We established a two-step production process using immobilized S. cerevisiae and P. stipitis yeast to produce ethanol from seaweed (U. pertusa Kjellman) hydrolysate. The process was designed to completely consume both glucose and xylose. In particular, the yeasts were immobilized using DEAE-corncob and DEAE-cotton, respectively. The first step of the process included a continuous column reactor using immobilized S. cerevisiae, and the second step included a repeated-batch reactor using immobilized P. stipitis. It was verified that the glucose and xylose in 20 L of medium containing the U. pertusa Kjellman hydrolysate was converted completely to about 5.0 g/l ethanol through the two-step process, in which the overall ethanol yield from total reducing sugar was 0.37 and the volumetric ethanol productivity was 0.126 g/l/h. The volumetric ethanol productivity of the two-step process was about 2.7 times greater than that when P. stipitis was used alone for ethanol production from U. pertusa Kjellman hydrolysate. In addition, the overall ethanol yield from glucose and xylose was superior to that when P. stipitis was used alone for ethanol production. This two-step process will not only contribute to the development of an integrated process for ethanol production from glucose-and xylose-containing biomass hydrolysates, but could also be used as an alternative method for ethanol production.
Phytochemicals have been known to exhibit potent antioxidant activity. This study examined cytoprotective effects of phytochemicals including quercetin, catechin, caffeic acid, and phytic acid against oxidative damage in SK-Hep-1 cells induced by the oxidative and non-oxidative metabolism of ethanol. Exposure of the cells to excess ethanol resulted in a significant increase in cytotoxicity, reactive oxygen species (ROS) production, lipid hydroperoxide (LPO), and antioxidant enzyme activity. Excess ethanol also caused a reduction in mitochondrial membrane potential (MMP) and the quantity of reduced glutathione (GSH). Co-treatment of cells with ethanol and quercetin, catechin, caffeic acid and phytic acid significantly inhibited oxidative ethanol metabolism-induced cytotoxicity by blocking ROS production. When the cells were treated with ethanol after pretreatment of 4-methylpyrazole (4-MP), increased cytotoxicity, ROS production, antioxidant enzyme activity, and loss of MMP were observed. The addition of quercetin, catechin, caffeic acid and phytic acid to these cells showed suppression of non-oxidative ethanol metabolism-induced cytotoxicity, similar to oxidative ethanol metabolism. These results suggest that quercetin, catechin, caffeic acid and phytic acid have protective effects against ethanol metabolism-induced oxidative insult in SK-Hep-1 cells by blocking ROS production and elevating antioxidant potentials.
Kim, Yi-Ok;Choi, Woon-Yong;Kang, Do-Hyung;Lee, Hyeon-Yong;Jung, Kyung-Hwan
Journal of Life Science
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v.23
no.7
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pp.886-892
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2013
We investigated ethanol production from glycerol after screening of the yeast Pachysolen tannophilus ATCC 32691. For yeast to produce ethanol form glycerol, it is important that aeration is finely controlled. Therefore, we attempted to produce ethanol using a surface-aerated fermentor. When 880 ml of YPG medium (1% yeast extract, 2% peptone, 2% glycerol) was used to produce ethanol, the optimal aeration conditions for ethanol production were a surface aeration rate and agitation speed of 500 ml/min and 300 rpm, respectively. In a fed-batch culture, the maximum ethanol production and the maximum ethanol yield from glycerol (Ye/g) was 5.74 g/l and 0.166, respectively, after 90 hr using the surface-aerated fermentor.
This study investigated the high-efficient process for bioethanol from barley by various condition. First, higher concentrations of ethanol could be produced without loss of yield by using reducing water consumption. This is because it could prevent to increase viscosity despite reducing water consumption. Second, the ethanol yield could be improved by using reducing particle size of biomass (increase of enzyme reactive surface). Third, The addition of protease could have a considerable effect on yield of fermentation, which provides nutrients to the yeast. This results showed that bioethanol production would provide efficient ethanol production and lower production costs.
Journal of Korea Technical Association of The Pulp and Paper Industry
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v.42
no.5
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pp.1-14
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2010
Bio-ethanol is a promising alternative energy source for reducing both consumption of crude oil and environmental pollution from renewable resources like lignocellulosic biomass such as wood, forest residuals, agricultural leftovers and urban wastes. Based on current technologies, the cost of ethanol production from lignocellulosic materials is relatively high, and the main challenges are the low yield and high cost of the hydrolysis process. Development of more efficient pretreatment technology (physical, chemical, physico-chemical, and biological pretreatment), integration of several microbiological conversions into fewer reactors, and increasing ethanol production capacity may decrease specific investment for ethanol producing plants. The purpose of pretreatment of lignocellulosic material is to improve the accessible surface area of cellulose for hydrolytic enzymes and enhance the conversion of cellulose to glucose and finally high yield ethanol production which is economic and environmental friendly.
