The fertilized eggs of E. septemfasciatus are spherical and transparent with buoyancy at 790 to $890{\mu}m$ (average $821.8{\pm}2.0{\mu}m$) in diameter with 170 to $230{\mu}m$ oil globules (average $192.9{\pm}0.93{\mu}m$). Hatching began approximately 46 and 35 hours after fertilization at $22.0^{\circ}C$ and $25.0^{\circ}C$ water temperature, respectively. The average total length of newly hatched larvae was $1.75{\pm}0.03mm$. Most of the yolk and oil globules were absorbed within 3 to 4 days after hatching. The larvae reached 2.48 to 2.72 mm in total length, and their mouths and anuses opened at 3 to 4 days after hatching. In this time, the mouth diameters of the larvae were 0.209 to 0.238 mm. The larvae reached 3.24 to 4.15 mm in total length at 11 to 17 days after hatching, and began to metamorphose at the time the second dorsal and pelvic spines appeared and elongated. The abdominal cavity was densely lined with melanophores. The larvae reached 5.12 mm in total length at 24 days after hatching.
Kim Chi-Hong;Im Jae Hyun;Johnson Stewart C;Hur Jun Wook;Park In-Seok
Development and Reproduction
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v.8
no.1
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pp.11-17
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2004
The larvae and juvenile development of haddock Melanogrammus aeglefinus which is significant commercial fish living north Atlantic Ocean are described here. Larvae were reared in laboratory and sampled periodically for developmental study until 67 days after hatching. An increase in total length(TL) of fish indicated continuous growth, described by the growth expression Y=4.07 $e^{0.037}$( $R^{2}$=0.9978). The newly hatched pre-larvae was 4.9 mm in TL with ellipsoid yolk. In 16 days after hatching, larvae attained 6.8 mm in TL, and absorbed the yolk completely to become post-larval stage, but first heterotrophic food could be in 7 days after hatching already. Post-larval stage continued during 16~52 days after hatching with development of organs attachment. In 61 days after hatching with 41.3 mm in TL, the fries became a juvenile stage respectively having small teed lateral line, and a black blotch on the flank same as adults, but chin barbel was not developed yet. It was presumed that haddock changed food and ecological behavior after metamorphosis ken this time.e.
We described morphological characteristics of embryonic, larval, and juvenile period of the yellow puffer, Takifugu obscurus. We defined seven periods of embryogenesis the zygote, cleavage, blastula, gastrula, segmentation, pharygula, and hatching periods. The eggs were adhesive and spherical in shape. The egg yolk had numerous tiny oil globules. Hatching began about 280 hours after insemination at $17.0{\pm}1.0^{\circ}C$ water temperature. Melanopores of star shape were seen on yolk, head and trunk during the pharygula and hatching period. The hatched larvae haying large yolk were $3.00\~3.54$ mm in size with $25\~26$ myomeres. The larvae completely absorbed the yolk materials and oil globules within 7 days after hatching and became post-larvae. Laval fish became juveniles within 60 days after hatching, and they reached $23.54\~30.12$ mm in total length and had fin-rays.
Han, Kyeong Ho;Park, Jun Taek;Lee, Sung Hun;Jin, Dong Soo;Park, Jae Min
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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v.51
no.2
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pp.170-177
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2018
Samples were obtained from broodstork in May, 1998, while naturally fertilized embryos were maintained and the process of skeletal development was observed from larvae and juveniles. Prelarvae immediately after hatching showed an average total length of $5.38{\pm}0.41mm$ (n=10), premaxillary and dentary were ossified, parasphenoid was ossified in the cranium, and centrum and caudal bone did not ossify. Prelarvae showed ossification with maxillary, articular and epihyal and branchiostegal rays of hyoid arch were ossified at 5 days after hatching with an average total length of $6.40{\pm}0.39mm$ (n=10). The vertebrae began to ossify in the direction of the tail, and neural spine began to ossify above the ossified vertebra. Postlarvae showed ossification of lateral ethmoid, parietal, and caudal skeleton in the cranium when the average total length was $7.30{\pm}0.12mm$ (n=10) in 8 days after hatching. At 22 days after hatching, postlarvae ossified maxillary in the cranium, and ossified endopterygoid and ectopterygoid, etc. in the palate, when the average length of $11.1{\pm}1.27mm$ (n=10). At 32 days after hatching, with the average length was $12.8{\pm}1.97mm$ (n=10), caudal skeleton had one additional epural bone ossification, resulting in ossification of a total of 3 epural bone to complete ossification of all spicules.
