The iLOV protein belongs to a family of blue-light photoreceptor proteins containing a light-oxygen-voltage sensing domain with a noncovalently bound flavin mononucleotide (FMN) as its chromophore. Owing to advantages such as its small size, oxygen-independent nature, and pH stability, iLOV is an ideal candidate over other reporter fluorescent proteins such as GFP and DsRed. Here, for the first time, we describe the feasibility of applying LOV domain-based fluorescent iLOV as a metal sensor by measuring the fluorescence quenching of a protein with respect to the concentration of metal ions. In the present study, we demonstrated the inherent copper sensing property of the iLOV protein and identified the possible amino acids responsible for metal binding. The fluorescence quenching upon exposure to Cu2+ was highly sensitive and exhibited reversibility upon the addition of the metal chelator EDTA. The copper binding constant was found to be 4.72 ± 0.84 µM. In addition, Cu2+-bound iLOV showed high fluorescence quenching at near physiological pH. Further computational analysis yielded a better insight into understanding the possible amino acids responsible for Cu2+ binding with the iLOV protein.
루마진 단백질은 발광 세균인 Photobacterium 종에서 추출된 형광성 단백질이다. 형광성을 지닌 최소 크기의 Photobacterium leiognathi 야생형 아미노-말단 도메인 루마진 단백질(N-terminal domain of lumazine protein 118 wt)과 여러 영역에 tryptophan을 생성시킨 돌연변이 단백질들(N-LumP 118 V41W, S48W, T50W, D64W, A66W)을 코드하는 유전자들을 위치 지정 돌연변이(Site Directed Mutagenesis)와 중합효소 연쇄 반응(Polymerase Chain Reaction)을 통해 제조하였다. 위의 유전자들이 포함된 재조합 플라스미드를 대장균에 형질 전환시켜 과발현시키는 최적의 조건을 찾았으며, 발현된 야생형 및 돌연변이 아미노-말단 영역 루마진 단백질을 6X-His tag system을 이용하여 정제 하였다. 흡광 및 형광 분광광도계를 이용한 실험 결과 이들 단백질들은 리간드인 6,7-dimethyl-8-ribityllumazine과 결합하여 형광성을 보유함을 보였다. 따라서 이들은 형광성을 지니게 되는 최소 크기의 루마진 단백질일 뿐만 아니라 형광성을 지닌 아미노산인 tryptophan이 여러 위치에 유일하게 존재함으로써 배향성 및 거리 등의 단백질의 구조 및 결합에 관한 심도 있는 연구에 탐침자로써 유용하게 활용 될 수 있을 것이다.
The target of rapamycin (TOR) signaling pathway conserved from yeast to human plays critical roles in regulation of eukaryotic cell growth. It has been shown that TOR pathway is involved in several cellular processes, including ribosome biogenesis, nutrient response, autophagy and aging. However, due to the functional diversity of TOR pathway, we do not know yet some key effectors of the pathway. To find unknown effectors of TOR signaling pathway, we took advantage of a green fluorescent protein (GFP)-tagged collection of budding yeast Saccharomyces cerevisiae. We analyzed protein abundance changes by measuring the GFP fluorescence intensity of 4156 GFP-tagged yeast strains under inhibition of TOR pathway. Our proteomic analysis argues that 83 proteins are decreased whereas 32 proteins are increased by treatment of rapamycin, a specific inhibitor of TOR complex 1 (TORC1). We found that, among the 115 proteins that show significant changes in protein abundance under rapamycin treatment, 37 proteins also show expression changes in the mRNA levels by more than 2-fold under the same condition. We suggest that the 115 proteins indentified in this study may be directly or indirectly involved in TOR signaling and can serve as candidates for further investigation of the effectors of TOR pathway.
Five fusion proteins between Z domains derived from Staphylococcal Protein A and Green Fluorescent Protein or Human Proinsulin were produced on the periplasm of Escherichia coli. The effects of the molecular weight and amino acid composition of the translocated peptide, culture medium composition, and growth phase of the bacterial culture were analyzed regarding the expression and periplasmic secretion of the recombinant proteins. It was found that secretion was not affected by the size of the translocated peptide (17-42 kDa) and that the highest periplasmic production values were obtained on the exponential phase of growth. Moreover, the highest periplasmic values were obtained in minimal medium, showing the relevance of the culture medium composition on secretion. In silico prediction analysis suggested that with respect to the five proteins used in this study, those that are prone to form ${\alpha}$-helix structures are more translocated to the periplasm.
