Non-small cell lung cancer (NSCLC) is the most common type of lung cancer and the most common cause of lung cancer death. Currently, the epidermal growth factor receptor inhibitor gefitinib is used for its treatment; however, drug resistance is a major obstacle. Expression of Met has been associated with both primary and acquired resistance to gefitinib, but the mechanisms regulating its expression are not fully understood. Recently, miRNAs such as miR-130a have been shown to play a role in gefitinib resistance, but importance in NSCLC and relationships with Met have not been fully explored. Here we show that miR-130a is over-expressed in gefitinibsensitive NSCLC cell lines, but is low in gefitinib-resistant NSCLC cell lines. Moreover, miR-130a expression was negatively correlated with that of Met. Further analysis revealed that over-expression of miR-130a increased cell apoptosis and inhibited proliferation of NSCLC cells treated with gefitinib, whereas lowering the expression of miR-130a decreased cell apoptosis and promoted cell proliferation after treatment with gefitinib in both gefitinib-sensitive and -resistant NSCLC cell lines, suggesting that miR-130a overcomes gefitinib resistance. We also demonstrated that miR-130a binds to the 3'-UTR of Met and significantly suppresses its expression. Finally, our results showed that over-expressing Met could "rescue" the functions of miR-130a regarding cell apoptosis and proliferation after cells are treated with gefitinib. These findings indicate that the miR-130a/Met axis plays an important role in gefitinib resistance in NSCLC. Thus, the miR-130a/Met axis may be an effective therapeutic target in gefitinib-resistant lung cancer patients.
Journal of Physiology & Pathology in Korean Medicine
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v.35
no.4
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pp.117-123
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2021
Gefitinib, a first generation epidermal growth factor receptor tyrosine kinase inhibitor (EGFR TKI), provides obvious clinical benefit in patients with EGFR-mutant non-small cell lung cancer (NSCLC). However, patients ultimately develop gefitinib resistance which mainly caused by EGFR T790M secondary mutation. In the current study, we investigated whether the root extract of Scutellaria baicalensis (SB) overcomes gefitinib resistance. Gefitinib-resistant H1975 human NSCLC cells (EGFR L858R/T790M double mutant) were treated with gefitinib and/or ethanol extract of SB (ESB) to evaluate the effect of ESB on the gefitinib sensitivity. The cell viability was measured by MTT assay and trypan blue exclusion assay. The colony-forming ability was evaluated by anchorage-dependent colony formation assay. Combined treatment with gefitinib and ESB markedly decreased the cell viability and colony formation than single treatment with gefitinib or ESB in H1975 cells. In addition, cells treated with both gefitinib and ESB exhibited a significant increase of sub-G1 DNA content which indicates apoptotic cells compared with those treated with gefitinib or ESB alone. As a molecular mechanism, combined treatment with gefitinib and ESB strongly downregulated the phosphorylation of ERK and JNK than single treatment with gefitinib or ESB. Taken together, our results demonstrate that ESB sensitizes H1975 cells to gefitinib treatment. We cautiously propose that ESB can be used in combination with gefitinib for the advanced NSCLC patients with acquired resistance to EGFR TKIs.
Patients with non-small cell lung cancer (NSCLC) who have activating epidermal growth factor receptor (EGFR) mutations derive clinical benefit from treatment with EGFR-tyrosine kinase inhibitors ((EGFR-TKIs)-namely gefitinib and erlotinib. However, these patients eventually develop resistance to EGFR-TKIs. Despite the fact that this acquired resistance may be the result of a secondary mutation in the EGFR gene, such as T790M or amplification of the MET proto-oncogene, there are other mechanisms which need to be explored. MicroRNAs (miRs) are a class of small non-coding RNAs that play pivotal roles in tumorigenesis, tumor progression and chemo-resistance. In this study, we firstly successfully established a gefitinib resistant cell line-HCC827/GR, by exposing normal HCC827 cells (an NSCLC cell line with a 746E-750A in-frame deletion of EGFR gene) to increasing concentrations of gefitinib. Then, we found that miR-214 was significantly up-regulated in HCC827/GR. We also showed that miR-214 and PTEN were inversely expressed in HCC827/GR. Knockdown of miR-214 altered the expression of PTEN and p-AKT and re-sensitized HCC827/GR to gefitinib. Taken together, miR-214 may regulate the acquired resistance to gefitinib in HCC827 via PTEN/AKT signaling pathway. Suppression of miR-214 may thus reverse the acquired resistance to EGFR-TKIs therapy.
