Endogenous 84 amino acid parathyroid hormone(PTH) is synthesized as a pre-pro hormone by the chief cells of the parathyroid glands. Physiological actions of PTH include regulation of bone metabolism, renal tubular reabsorption of calcium and phosphate, and intestinal calcium absorption. In addition, PTH stimulates new bone formation by extraordinary stimulation of osteoblastic activity and decreasing calcium excretion by the kidney. In this study, we constructed and tested retrovirus vectors designed to express the human parathyroid hormone(hPTH) gene under the control of the tetracycline-inducible promoters. To increase the hPTH gene expression at turn-on state, woodchuck hepatitis virus posttranscriptional regulatory element(WPRE) sequence was also introduced into retrovirus vector at downstream region of either the hPTH gene or the sequence encoding reverse tetracycline-controlled transactivator(rtTA). Transformed primary culture cells(porcine fetal fibroblast, PFF, chicken embryonic fibroblast, CEF) were cultured in the medium supplemented with or without doxycycline(tetracycline derivative) for 48 hours, and induction efficiency was measured by comparing the hPTH gene expression level using two step RT-PCR and ELISA Higher hPTH expression($3{\tims}10^4\;pg/ml,\;5.3{\times}10^4\;pg/ml$) and tighter expression control(up to 8 fold) were observed from the vector in which the WPRE sequence was placed at downstream of the hPTH gene. The resulting tetracycline inducible vector system may be helpful in solving serious physiological disturbance problems which have been a major obstacle in successful production of transgenic animals.
To produce human ferritins in yeast, human H-chain and L-chain ferritins were amplified from previously cloned vectors. Each amplified ferritin gene was inserted into the pYES2.1/V5-His-TOPO yeast expression vector under the control of the GAL1promoter. Western blot analysis of the recombinant yeast cells revealed that H-and L-chain subunits of human ferritin were expressed in Saccharomyces cerevisiae. Atomic absorption spectrometry (AAS) analysis demonstrated that the intracellular content of iron in the ferritin transformant was 1.6 to 1.8-fold higher than that of the control strain. Ferritin transformants could potentially supply iron-fortified nutrients for food and feed.
Han, Ji-Hye;Kim, Hye-Mi;Seo, Deog-Gyu;Lee, Gene;Jeung, Eui-Bae;Yu, Frank H.
Journal of Periodontal and Implant Science
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v.45
no.2
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pp.69-75
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2015
Purpose: Salivary fluid formation is primarily driven by Ca2+-activated, apical efflux of chloride into the lumen of the salivary acinus. The anoctamin1 protein is an anion channel with properties resembling the endogenous calcium-activated chloride channels. In order to better understand the role of anoctamin proteins in salivary exocrine secretion, the expression of the ten members of the anoctamin gene family in the mouse submandibular gland was studied. Methods: Total RNA extracted from mouse submandibular salivary glands was reverse transcribed using primer pairs to amplify the full-length coding regions of each anoctamin gene and was subcloned into plasmid vectors for DNA sequencing. Alternative splice variants were also screened by polymerase chain reaction using primer pairs that amplified six overlapping regions of the complementary DNA of each anoctamin gene, spanning multiple exons. Results: Multiple anoctamin transcripts were found in the mouse submandibular salivary gland, including full-length transcripts of anoctamin1, anoctamin3, anoctamin4, anoctamin5, anoctamin6, anoctamin9, and anoctamin10. Exon-skipping splicing in the N-terminal exons of the anoctamins1, anoctamin5, and anoctamin6 genes resulted in multiple alternative splice variants. No expression of anoctamin2, anoctamin7, or anoctamin8 was found. Conclusions: The predominant anoctamin transcript expressed in the mouse submandibular gland is anoctamin1ac. The chloride channel protein produced by anoctamin1ac is likely responsible for the $Ca^{2+}$-activated chloride efflux, which is the rate-limiting step in salivary exocrine secretion.