This study was carried out to investigate the ultrastructural changes of spermatozoa obtained from 20 of 3-year-old male chum salmon(Oncorhynchus keta) collected and analysed in middle October in 1995. The ultrastructural changes of gonad of fingerlings were examined to describe the sex differentiation of this species. The results obtained in this study were as follows : In spermatozoa, the nucleus is dense and homogeneous. Two spheroidal mitochondria(about 350nm long) are situated in parallel between the nucleus and the axoneme. Spermatozoa mitochondria are assembled into an organized sheath surrounding the outer dense fibres and axoneme of the flagellar midpiece. The sheath flagellum is situated beneath the base of the sperm head. The primordial germ cells of 6.8~7.2${\mu}{\textrm}{m}$ in size, which were buried under fibrous mesenchymal tissue between gut duct and notochord of larva with a total length of 2.4cm at 50 days after hatching. In juvenile of 10.5cm in total length at 70 days after hatching, the gonad was occupied by bundles of oogonia. The dense drumstick bodies(large arrows) are observed in the nuclei of the primordial gonad and surrounding tissue cells of fingerling at 70 days after hatching. The oval Barr bodies(asterisk) are observed in the nuclei of the primordial germ cells under the mitosis(2n). Note the large mitochondria, ribosomes and rough endoplasmic reticulum in the cytoplasm. Accordingly, the fingerlings at 70 days after hatching are identified as the female(xx). In result, the gonadal sex differentiation begins from the 70 days after hatching in chum salmon.
This study was carried out to obtain the biological studies on aquaculture fundamental data for the resources annexation of Miichthys miiuy in terms of the characteristics of the spawning and effect of salinity. The adults spawners in 5 years were TL $72.3\sim89.6\;cm$, BW $3,736\sim8,818\;g$ in female (n=39), TL $47.1\sim81.2\;cm$, BW $716.6\sim6,853\;g$ in male (n=24). The adults size which were suitable for a stable egg collection were $97.9\sim110.2\;cm$ in total length, $9,657\sim13,200\;g$ in body weight. Each egg contained $1\sim5$ oil globules. Also, the highest hatching rate was 96.7% at the one having an oil globules. The highest hatching rate was 87.0% at 30.0 ppt. The fastest time required from fertilization to hatching was 17 hours 24 minutes at 28.0 ppt.
In order to improve the cryopreservation by vitrification or slow freezing of nuclear transplant rabbit embryos, the effects of factors affecting embryo cryopreservation such as cryoprotectants, equilibration, cooling rate and post-thaw dilution on post-thaw survial and development were determined using intact embryos of morular stage. And the post-thaw development of nuclear transplanted embryos cryopreserved under the optimal conditions examined was compared between vitrification and slow freezing. The cryoprotectant solution used was ethyleneglycol-ficoll-sucrose (EFS) or ethyleneglycol-poly-vinylpyrrolidone-galactose- I (EPG- I ) for vitrification, and EPG- II for slow freezing. To examine the viability of frozen-thawed embryos, the nuclear transplanted embryos were co-cultured in TCM-199 plus 10% FBS with bovine oviduct epithelial cells(BOEC) for 24 hrs and the intact morulae were co-cultured with BOEC for 5 days and 3 days to hatching blastocyst stage in 39 ˚C 5% $CO_2$ incubator. The results obtained were as follows: Following vitrification with EFS, the post-thaw development of rabbit morulae to hatching blastocyst was significantly(P<0.05) higher in compacted stage(82.4%) than in early morular stage(60.0%). The post-thaw development of compacted morulae to hatching blastocyst was similarly high in vitrification with EFS(82.4%), EPG- I (85.0%) and in slow freezing with EPG- II (83.3%). Following vitrification with EPG- I, the post-thaw development of intact rabbit morulae to hatching blastocyst was similar as 78.0% and 85.0% in 1-step and 2-step post-thaw dilution, respectively. The post-thaw development of nuclear transplanted rabbit embryos of compacted morulae stage to hatching blastocyst was similarly 43.6% and 40.0% in vitrification with EPG- Iand slow freezing with EPG- II, respectively. These results indicated that the rabbit nuclear transplant and intact embryos of morulae stage could be well cryopreserved with either vitrification or slow freezing procedure.
