Xu, Xiaoli;Feng, Lei;Han, Zhenya;Luo, Sishi;Wu, Ai'min;Xie, Jun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제26권9호
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pp.1570-1578
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2016
Commercial application of laccase is often hampered by insufficient enzyme stocks, with very low yields obtained from natural sources. This study aimed to improve laccase production by mutation of a Coriolopsis gallica strain and to determine the biological properties of the mutant. The high-yield laccase strain C. gallica TCK was treated with N-methyl-N-nitro-N-nitrosoguanidine and ultraviolet light. Among the mutants isolated, T906 was found to be a high-production strain of laccases. The mutant strain T906 was stabilized via dozens of passages, and the selected ones were further processed for optimization of metallic ion, inducers, and nutritional requirements, which resulted in the optimized liquid fermentation medium MF9. The incubation temperature and pH were optimized to be 30℃ and 4.5, respectively. The mutant strain T906 showed 3-times higher laccase activity than the original strain TCK under optimized conditions, and the maximum laccase production (303 U/ml) was accomplished after 13 days. The extracellular laccase isoenzyme 1 was purified and characterized from the two strains, respectively, and their cDNA sequence was determined. Of note, the laccase isoenzyme 1 transcription levels were overtly increased in T906 mycelia compared with values obtained for strain TCK. These findings provide a basis for C. gallica modification for the production of high laccase amounts.
Lipases are industrially useful versatile enzymes that catalyze numerous different reactions including hydrolysis of triglycerides, transesterification, and chiral synthesis of esters under natural conditions. Although lipases from various sources have been widely used in industrial applications, such as in food, chemical, pharmaceutical, and detergent industries, there are still substantial current interests in developing new microbial lipases, specifically those functioning in abnormal conditions. We screened 17 lipase-producing yeast strains, which were prescreened for substrate specificity of lipase from more than 500 yeast strains from the Agricultural Research Service Culture Collection (Peoria, IL, U.S.A.), and selected Yarrowia lipolytica NRRL Y-2178 as a best lipase producer. This report presents new finding and optimal production of a novel extracellular alkaline lipase from Y. lipolytica NRRL Y-2178. Optimal culture conditions for lipase production by Y. lipolytica NRRL Y-2178 were 72 h incubation time, $27.5^{\circ}C$, pH 9.0. Glycerol and glucose were efficiently used as the most efficient carbon sources, and a combination of yeast extract and peptone was a good nitrogen source for lipase production by Y. lipolytica NRRL Y-2178. These results suggested that Y. lipolytica NRRL Y-2178 shows good industrial potential as a new alkaline lipase producer.
Lactobacillus pentosus K1-23 was selected from among 25 lactic acid bacterial strains owing to its high inhibitory activity against several pathogenic bacteria, including Escherichia coli, Salmonella typhimurium, S. gallinarum, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, Clostridium perfringens, and Listeria monocytogenes. Additionally, among 13 strains of Aureobasidium spp., A. pullulans NRRL 58012 was shown to produce the highest amount of ${\beta}$-glucan ($15.45{\pm}0.07%$) and was selected. Next, the optimal conditions for a solid-phase mixed culture with these two different microorganisms (one bacterium and one yeast) were determined. The optimal inoculum sizes for L. pentosus and A. pullulans were 1% and 5%, respectively. The appropriate inoculation time for L. pentosus K1-23 was 3 days after the inoculation of A. pullulans to initiate fermentation. The addition of 0.5% corn steep powder and 0.1% $FeSO_4$ to the basal medium resulted in the increased production of lactic acid bacterial cells and ${\beta}$-glucan. The following optimal conditions for solid-phase mixed culture were also statistically determined by using the response surface method: $37.84^{\circ}C$, pH 5.25, moisture content of 60.82%, and culture time of 6.08 days for L. pentosus; and $24.11^{\circ}C$, pH 5.65, moisture content of 60.08%, and culture time of 5.71 days for A. pullulans. Using the predicted optimal conditions, the experimental production values of L. pentosus cells and ${\beta}$-glucan were $3.15{\pm}0.10{\times}10^8CFU/g$ and $13.41{\pm}0.04%$, respectively. This mixed culture may function as a highly efficient antibiotic substitute based on the combined action of its anti-pathogenic bacterial and immune-enhancing activities.
