Fesahat, Farzaneh;Firouzabadi, Razieh Dehghani;Faramarzi, Azita;Khalili, Mohammad Ali
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제44권2호
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pp.79-84
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2017
Objective: Optimizing in vitro maturation (IVM) media to achieve better outcomes has been a matter of interest in recent years. The aim of this prospective clinical trial was to investigate the effects of different media on the IVM outcomes of immature oocytes at the germinal vesicle (GV) stage. Methods: A total of 400 immature oocytes at the GV stage with normal morphology were retrieved from 320 infertile women aged $31{\pm}4.63years$ during stimulated intracytoplasmic sperm injection (ICSI) cycles. They were divided into groups of homemade IVM medium (I, n = 100), cleavage medium (II, n = 100), blastocyst medium (III, n = 100), and Sage IVM medium (IV, n = 100) and cultured for 24 to 48 hours at $37^{\circ}C$. ICSI was performed, and the rates of fertilization and embryo formation were compared across the four groups. Results: In the 400 retrieved GV oocytes, the total maturation rates showed significant differences in groups I to IV (55%, 53%, 78%, and 68%, respectively, p<0.001). However, there were no significant differences in the fertilization, embryo formation, or arrest rates of metaphase II oocytes across these groups. In all groups, GV maturation was mostly completed after 24 hours, with fewer oocytes requiring 48 hours to mature (p<0.01). Moreover, the rate of high-quality embryos was higher in group IV than in the other groups (p=0.01). Conclusion: The quality of the IVM medium was found to affect clinical IVM outcomes. Additionally, blastocyst medium may be a good choice in IVM/ICSI cycles as an alternative IVM medium.
This study was carried out to investigate On in vitro fertilization, survival rate and developmental rate of rapidly frozen bovine immature oocytes. Immature oocytes cultured for 1, 12, 24, 48 hours in 20% FCS + TCM-199 medium and thereafter rapidly freezing-thawed oocytes inseminated with capacitated sperm. The immature oocytes following dehydration by 1.5M DMSO + 2.0M glycerol + 0.25M sucrose + TCM 199 media + 20% FGS were directly plunged into liquid nitrogen and thawes in 3$0^{\circ}C$ water. Rapid freezing embryos co-cultured in 20% FCS + TCM-199 media containing hormones(21U/mL PMSG, 21U /mL hGG and 1 $\mu$g /mL 17$\beta$-estradiol) and cumulus cells(1 x 105-6 cells). Survival rate was defined as development rate on in vitro culture or FDA-test. The results are summarized as follows ; 1. The in vitro maturation and fertilization rate of immature bovine oocytes on in vitro maturation period(1, 12, 24, 48 hrs) before rapid freezing4hawed were 57.1%, 45.7%, 37.1%, 25.7% and 40.0%, 31.4%, 20.0%, 11.4%, respectively. 2. The survival rate of immature bovine oocytes on in vitro maturation period(1, 12, 24, 48 hrs) before rapid freezing-thawed were 33.3%, 26.7%, 20.0%, and 10.0%, respectively. The survival rate of rapid freezing4hawed immature oocytes was significantly lower than that of non-freezing oocytes. 3. The survival rate of rapid freezing4hawed excellent and good bovine embryos co-cultured in 20% FCS + TCM-199 media containing hormones(PMSG, hCG, 17$\beta$-estradiol) and cumulus cells 4 to 5 hrs and 20 to 24 hrs were 35.0%, 15.0% and 25.0%, 15.0% and 40.0%, 20.0% and 30.0%, 15.0%, respectively. The survival rate of embryos co-cultured in TCM-199 media containing hormones and cumulus cells was significantly higher than that of non co-culture.
This study was undertaken to access the effects of collection method, room temperature at oocyte recovery and culture media on the oocyte quality, fertilization and cleavage rates of in vitro matured and fertilized oocytes of Korean native goats. Ovaries obtained from a slaughterhouse were transported to the laboratory and were divided into 2 groups. One group of ovaries was maintained at 30 to 35$^{\circ}C$ of the room temperature and another group was remained at 20 to $25^{\circ}C$ during oocyte recovery. The oocytes were recovered by follicle aspiration, slicing and aspiration+slicing methods from 3 groups of follicles according to size; <2 mm, 2 to 6 mm and >6 mm. The matured oocytes were inseminated with buck epididymal spermatozoa at a concentration of 3~3.5$\times$10$^{6}$ m1 and fertilization was identified when 2 pronuclei were present in the cytoplasm. Although the recovery rate per ovary obtained by the combination of follicle aspiration + slicing(19.6$\pm$2.2) method was higher than aspiration(11.7$\pm$1.1) and slicing(14.8$\pm$1.8) collection, optimal recovery according to oocyte grades resulted form ovarian slicing compared to aspiration or combined methods(P<0.05). However, no significant differences were found in the mean number(2.5$\pm$1.8; 3.3$\pm$3.3; 2.9$\pm$2.4) and the proportion of favorable oocytes(Grades I, II and III) recovered(31.6%, 36.0%, 36.4%,) according to follicle size(<2 mm; 2 to 6 mm; >6 mm). Fertilization rate was 60.0%, 67.7%, 70.6% and 56.4% and the proportion of embryos/zygotes was 11.1%, 7.1%, 5.0% and 2.8% in 20~$25^{\circ}C$/BO, 30~35$^{\circ}C$/BO, 20~$25^{\circ}C$/TALP and 30~35$^{\circ}C$ /groups, respectively.