Kim, Sung-Kyu;Kim, Byung-Gee;Lee, Ji-Hye;Lee, Chang-Soo
Macromolecular Research
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제17권4호
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pp.232-239
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2009
This paper describes the simple nanopatterning of proteins on polyelectrolyte surfaces using microcontact printing with a nanopatternable, hydrophilic composite nanomold. The composite nanomold was easily fabricated by blending two UV-curable materials composed of Norland Optical Adhesives(NOA) 63 and poly(ethylene glycol) dimethacrylate(PEG-DMA). NOA 63 provided stable nanostructure formation and PEG-DMA induced high wettability of proteins in the nanomold. Using the composite mold and functionalized surface with polyelectrolytes, the fluorescent, isothiocyanate-tagged, bovine serum albumin(FITC-BSA) was successfully patterned with 8 nm height and 500 nm width. To confirm the feasibility of the protein assay on a nanoscale, a glycoprotein-lectin assay was successfully demonstrated as a model system. As expected, the lectins correctly recognized the nano-patterned glycoproteins such as chicken ovalbumin. The simple preparation of composite nanomold and functionalized surface with a universal platform can be applied to various biomolecules such as DNA, proteins, carbohydrates, and other biomolecules on a nanoscale.
The impact of overproduction of a heterologous protein on the metabolic system of host Lactococcus lactis was investigated. The protein expression profiles of L. lactis IL1403 containing two near-identical plasmids that expressed high- and low-level of the green fluorescent protein (GFP) were examined via shotgun proteomics. Analysis of the two strains via high-throughput LC-MS/MS proteomics identified the expression of 294 proteins. The relative amount of each protein in the proteome of both strains was determined by label-free quantification using the spectral counting method. Although expression level of most proteins were similar, several significant alterations in metabolic network were identified in the high GFP-producing strain. These changes include alterations in the pyruvate fermentation pathway, oxidative pentose phosphate pathway, and de novo synthesis pathway for pyrimidine RNA. Expression of enzymes for the synthesis of dTDP-rhamnose and N-acetylglucosamine from glucose was suppressed in the high GFP strain. In addition, enzymes involved in the amino acid synthesis or interconversion pathway were downregulated. The most noticeable changes in the high GFP-producing strain were a 3.4-fold increase in the expression of stress response and chaperone proteins and increase of caseinolytic peptidase family proteins. Characterization of these host expression changes witnessed during overexpression of GFP was might suggested the metabolic requirements and networks that may limit protein expression, and will aid in the future development of lactococcal hosts to produce more heterologous protein.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제34권1호
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pp.11-15
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2017
We constructed the fibroin H-chain expression system to produce enhanced cyan fluorescent proteins (ECFP) in transgenic silkworm cocoon. Fluorescent cocoon could be made by fusing ECFP cDNA to the heavy chain gene and injecting it into a silkworm. The ECFP fusion protein, each with N- and C-terminal sequences of the fibroin H-chain, was designed to be secreted into the lumen of the posterior silk glands. The expression of the ECFP/H-chain fusion gene was regulated by the fibroin H-chain promoter. The use of the 3xP3-driven EGFP cDNA as a marker allowed us to rapidly distinguish transgenic silkworms. The EGFP fluorescence became visible in the ocelli and in the central and peripheral nervous system on the seventh day of embryonic development. A mixture of the donor and helper vector was micro-injected into 1,020 Kumokjam, bivoltin silkworm eggs. We obtained 6 broods. The cocoon was displayed strong blue fluorescence, proving that the fusion protein was present in the cocoon. Accordingly, we suggest that the ECFP fluorescence silk will enable the production of novel biomaterial based on the transgenic silk.
Ochoa, Juan C.;Herrera, Mariana;Navia, Monica;Romero, Hernan Mauricio
The Plant Pathology Journal
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제35권1호
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pp.19-31
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2019
Bud rot (BR) is the most devastating disease affecting oil palm (Elaeis guineensis) crops in Colombia. Its causal agent, Phytophthora palmivora, initiates the infection in immature oil palm leaflets producing necrotic lesions, followed by colonization of opportunistic necrotrophs, which increases disease damage. To improve the characterization of the disease, we transformed P. palmivora using Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation (ATMT) to include the fluorescent proteins CFP-SKL (peroxisomal localization), eGFP and mRFP1 (cytoplasmic localization). The stability of some transformants was confirmed by Southern blot analysis and single zoospore cultures; additionally, virulence and in vitro growth were compared to the wild-type isolate to select transformants with the greatest resemblance to the WT isolate. GFP-tagged P. palmivora was useful to identify all of the infective structures that are commonly formed by hemibiotrophic oomycetes, including apoplastic colonization and haustorium formation. Finally, we detected cell death responses associated with immature oil palm tissues that showed reduced susceptibility to P. palmivora infection, indicating that these tissues could exhibit age-related resistance. The aim of this research is to improve the characterization of the initial disease stages and generate cell biology tools that may be useful for developing methodologies for early identification of oil palm materials resistant or susceptible to BR.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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