Cadaverine (1,5-diaminopentane) is an important industrial chemical with a wide range of applications. Although there have been many efforts to produce cadaverine through fermentation, there are not many reports of the direct cadaverine production from lysine using biotransformation. Whole-cell reactions were examined using a recombinant Escherichia coli strain overexpressing the E. coli MG1655 cadA gene, and various parameters were investigated for the whole-cell bioconversion of lysine to cadaverine. A high concentration of lysine resulted in the synthesis of pyridoxal-5'-phosphate (PLP) and it was found to be a critical control factor for the biotransformation of lysine to cadaverine. When 0.025 mM PLP and 1.75 M lysine in 500 mM sodium acetate buffer (pH6) were used, consumption of 91% lysine and conversion of about 80% lysine to cadaverine were successfully achieved.
Fluorescence in-situ hybridization (FISH) is a common and popular method used to investigate microbial communities in natural and engineered environments. In this study, two specific 16S rRNA-targeted oligonucleotide probes, CLZ and KCLZ, were designed and verified to quantify the genus Clostridium and the species Clostridium kluyveri. The optimal concentration of hybridization buffer solution for both probes was 30% (w/v). The specificity of the designed probes was high due to the use of pellets from pure reference strains. Feasibility was tested using samples of Chinese liquor from the famed Luzhou manufacturing cellar. The effectiveness of detecting target cells appears to vary widely in different environments. In pit mud, the detection effectiveness of the target cell by probes CLZ and KCLZ was 49.11% and 32.14%, respectively. Quantitative analysis by FISH technique of microbes in pit mud and fermented grains showed consistency with the results detected by qPCR and PCR-DGGE techniques, which showed that the probes CLZ and KCLZ were suitable to analyze the biomass of Clostridium spp. and C. kluyveri during liquor fermentation. Therefore, this study provides a method for quantitative analysis of Clostridium spp. and C. kluyveri and monitoring their community dynamics in microecosystems.
Li, Dan;Fu, Dongwei;Zhang, Yue;Ma, Xueling;Gao, Liguo;Wang, Xiaohua;Zhou, Dongpo;Zhao, Kai
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제27권8호
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pp.1379-1385
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2017
The content of taxol in the bark of yews is very low, and this is not affordable from the environmental point of view. Thus, it is a necessity to look for alternative sources of taxol production to solve its supply. Currently, a large portion of the taxol in the market comes from chemical semi-synthesis, but the semi-synthetic precursors such as baccatin III and 10-deacetyl-baccatin III are extracted from needles and twigs of yew trees. Taxol-producing fungi as a renewable resource is a very promising way to increase the scale of taxol production. Our group has obtained a taxol-producing endophytic fungus, Aspergillus niger subsp. taxi HD86-9, to examine if A. niger can produce the taxanes. Six compounds from the fermentation broth of strain HD86-9 were isolated and identified by $^1H$ NMR, $^{13}C$ NMR, and ESI-MS. The results showed that the six compounds included four taxane diterpenoids (taxol, cephalomannine, baccatin III, and 10-deacetyl-baccatin III) and two non-taxane compounds (${\beta}-sitosterol$ and flavonoid isovitexin). The study verified that the taxanes can be produced by the A. niger, which is very important to taxol production via chemical semi-synthesis. Additionally, the finding is potentially very significant to solve the taxol semi-synthetic precursors extracted from needles and twigs of yew trees, and the precursor production can be easily increased through the culture condition optimization, genetic breeding, and metabolic engineering of the A. niger.
Park, Ji-Young;Kang, Hee-Kyoung;Jin, Xing-Ji;Ahn, Joon-Seob;Kim, Seung-Heuk;Kim, Do-Won;Kim, Do-Man
한국생물공학회:학술대회논문집
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한국생물공학회 2005년도 생물공학의 동향(XVII)
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pp.644-648
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2005
Dextranase (${\alpha}$-1,6-D-glucan-6-glucanogydrolase:E.C. 3.2.1.11) catalyzes the hydrolysis of ${\alpha}$-(1.6) linkages of dextran. A lsd1 gene encoding an extracellular dextranase was isolated from the genomic DNA of L. starkeyi. The lsd11 gene is a synthetic dextranase (lsd1) after codon optimization for gene expression with Pichia pastoris system. A open reading frame of lsd11 gene was 1827 bp and it was inserted into the pPIC3.5K expression vector. The plasmid linearized by Sac I was integrated into the 5'AOX region of the chromosomal DNA of P. pastoris. The lsd11 gene fragment encoding a mature protein of 608 amino acids with a predicted molecular weight of 70 kDa, was expressed in the methylotrophic yeast P. pastoris by controling the alcohol oxidase-1 (AOX1) promoter. The recombinant lds11 was optimized by using the shake-flask expression and upscaled using fermentation technology. More than 9.8 mg/L of active dextranase was obtained after induction by methanol. The optimum pH of LSD11 was found to be 5.5 and the optimum temperature $28^{\circ}C$.
