heterologous antigenic challenges and by serum antibody titrations for hemagglutinin and hemolysin against SRBC. The results are summarized as follows: 1. In the mice simultaneously immunzed with C. albicans and SRBC, anaphylactic type and Arthus type footpad reactions to C. albicans challenge were enhanced, and extents of the enhancements were proportional to the concentration of SRBC administered for immunization, reaching peak in mice immunized with 0.2ml($10^8$) of 5% SRBC suspension. Although a little enhancement of delayed type hypersensitivity to C. albicans was observed in those mice, there was no significant difference between the mice groups immunized either with SRBC alone or SRBC and C. albicans simultaneously. 2. Simultaneous immunization of mice with C. albicans and SRBC resulted in the suppression of both anaphylactic type and Arthus type footpad reactions to SRBC, and the extent of such suppressions was inversly proportional to the numbers of C. albicans administered for immunization. Delayed type reaction of the mice to SRBC varied little in regards to the different numbers of C. albicans injected. 3. Hemagglutinin titers differed little between the mice groups immunized with SRBC alone or with SRBC and C. albicans simultaneously. Hewever, hemolysin titers were lower in the mice immunized simultaneously with SRBC and C. albicans. 4. In the peripheral blood of mice immunized simultaneously with SRBC and C. albicnas. there observed increases in the percents of monocyte and polymorphonuclear leukocytes and decrease in the numbers of lymphocytes and pyroninophilic lymphocytes. These results indicated that C. albicans is an immunosuppressant of the mice to SRBC when both anteigns were administered simultaneously for immunization, and that SRBC acted as an enhancer of anaphylactic type and Arthus type reaction of mice to C. albicans when administered simultaneously.
In this paper we describe the cloning and expression of the genes encoding the flavonoid-biosynthetic enzyme dihydroflavonol 4-reductase (DFR) in Matthiola incana R. Br. A heterologous cDNA probe from Zea mays was used to isolate full-size DFR cDNA clone from a corolla-specific cDNA library. Comparison of the coding region of this DFR cDNA sequence including the sequences of Zea mays, Anthirrinum majus, Petunia hybrida, Callistephus chinensis, Dianthus caryophyllus and Rosa hybrida reveals a identity higher than 61% at the nucleotide level. The DFR transcript is G/C rich in monocotyledonous plants show a strong codon bias preferring codons with a G or C in the third position. The function of this nucleotide sequences were verified by comparison with amino acid sequences of the amino-terminus and tryptic peptides from purified plant enzyme, by northern blotting with mRNA from wild type and mutant plants and by in vitro expression yielding an enzymatically active reductase. Genomic southern blot analysis showed the presence of one gene for DFR in Matthiola incana. Northern blot analysis of the DFR wild type and mutant lines showed that the lack of DFR activity in the stable acyanic mutant k17b is clearly by a transcriptional block of the DFR gene.
The Salmonella rfb gene encoding for the biosynthesis of the oligosaccharide-repeating units of the O-antigenic determinants was cloned and sequenced. A set of nucleotide primers(a forward and reverse) was selected to target a defined region of the guanosine diphospho-mannose(GDP-Man) pyrophosphorylase synthase gene : rfbM of Salmonella C serogroup. The primer set was used to develop a PCR-based rapid and specific detection system for Salmonella C1 serogroup. Amplification bands of predicted size(1,422bp) were generated from 11 different Salmonella C1 isolates. The bands were verified to be specific for the C1 serogroup by Southern blot analysis using reference homologous DNA specificity was further confirmed by the lack of reactivity with heterologous DNA derived from non-salmonella members of the family enterobacteriaeceae. A specificity of 100% was deduced along with a very high sensitivity shown by a detection limit of 1fg of a purified DNA template. The isolated DNA sequence was found to be 99.8% homologous to S montevideo but the related primers amplified with the predicted band sizes with all the Salmonella C1 serogroups tested. It is concluded that the PCR protocol based on the rfbM gene from S cholerasuis is optimal fast and specific for the detection of Salmonella C1 serogroup and also the corresponding probe is suitable for rapid detection of all Salmonella C1 serogroup DNA tested. This technology should facilitate the identification of contaminated pig products and for any other products contaminated with the Salmonalla C1 serogroup. The immediate impact of this developed method will be in the area of food safety of pig products with the potential prospect for adaptation to other food inspection technologies.
Two pathways of ammonium assimilation and glutamate biosynthesis have been identified in microorganisms. One pathway involves the NADP-linked glutamate dehydrogenase, which catalyzes the amination of 2-oxoglutarate to form glutamate. An alternative pathway involves the combined activities of glutamine synthetase, which aminates glutamate to form glutamine, and glutamate synthase, which transfers the amide group of glutamine to 2-oxoglutarate to yield two molecules of glutamate. We have cloned the large subunit of the glutamate synthase (GOGAT) from Salmonella typhimurium by screening the expression of GOGAT and complementing the gene in E. coli GOGAT large subunit-deficient mutants. Three positive clones (named pUC19C12, pUC19C13 and pUC19C15) contained identical Sau3AI fragments, as determined by restriction mapping and Southern hybridization, and expressed GOGAT efficiently and constitutively using its own promoter in the heterologous host. The coding region expressed in Escherichia coli was about 170 kDa on SDS-PAGE. This gene spans 4,732 bases, contains an open reading frame of 4,458 nucleotides, and encodes a mature protein of 1,486 amino acid residues (Mr =166,208). The EMN-binding domain of GOGAT contains 12 glycine residues, and the 3Fe-4S cluster has 3 cysteine residues. The comparison of the translated amino acid sequence of the Salmonella GOGAT with sequences from other bacteria such as Escherichia coli, Salmonella enterica, Shigella flexneri, Yersinia pestis, Vibrio vulnificus and Pseudomonas aeruginosa shows sequence identity between 87 and 95%.
Flavanone 3$\beta$-hydroxylase (FHT) is an enzyme acting in the central part of the flavonoid biosynthesis pathway. FHT catalyses the hydroxylation of flavanone to dihydroflavonols in the anthocyanin pathway. In this paper we describe the cloning and expression of the genes encoding the flavonoid-biosynthetic enzyme FHT in Gypsophila paniculata L. A heterologous cDHA probe from Dianthus cavophyllus was used to isolate FHT-encoding cDHA clones from Gypsophila paniculata L.. Inspection of the 1471 bp long sequence revealed an open reading frame 1047 bp, including a 190 bp 5' leader region and 288 bp 3' untranslated region. Comparison of the coding region of this FHT cDHA sequence including the sequences of Arabidopsis thaliana, Citrus sinensis, Dianthus caryophyllus, Ipomoea batatas, Matthiola incana, Nierembergia sp, Petunia hybrida, Solanum tuberosum, Vitis vinifera reveals a identity higher than 69% at the nucleotide level. The function of this nucleotide sequences were verified by comparison with amino acid sequences of the amino-terminus and tryptic peptides from purified plant enzyme, by northern blotting with mRHA from wild type and mutant plants, by in vitro expression yielding and enzymatically active hydroxylase, as indicated by the small dihydrokaempferol peak. Genomic southern blot analysis showed the presence of only one gene for FHT in Gypsophila paniculata.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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