Oral squamous cell carcinoma (OSCC) metastasis is characterized by distant metastasis and local recurrence. Combined chemotherapy with cisplatin and 5-fluorouracil is routinely used to treat patients with OSCC, and the combined use of gefitinib with cytotoxic drugs has been reported to enhance the sensitivity of cancer cells in vitro. However, the development of drug resistance because of prolonged chemotherapy is inevitable, leading to a poor prognosis. Therefore, understanding alterations in signaling pathways and gene expression is crucial for overcoming the development of drug resistance. However, the altered characterization of Ca2+ signaling in drug-resistant OSCC cells remains unclear. In this study, we investigated alterations in intracellular Ca2+ ([Ca2+]i) mobilization upon the development of gefitinib resistance in human tongue squamous carcinoma cell line (HSC)-3 and HSC-4 using ratiometric analysis. This study demonstrated the presence of altered epidermal growth factor- and purinergic agonist-mediated [Ca2+]i mobilization in gefitinib-resistant OSCC cells. Moreover, Ca2+ content in the endoplasmic reticulum, store-operated calcium entry, and lysosomal Ca2+ release through the transient receptor potential mucolipin 1, were confirmed to be significantly reduced upon the development of apoptosis resistance. Consistent with [Ca2+]i mobilization, we identified modified expression levels of Ca2+ signaling-related genes in gefitinib-resistant cells. Taken together, we propose that the regulation of [Ca2+]i mobilization and related gene expression can be a new strategy to overcome drug resistance in patients with cancer.
Although failure of epidermal growth factor receptor tyrosine kinase inhibitors (EGFR TKI) is generally believed to be associated with cross-resistance to other EGFR TKI, the benefit of administering erlotinib as a second EGFR TKI after resistance of gefitinib as the first TKI has been well known. However, good response to gefitinib after an initial response to erlotinib has been rare. We report that a 45-year-old woman (never smoked), with lung adenocarcinoma and EGFR mutation, showed an initial response to erlotinib, and then responded to gefitinib again.
Non-small cell lung cancer (NSCLC) is the most common type of lung cancer and that accounts for 85% of lung cancer patients. Although several EGFR-targeted drugs have been developed in the treatment of NSCLC, the clinical efficacy of EGFR-targeted drugs in NSCLC is limited by the occurrence of drug resistance. In this regard, Hsp90 represents great promise as a therapeutic target of cancer due to its potential to simultaneously disable multiple signaling pathways. In this study, we discovered that a natural product, flavokawain B disrupted Hsp90 chaperoning function and impaired the growth of gefitinib-resistant non-small cell lung cancer (H1975). The result suggested that flavokawain B could serve as a potential lead compound to overcome the drug resistance in cancer chemotherapy.