We investigated a novel process for production of ethanol from glycerol using the yeast Pachysolen tannophilus. After optimization of the fermentation medium, repeated-batch flask culture was performed over a period of 378 hr using yeast cells immobilized on Celite. Our results indicated that the use of Celite for immobilization of P. tannophilus was a practical approach for ethanol production from glycerol, and should be suitable for industrial ethanol production.
The optimum conditions for glucoamylase production, and ethanol productivity of the transformant TSD-14 were investigated as compared with the parental strains. The properties of TSD-14 were comparatively similar to the donor S. diastaticus IFO 1046 as regards the conditions of glucoamylase production and ethanol productivity. The soluble starch was the most effective carbon source for the glucoamylase production. While inorganic nitrogen sources did not prompt cell growth and enzyme production, the organic nitrogen sources generally enhanced both cell growth and glucoamylase production. The metal salts such as FeSO$_4$, MgSO$_4$, MnCl$_2$, and NiSO$_4$were favorable to the enzyme production. And the optium temperature and initial pH for glucoamylase production were 3$0^{\circ}C$ and 5. The transformant TSD-14 produced 8.3%(v/v) ethanol from 15% sucrose medium, 4.8%(v/v) ethanol from 15% soluble starch medium, and 7.5%(v/v) ethanol from 15% liquefied potato starch medium. The corresponding fermentation efficiency were 84% , 45% and 70%, respectively.
The effect of 4 kinds of alcohols was investigated on the production of bacterial cellulose (BC) by Gluconacetobacter hansenii PJK. The addition of alcohols and acetic acid to medium caused the pellets of bacterial cellulose to aggregate into a lump, which could be easily separated from the culture medium. The growth rate of cells and the production yield of BC increased in the medium containing ethanol. Other alcohols in the medium decreased cell growth and the cellulose production rate, because of their toxic effects. The addition of ethanol depressed the conversion of a $\textrm{Cel}^{+}$ cell to a $\textrm{Cel}^{-}$ mutant in shaking culture. Cells subcultured three in a medium containing ethanol produced BC without any loss of BC production yield.
A one-stage, continuous-flow bioreactor with both immobilized and suspended cells was used to investigate the roles of lipid supplements in ethanol production by Saccharomyces cerevisiae. The reactor performance and the level of alcohol dehydrogenase(ADH) activities of the suspended cells, grown under various conditions, were measured. When ergosterol and/or oleic acid were added with surfactants to the yeast culture grown under non-aerated conditions, remarkable increases in ethanol production and cell growth was achieved, but specific ADH activities were not affected. Especially, no difference of specific ADH activities of the suspended cells grown under aerated and non-aerated condition was observed. The addition of the surfactant as a supplement also resulted in significant increases in ethanol production, cell growth, and specific ADH activity. When ergosterol and oleic acid were added to the yeast culture exposed to higher ethanol concentration($>40\;g/{\ell}$) level, ethanol production, cell growth, and specific ADH activity were increased, but the addition of surfactant was as effective as at lower ethanol concentration level. The results indicated that lipid supplements were more effective at higher ethanol concentration level than at lower ethanol concentration level during ethanol production. ADH isozyme patterns of the yeast cultures grown under various conditions on starch gel electrophoresis showed only one major band, probably ADH I. The migrating distance of the major isozyme, however, varied slightly according to the culture conditions of the cells. No apparent correlation was found between specific ADH activity and amount of ethanol produced. Cell mass was more important factor for ethanol production than specific ADH activity of the cells.
Fermentation characteristics of Kluyveromyces fragilis CBS 1555 with Jerusalem artichoke juice, in extractive ethanol fermentation in aqueous two phase systems composed of polyethylene glycol 20000 (PEG) and crude dextran(Dx), were investigated as a function of initial sugar concentrations, concentrations of ethanol formed, or fermentation time. Both specific ethanol production rate increased with decrease in concentrations of PEG and Dx in two-phase systems. Without being related to the compositions of aqueous two-phase system, maximum specific cell growth rate and maximum specific ethanol production rate were showed in the initial sugar concentration fo $80g/\ell$ and $120g/\ell$, respectively. The inhibition effects of ethanol on specific cell growth rate and specific ethanol production rate decreased with decrease in PEG concentration and in the range of 2.5 to 5% Dx. Specific cell growth rate and specific ethanol production rate was fitted as an exponential function and a hyperbolic function, respectively, of the concentrations of ethanol formed. Overall ethanol productivity increased with increase in initial sugar concentrations, and also the required time for the maximum productivity was so. Ethanol production rate by the elapsed fermentation time showed the maximum value in the initial sugar concentration of $160g/\ell$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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