As a part of in vitro fertilization(IVF) for farm animals, IVF experiment was conducted using New Zealand white rabbits with their sperm capacitated in vivo. The effect of uterine conditions on sperm capacitation and effect of sperm concentration and fertilization media on IVF rate and implantation of in vitro fertilized ova were studied. The results obtained are summarized as follows; 1. Acrosomal reaction, noted after staining, of sperm recovered from ligated and intact uterus of capacitators was 83.0% and 65.7%, respectively. 2. IVF rate of ova inseminated with sperm from ligated uterus tended to be higher in DM or with higher concentration of sperm than in the modified F12 medium or with lower sperm concentration. Cleavage rate of fertilized ova for 48hr in DM was 31.5% for 106/ml and 30.0% for 104/ml of sperm and that in modified F12 medium was 26.0% for 106/ml and 22.3% for 104/ml of sperm. 3. Using the sperm from intact uterus, cleavage rate of fertilized ova showed same tendency as those shown with ligated uterus. The rate was 82.0% for 106/ml and 66.5% for 104/ml of sperm in DM and was 69.0% for 106/ml and 56.5% for 104/ml of sperm in the medium. 4. When normal ova up to 48hr after IVF were cultured for 4 days in either DM or modified F12 medium, ova developed to blastocyst stage showed higher rate in the groups of higher sperm concentration in the both media. The rate was 80.9% and 60.0% for 106/ml and 104/ml of sperm in DM and 91.7% and 71.4% for 106/ml and 104/ml of sperm in the modified F12 medium, respectively. 5. Rate of implantation after transfer of 4- or 8-cell embryos was 36.8%.
Park, C. S.;Y. J. Yi;Kim, M. Y.;Y. J. Chang;Lee, S. H.;D. I. Jin
한국가축번식학회지
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제27권3호
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pp.215-223
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2003
본 연구는 체외성숙된 돼지난포란을 액상정액으로 수정시 수정시간과 배양배지가 난포란의 발달에 미치는 영향을 조사하기 위하여 실시하였다. 정자농후정액 (30∼60 ml)을 채취하여 실온에서 2시간 정도 서서히 냉각시킨 후, 정액을 15 ml 튜브에 담아 800${\times}$g로 10분간 원심분리하였다. 상층액은 버리고 하부의 정자는 5 ml LEN 희석액으로 1${\times}$$10^{9}$ 전자/ml가 되도록 재희석하였다. 희석된 정액은 4$^{\circ}C$ 냉장고에 보존하였다. 미성숙 난모세포의 성숙에 사용된 배지는 26.19 mM sodium bicarbonate, 0.9 mM sodium pyruvate, 10 $\mu\textrm{g}$/ml insulin, 2 $\mu\textrm{g}$/ml vitamin B$_{12}$ , 25 mM HEPES, 10 $\mu\textrm{g}$/ml bovine apotransferrin, 150 $\mu$M cysteamine, 10 IU/ml PMSG, 10 IU/ml PMSG, 10 IU/ml EGF, 0.4% BSA, 75 $\mu\textrm{g}$/ml sodium penicillin G, 50 $\mu\textrm{g}$/ml streptomycin sulfate그리고 10% pFF를 첨가한 TCM-199 배지였다. 22시간 성숙 배양한 후 난모세포는 cysteamine과 hormone들을 배제한 후 38.5$^{\circ}C$, 5% $CO_2$ incubator에서 22시간 더 성숙시켰다. 성숙된 난모세포는 채취 후 2일간 4$^{\circ}C$에 보존된 액상정액으로 수정되었다. 