Patients with non-small-cell lung cancer (NSCLC) with epidermal growth factor receptor (EGFR) amplification or sensitive mutations initially respond to the tyrosine kinase inhibitor gefitinib, however, the treatment becomes less effective over time by resistance mechanism including mesenchymal-epithelial transition (MET) overexpression. A therapeutic strategy targeting MET and EGFR may be a means to overcoming resistance to gefitinib. In the present study, we found that picropodophyllotoxin (PPT), derived from the roots of Podophyllum hexandrum, inhibited both EGFR and MET in NSCLC cells. The antitumor efficacy of PPT in gefitinib-resistant NSCLC cells (HCC827GR), was confirmed by suppression of cell proliferation and anchorage-independent colony growth. In the targeting of EGFR and MET, PPT bound with EGFR and MET, ex vivo, and blocked both kinases activity. The binding sites between PPT and EGFR or MET in the computational docking model were predicted at Gly772/Met769 and Arg1086/Tyr1230 of each ATP-binding pocket, respectively. PPT treatment of HCC827GR cells increased the number of annexin V-positive and subG1 cells. PPT also caused G2/M cell-cycle arrest together with related protein regulation. The inhibition of EGFR and MET by PPT treatment led to decreases in the phosphorylation of the downstream-proteins, AKT and ERK. In addition, PPT induced reactive oxygen species (ROS) production and GRP78, CHOP, DR5, and DR4 expression, mitochondrial dysfunction, and regulated involving signal-proteins. Taken together, PPT alleviated gefitinib-resistant NSCLC cell growth and induced apoptosis by reducing EGFR and MET activity. Therefore, our results suggest that PPT can be a promising therapeutic agent for gefitinib-resistant NSCLC.
Background: Epidermal growth factor receptor (EGFR) tyrosine kinase inhibitors, gefitinib and erlotinib, are effective therapies for non-small cell lung cancer (NSCLC) patients whose tumors harbor somatic mutations in EGFR. The mutations are, however, only found in about 30% of Asian NSCLC patients and all patients ultimately develop resistance to these agents. Ionizing radiation has been shown to induce autophosphorylation of EGFR and activate its downstream signaling pathways. In the present study, we have tested whether the effect of gefitinib treatment can be enhanced after ionizing radiation. Methods: We compared the PC-9 and A549 cell line with its radiation-resistant derivatives after gefitinib treatment with cell proliferation and apoptosis assay. We also analyzed the effect of gefitinib after ionizing radiation in PC-9, A549, and NCI-H460 cells. Cell proliferation was determined by MTT assay and induction of apoptosis was evaluated by flow cytometry. Caspase 3 activation and PARP cleavage were evaluated by western blot analysis. Results: PC-9 cells having mutated EGFR and their radiation-resistant cells showed no significant difference in cell viability. However, radiation-resistant A549 cells were more sensitive to gefitinib than were their parental cells. This was attributable to an increased induction of apoptosis. Gefitinib-induced apoptosis increased significantly after radiation in cells with wild type EGFR including A549 and NCI-H460, but not in PC-9 cells with mutated EGFR. Caspase 3 activation and PARP cleavage accompanied these findings. Conclusion: The data suggest that gefitinib-induced apoptosis could increase after radiation in cells with wild type EGFR, but not in cells with mutated EGFR.
Background: TRAIL is a cytokine that selectively induces apoptosis in various cancer cell lines. Gefitinib is new targeted drug applied in lung cancer that selectively inhibits EGFR tyrosine kinase. However, lung cancers have shown an initial or acquired resistance to these drugs. This study examined the effect of IGF-1R and its blockade on enhancing the sensitivity of lung cancer cell lines to TRAIL and gefitinib. Methods: Two lung cancer cell lines were used in this study. NCI H460 is very sensitive to TRAIL and gefitinib. On the other hand, A549 shows moderate resistance to TRAIL and gefitinib. The IGF-1R blockade was performed using adenoviruses expressing the dominant negative IGF-1R and shRNA to IGF-1R and AG1024 (IGF-1R tyrosine kinase inhibitor). Results: The adenovirus expressing dominant negative IGF-1R(950st) induced the increased expression of defective IGF-1R on the lung cancer cell surface, and the adenovirus-shIGF-1R effectively decreased the level of IGF-1R expression on cell surface. The genetic blockade of IGF-1R by the adenovirus-dnIGF-1R and AG1024 increased the sensitivity of A549 cells to TRAIL. The reduction of IGF-1R by transduction with ad-shIGF-1R also increased the sensitivity of the A549 cells to gefitinib. Conclusion: The blockade of IGF-1R through various mechanisms increased the sensitivity of the lung cancer cell line that was resistant to TRAIL and gefitinib. However, further studies using other cell lines showing acquired resistance as well as in vivo animal experiments will be needed.
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