Ji, Hwan-Sung;Lee, Dong Woo;Choi, Jung Hwa;Choi, Kwang Ho
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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v.48
no.3
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pp.362-367
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2015
We followed the development of Pacific herring Clupea pallasii larvae after natural hatching in Korean coastal waters off Dadaepo, where the water temperature was $9^{\circ}C$. Twenty days after hatching, the larvae had (i) reached a total length (TL) of 10.8-12.2 mm, (ii) developed 9-11 dorsal fin rays, and (iii) branched melanophores along the dorsal line of the gut in the anterior half of the body and along the posterior half of the dorsal and ventral line. Thirty days after hatching, the larvae had reached 12.2-13.5 mm TL, and the number of dorsal fin rays had increased to 13-14. Thirty-five days days after hatching, the larvae had reached 14.0-14.7 mm TL, and the posterior ends of their notochords had begun to flex upward. Forty-five days days after hatching, the larvae had (i) reached 15.6-15.9 mm TL, (ii) a complete set of dorsal fin rays (15-16), (iii) 12-13 anal fin rays, and (iv) branched melanophores along the dorsal part of the lateral surfaces of the head behind the caudal terminus. Preflexion, flexion and postflexion stage larvae had TL values of 13.5 mm, 14.0-15.3 mm, and 15.6-15.9 mm, respectively.
Studies were carried out to investigate the overwintering densities of spider mites, hatching rate and time of P. ulmi eggs, and seasonal occurrences of spider mites (P. ulmi and T. urticae) in apple orchards of Kyungpook province from 1987 to 1989. Overwintering density of P. ulmi eggs was higher in Kunwi, Andong, Chilgok but lower in Kyungju. Overovintering densities of T. urticae were high in all the regions. With the hatching time and rate for P. ulmi eggs, the first hatching ate was April 14, and the last was May 3, and the average hatching rate was 89.3%. The density of P. ulmi was high from early May to middle July and T. urticae begin to increase rapidly from middle June and then was continuously high upto fruit harvesting time.
Park, Jong-Young;Oh, Min-Ki;Kim, Chi-Hong;Kang, Eon-Jong;Beon, Mu-Sup
Animal cells and systems
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v.12
no.4
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pp.297-304
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2008
Morphology and distribution of the minute tubercles projected on the skin surface of larvae with its development were observed in the Korean bitterling, Acheilognathus somjinensis. The minute tubercles appeared to be two distinct morphologies, hemispheric or scaly and vestigial structures. Just after hatching, the epidermis of the larvae consists of a thin single cell layer having smaller basophilic flat or round-flattened basal cells. As the larvae grow, the epidermis contains more small flat cells and large epidermal cells which are round and hemispheric, or scaleshaped, called minute tubercles. They are distributed over the anterior part and most part of yolk sac, posterior region of yolk sac and the body region. Vestigial epidermal cells, another minute tubercle, occur only in the caudal fin-fold region, which they are shrunken and flattened, causing the cell boundary to be unclear. They increase in number and height from just to 5 days after hatching, but they become reduced as the larvae develop gradually. The required time for those disappearance was different each by regional body: at day 20 after hatching in the anteriormost part of yolk sac, and day 11 after hatching in the posterior part of yolk sac and the body, and day 21 after hatching in two regions such most part of the yolk sac and the caudal finfold regions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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