Pseudomonas elodea ATCC 31461에 의해 생산되는 미생물 다당류인 gellan의 최적 조건을 확립하기 위해 flask상에서 inoculum size, 탄소원 종류 및 농도, 질소원 종류, C/N ratio등을 조사하였다. Gellan 생산을 위한 최적 inoculum size는 5%(v/v)로 나타났으며, 1.0%(w/v)의 glucose에서 2.22의 최대 specific yield 와 $0.03 g/\ell$의 생산성을 얻을 수 있었다. 또한 ammonium nitrate가 없을 때 최대 생산을 얻을 수 있어, gellan 생산을 위해서 nitrogen limitation이 필요함을 알 수 있었다 Glucose와 bactopeptone을 이용하여 C/N ratio를 조사한 결과 20에서 gellan 생산이 가장 높게 나왔다.
본 연구에서 갈락토즈를 거의 사용하지 않고 glucose repression 정도가 줄어든 변이주를 이용하여 fed-batch를 통한 발현최적화를 수행하였다. 두 균주에서의 GAL promoter에 의한 외래단백질 생산시 glucose repression 정도에 대해 조사하였는데 대조구 Y2805는 글루코즈가 다 소비된 후 2∼3시간 지난 후 발현이 시작되나 변이주 Y334는 약 0.5 g/L 글루코즈 농도에서 25%정도의 발현이 이루어짐에 따라 변이주 Y334는 GAL promoter에 미치는 glucose repression 정도가 매우 약한 장점을 확인하였다. 배양 중 재조합 미생물인 두균주 변이주 Y334와 대조구 효모 Y2805의 plasmid stability에 대해 안정한 균주임을 알 수 있었으며 대조구 Y2805의 경우도 plasmid stability는 90%로 유지됨을 알 수 있었다. GAL promoter에 의한 외래 단백질 생산시 글루코즈와 갈락토즈, 에탄올의 소비속도를 조사하였는데, 글루코즈와 에탄올의 소비속도는 거의 비슷하였으나 갈락토즈 소비속도는 Y2805는 0.1232 g/L/hr/O.D.이고 변이주 Y334는 0.0131 g/L/hr/O.D. 이다. 또한 mutant Y334와 대조구 효모 Y2805의 Fed-batch 시의 올바른 feeding 방법을 구하기위한 실험을 수행하여 각 균주의 Fed-batch 실험에서의 최적 발현 방법을 획득하였다.
We assessed the ability of a Pseudonocardia sp. from soil samples to bioconvert vitamin $D_3$. The optimal culture conditions for the bioconversion of vitamin $D_3$ to active $1{\alpha}$,25-dihydroxyvitamin $D_3$ were investigated by varying the carbon and nitrogen sources, the metal salt concentrations, the initial pH, and the temperature. Microbial transformations were carried out with the addition of vitamin $D_3$ dissolved in ethanol. They were sampled by extraction with methanol-dichloromethane and the samples were examined by HPLC. Optimum culture conditions were found to be 0.4% yeast extract, 1% glucose, 3% starch, 1% fish meal, 0.2% NaCl, 0.01% $K_2HPO_4$, 0.2% $CaCO_3$, 0.01% NaF, and pH 7.0 at $28^{\circ}C$. The optimal timing of the addition of vitamin $D_3$ for the production of calcitriol by Pseudonocardia autotrophica ID9302 was concurrent with the inoculation of seed culture broth. Maximum calcitriol productivity and the yield of bioconversion reached a value of 10.4mg/L and 10.4% respectively on the 7th day in a 75L fementer jar under the above conditions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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