A thermostable $\alpha$-L-arabinofuranosidases ($\alpha$-L-AFase) is an industrially important enzyme for recovery of L-arabinose from hemicellulose. The recombinant $\alpha$-L-AFase from Thermotoga maritima was expressed in Escherichia coli by using a constitutive pHCE or an inducible pRSET vectors. In batch fermentation, the constitutive expression system resulted in slightly faster growth rate (0.78 vs. 0.74/hr) but lower enzyme activity (2,553 vs. 3,723 units/L) than those of the induction system. When fed-batch fermentation was performed, biomass and enzyme activity reached the highest levels of 36 g/L and 9,152 units/L, respectively. The fed batch cultures performed superior results than batch culture in terms of biomass yield (4.62-5.42 folds) and enzyme synthesis (3.39-4.00 folds). In addition, the fed-batch induction strategy at high cell density resulted in the best productivity in cell growth as well as enzyme activity rather than the induction method at low cell density or the constitutive expression.
Direct gene transfer to mammalian tissues has significant potential for gene therapy and transgenesis. Liposome-mediated in vivo transfection has begun to gain attention as an alternative to viral vectors, and may also be a good mode of transfection in gene transfer. Interestingly, polymerized cationic liposomes are reported to be very stable in the bloods and efficient for in vivo gene transfer. To examine a possible gene delivery in vivo, we investigated the efficacy and safety of the liposome-mediated gene transfer using vein injection in chick or mouse as model animals. The number of injected pGFP-LacZ using either a commercial or home-made liposomes was 8 and 19 at 16 and 7 day of hatch, respectively. One of injected chick of each experiments was analyzed and the rest is being bred. In mouse, 4/22 showed expression of pGFP-LacZ but 8/22 showed no expression and the remaining animals are also being bred. After injection of liposome/pGFP-LacZ complex into wing vein of 7 or 16 day-old chick, pGFP-LacZ was detected in various tissues isolated from not only young chick but also old chick were turned out to possess. exogenous DNA. Transcripts and proteins of the transgene were also detected by RT-PCR or histochemical analysis, respectively. These results suggest that injected DNA were inserted to genome and produced mRNA and proteins in various tissues and may give an important tools for effective gene delivery in gene therapy or transgenesis.
Kim, Sang Young;Park, Da Som;Kim, Se Eun;Koo, Deog-Bon;Kang, Man-Jong
Reproductive and Developmental Biology
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v.41
no.3
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pp.51-55
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2017
The production of therapeutic protein from transgenic domestic animal is the major technology of biotechnology. Insulin-like growth factor-1 (IGF-1) is known to play an important role in the growth of the animal. The objective of this study is construction of knock-in vector that bovine IGF-1 gene is inserted into the exon 7 locus of ${\beta}$-casein gene and expressed using the gene regulatory DNA sequence of bovine ${\beta}$-casein gene. The knock-in vector consists of 5' arm region (1.02 kb), bIGF-1 cDNA, CMV-EGFP, and 3' arm region (1.81 kb). To express bIGF-1 gene as transgene, the F2A sequence was fused to the 5' terminal of bIGF-1 gene and inserted into exon 7 of the ${\beta}$-casein gene. As a result, the knock-in vector is confirmed that the amino acids are synthesized without termination from the ${\beta}$-casein exon 7 region to the bIGF-1 gene by DNA sequence. These knock-in vectors may help to create transgenic dairy cattle expressing bovine bIGF-1 protein in the mammary gland via the expression system of the bovine ${\beta}$-casein gene.