난모세포는 500 $\mu$l mTBM 수정 배지에서 1${\times}$$10^{6}$ 정자/ml의 농도로 1, 3, 6 그리고 9시간 동안 수정시켰다. 그 후 난모세포는 500 $\mu$l NCSU-23, Hopes buffered NCSU-23, PZM-3 그리고 PZM-4 배양배지에 옮겨서 6, 48 그리고 144시간을 더 배양하였다. 정자침투율, 웅성전핵형성율 그리고 난모세포의 난할율은 6 및 9시간 수정시간에서 1 및 3시간 수정시간 보다 높았다. 6시간 수정시 배반포형성율 (33.6%)은 1, 3 그리고 9시간 수정시 배반포형성율 (11.4, 23.0 그리고 29.6%) 보다 높았다. 배반포의 평균세포수는 6, 9, 3 그리고 1시간 수정시 각각 32.9, 27.6, 26.3 그리고 24.4개 였다. 분할된 난모세포의 배반포형성율 그리고 배반포의 평균세포수는 NCSU-23, PZM-3 그리고 PZM-4 배양배지보다 HEPES buffered NCSU-23 배양배지가 우수하였다. 결론적으로 4$^{\circ}C$ 보존 돼지액상정액은 체외성숙된 돼지 난모세포의 체외수정에 사용될 수 있음이 입증되었다. 또한 체외성숙된 돼지 난모세포는 500 $\mu$l mTBM 수정배지에서 1${\times}$$10^{6}$ 정자/ml로 6시간 공배양시키는 것이 바람직하며, HEPES buffered NCSU-23 배양배지에서 배양하는 것이 좋다는 결과를 얻었다.
능유바위솔을 분화로 재배하고자 할 때, 적정 광도 와 내음성정도, 적정 분용토, 그리고 적정 시비조건을 알아보기 위해 실험을 수행하였다. 그 결과 능유바위솔은 52% 차광에서 생육이 가장 양호하였으며, 82% 차광까지는 생육이 감소하기는 하지만 상품성은 유지되어 내음성이 뛰어난 것으로 판단되었다. 90% 이상의 차광에서는 고사주가 발생하였으며, 엽색도 탈색되고 잎이 위로 서는 등 관상가치가 크게 저하되었다. 분용토로는 마사토 : 유비상토 : 강모래(6 : 2 : 2, v/v/v) 에서 생육이 가장 좋았다. 특히 지상부 생체중의 경우 다른 용토에서는 약 4~8g 범위였으나, 마사토 : 유비상토 :강모래(6 : 2 : 2, v/v/v)에서는 16g으로 2배 이상의 생육량을 보였다. 시비조건은 Hyponex 액비를 1,000~2,000배액으로 1회/주 처리했을 때, 생체중 및 초폭, 분지수 등에서 가장 좋게 나타났다. 특히 생체중의 경우 대조구(무처리)가 16g인데 비해 1,000배액 1회/주와 2,000배액 1회/주 처리에서 약 29g으로 80% 정도 생장량이 증가하였다. 엽색에서는 액비의 농도가 높을 수록 엽색이 짙어지는 경향이 보였다.
In vitro culture of murine embryos is an important step for in vitro production systems including in vitro fertilization and generations of genetically engineered mice. M16 is widely used commercialized culture media for the murine embryos. Compared to other media such as potassium simplex optimization medium, commercial M16 (Sigma) media lacks of amino acid, glutamine and antibiotics. In the present study, we optimized M16 based embryo culture system using commercialized antibiotics-glutamine or amino acids supplements. In vivo derived murine zygote were M16 media were supplemented with commercial Penicillin-Streptomycin-Glutamine solution (PSG; Gibco) or MEM Non-Essential Amino Acids solution (NEAA; Gibco) as experimental design. Addition of PSG did not improved cleavage and blastocyst rates. On the other hand, cleavage rate is not different between control and NEAA treated group, however, blastocyst formation is significantly (P<0.05) improved in NEAA treated group. Developmental competence between PSG and NEAA treated groups were also compared. Between two groups, cleavage rate was similar. However, blastocyst formation rate is significantly improved in NEAA treated group. Taken together, beneficial effect of NEAA on murine embryos development was confirmed. Effect of antibiotics and glutamine addition to M16 media is still not clear in the study.
This study was carried out to determine the effect of bovine follicular fluid(bFF), hormones, and fetal bovine serum(FBS) supplemented in the medium on the in vitro fertilization and development of bovine embryos. The ovaries were obtained from a local abattoir and placed in physiological saline kept at 30~32˚C and brought to the laboratory within 3~4 hours. The oocytes and follicular fluid were collected by aspiration from visible follicles, and the oocytes of grades I on the basis of the morphology of cumulus cells attached and the homogeneity of cytoplasmic granules were selected and used for maturation. The basal media used for oocyte maturation, fertilization and embryo development in vitro were Ham' F-10, TALP and TCM-199, respectively. The hormones supplemented in maturation medium were consisted of 35 pg /ml FSH, 10 pg /ml LH and 1 pg/mi estradiol-l7$\beta$. The bFF collected from 5~9 mm follicles was centrifuged, filtered and inactivated by heat-treatment at 56˚C for 30 min. FBS also was inactivated with the same method and kept at -20˚C until use. The embryos were co-cultured with the monolayer of bovine oviductal epithelial cells at 39˚C under 5% $CO_2$ in air for 9 days. The results obtained were summarized as follows: The fertilization rate of oocytes was found 87.4% from 10% FBS and hormones treatment for IVM, and 37.1% of these TVF embryos were developed to blastocyst stage in 10% FBS groups. Compared with this control system, the fertilization rate was decreased significantly(P<0.05) in the maturation without either FBS or hormones. These IVF embryos were developed to morula stage at the similar rate, but to blastocyst at significantly(P<0.05) lower rate in the embryo culture with or without FBS supplementation. The fertilization rate(82.9%) in hormones and 10% inactivated bFF was similar with 10% FBS and hormone groups(87.4%), but decreased significantly(P<0.05) in 20 or 30% bFF (61.0 or 66.0%), respectively. In vitro developmental competence to blastocyst stage in 10% FBS and 20% inactivated bFF(37.1% and 31.4%) was higher than in 10 or 30% inactivated bFF(20.0 or 19.2%) or 10, 20 and 30% fresh bFF(19.1, 21.0 and 17.5%) The results indicated that the in vitro fertillzation and development rate of the embryos should be improved in 10% FBS or 20% inactivated culture system and 20% inactivated bFF might be available economically for bovine oocyte maturation and embryo culture instead of fetal bovine serum.
The effects of amino acids and dipeptides on in vitro production of porcine embryos and accumulation of ammonia in culture medium during developmental stages were examined in this study. The maturation, fertilization and development of embryonic cultures were performed in modified Tissue culture medium (mTCM)-199 supplemented with 10% (v/v) porcine follicular fluid, modified Tyrode's albumin lactate pyruvate (mTALP) medium, and modified North Carolina State University (mNCSU)-23 medium, respectively. In addition, amino acids and dipeptides of different concentrations and combinations were used to treat the embryos. The addition of L-alanyl-L-glutamine (AlnGln)+L-glycyl-L-glutamine (GlyGln) significantly (p<0.05) improved oocyte maturation, fertilization and the incorporation and oxidation of 14C(U)-glucose when compared to the control group and other treatment groups. Additionally, 2-4 cell, 8-16 cell, morula and blastocyst development increased significantly (p<0.05) following treatment with AlnGln+GlyGln when compared to the control group and other treatment groups, while this treatment reduced the accumulation of ammonia. Taken together, these findings suggest that treatment with AlnGln+GlyGln may play an important role in increasing the rate of porcine oocyte maturation, fertilization and embryonic development by reducing the level of accumulated ammonia measured in the culture media.
본 연구는 지금까지 제시된 여러 가지 간이 식물영양 진단 방법들 중 test strip과 chlorophyll meter의 이용가능성을 검토하고 실제 이용 방안을 모색하고자 수행되었다. 본 실험에서는 양액의 N, P, K수준을 달리하여 토마토를 재배하면서 생육시기별로 specific color difference sensor value (SCDSV), 엽병 즙액 중 $NO_3,\;PO_4,\;K$의 함량을 측정하였다. 실험 결과 양액중 N, P, K의 농도 변화에 따른 엽병 즙액 중 $NO_3,\;PO_4,\;K$ 함량 변화가 엽 중 total-N, E, K함량의 변화보다 더 민감하였다. Test strip을 이용하여 측정한 토마토 엽병 즙액 중 $NO_3,\;PO_4,\;K$ 함량은 엽 내 total-N, E, K의 농도와 고도의 일차상관관계를 나타내었다. 지금까지 여러 연구를 통해 확립된 토마토의 엽 중 total-N, E, K의 적정 함량을 희귀식에 대입하여 구한 즙액의 적정 $NO_3,\;PO_4,\;K$의 함량은 각각 3.4-5.9, 0.3-0.5, 3.6-6.5 g/l였다.. Chlorophyll meter를 이용하여 측정한 SCDSV는 엽 중 total-N와 높은 상관관계를 나타내었으며 기존에 연구된 토마토의 엽 중 total-N 함량을 희귀식에 대입하여 계산한 결과 적정 SCDSV는 36.0-40.0이었다. 본 연구 결과 test strip과 chlorophyll meter는 토마토의 신속한 영양 진단에 이용할 수 있을 것으로 판단된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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