Caspases, a family of cysteine proteases, cleave substrates and play significant roles in apoptosis, autophagy, and development. Recently, our group identified 72 genes that interact with Death Caspase-1 (DCP-1) proteins in Drosophila by genetic screening of 15,000 EP lines. However, the cellular functions and molecular mechanisms of the screened genes, such as their involvement in apoptosis and autophagy, are poorly understood in mammalian cells. In order to study the functional characterizations of the genes in human cells, we investigated 16 full-length human genes in mammalian expression vectors and tested their effects on apoptosis and autophagy in human cell lines. Our studies revealed that ALFY, BIRC4, and TAK1 induced autophagy, while SEC61A2, N-PAC, BIRC4, WIPI1, and FALZ increased apoptotic cell death. BIRC4 was involved in both autophagy and apoptosis. Western blot analysis and luciferase reporter activity indicated that ALFY, BIRC4, PDGFA, and TAK1 act in a p53-dependent manner, whereas CPSF1, SEC61A2, N-PAC, and WIPI1 appear to be p53-independent. Overexpression of BIRC4 and TAK1 caused upregulation of p53 and accumulation of its target proteins as well as an increase in p53 mRNA levels, suggesting that these genes are involved in p53 transcription and expression of its target genes followed by p53 protein accumulation. In conclusion, apoptosis and/or autophagy mediated by BIRC4 and TAK1 may be regulated by p53 and caspase activity. These novel findings may provide valuable information that will aid in a better understanding of the roles of caspase-related genes in human cell lines and be useful for the process of drug discovery.
In order to produce phenylalanine without tyrosine co-production, we constructed various temperature-controllable expression vectors by insertion of lower expression of the tyrA gene into the plasmid pSY130-14. And tyrosine revertant to cultivate without addition of tyrosine, was selected from Escherichia coli strain AT2471[tyrA , thi ] by spontaneous mutation. The strain AT2471 harbouring plasmid pSY146A and the tyrosine revertant 5 harbouring plasmid pSY111-14 produced 12 g/l and 15 g/l of phenylalanine respectively in a 2.5 l jar fermenter at a constant temperature of $39^{\circ}C$ after 55 hours cultivation.
The free-living photoheterotrophic Gram-negative bacterium Rhodobacter sphaeroides possesses a quorum-sensing (QS) regulatory system mediated by CerR-CerI, a member of the LuxR-LuxI family. To identify the genes affected by the regulatory system, random lacZ fusions were generated in the genome of R. sphaeroides strain 2.4.1 using a promoter-trapping vector, pSG2. About 20,000 clones were screened and 23 showed a significantly different level of ${\beta}$-gal activities upon the addition of synthetic 7,8-cis-N-tetradecenoyl-homoserine lactone (RAI). Among these 23 clones, the clone showing the highest level of induction was selected for further study, where about a ten-fold increase of ${\beta}$-gal activity was exhibited in the presence of RAI and induction was shown to be required for cerR. In this clone, the lacZ reporter was inserted in a putative gene that exhibited a low homology with catD. A genetic analysis showed that the expression of the catD homolog was initiated from a promoter of another gene present upstream of the catD. This upstream gene showed a strong homology with luxR and hence was named qsrR (quorum-sensing regulation regulator). A comparison of the total protein expression profiles for the wild-type cells and qsrR-null mutant cells using two-dimensional gel electrophoresis and a MALDI-TOF analysis allowed the identification of sets of genes modulated by the luxR homolog.
Alternanthera mosaic virus (AltMV) is a member of the genus Potexvirus which has been known for less than twenty years, and has been detected in Australasia, Europe, North and South America, and Asia. The natural host range to date includes species in at least twenty-four taxonomically diverse plant families, with species in at least four other families known to be infected experimentally. AltMV has been shown to differ from Potato virus X (PVX), the type member of the genus Potexvirus, in a number of ways, including the subcellular localization of the Triple Gene Block 3 (TGB3) protein and apparent absence of interactions between TGB3 and TGB2. Differences between AltMV variants have allowed identification of viral determinants of pathogenicity, and identification of residues involved in interactions with host proteins. Infectious clones of AltMV differing significantly in symptom severity and efficiency of RNA silencing suppression have been produced, suitable either for high level protein expression (with efficient RNA silencing suppression) or for Virus-Induced Gene Silencing (VIGS; with weaker RNA silencing suppression), demonstrating a range of utility not available with most other plant viral vectors. The difference in silencing suppression efficiency was shown to be due to a single amino acid residue substitution in TGB1, and to differences in subcellular localization of TGB1 to the nucleus and nucleolus. The current state of knowledge of AltMV biology, including host range, strain differentiation, host interactions, and utility as a plant viral vector for both protein expression and VIGS are summarized.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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