Plant mitochondria, irradiated with blue-colored $sunlight(350{\sim}500nm)$ under aerobic and anaerobic conditions, were assayed as to the electron transfer activity of respiratory enzyme system, and compared with those irradiated with orange-colored light(white sunlight minus blue-colored light). The respiratory activity of mitochondria was most seriousely inhibited by illumination with blue-colored light under aerobic condition. Deaeration of mitochondrial suspension resulted in substantial decrease of the photoinhibition by blue-colored light. Meanwhile, orange-colored light demonstrated much less effectiveness-almost ineffectiveness-in causing the inhibition of mitochondrial respiration system. The results of enzymatic assay revealed a strong possibility that FMN in NDH and heme group at least in cytochrome c oxidase, but not FAD in SDH, are the photodynamic sensitizers in mitochondrial inner membrane. Also worthwhile to note is the significant difference from the others of SDH in its photoinhibitory response to the light quality of visible light; that the inhibition of SDH by irradiation was not affected by atmospheric condition and that orange-colored light gave rise to considerable extents of inhibition to the enzyme. This observation was tentatively interpreted in terms of photosensitized reaction not involving molecular oxygen possibly catalyzed by Fe-S centers in the enzyme. The superoxide production and the membrane peroxidation of mitochondria under various treatments also indicated that there was blue-light photodynamic reaction in mitochondria involving active oxygens.
T4 endonuclease V (T4 endo V) [EC 3. 1. 25. 1], found in bacteriophage T4, is responsible for excision repair of damaged DNA. The enzyme possesses two activities: a cyclobutane pyrimidine dimer DNA glycosylase (CPD glycosylase) and an apyrimidic/apurinic endonuclease (AP lyase). T4 denV (414 bp cDNA) encoding T4 en do V (138 amino acid) was synthesized and expressed using either an expression vector, pTriEx-4, in E. coli or a baculovirus AcNPV vector, pBacPAK8, in insect cells. The recombinant His-Tag/T4 endo V (rHis-Tag/T4 endo V) protein expressed from bacteria was purified using one-step affinity chromatography with a HiTrap Chelating HP column and used to make rabbit anti-His-Tag/T4 endo V polyclonal antibody for detection of recombinant T4 endo V (rT4 endo V) expressed in insect cells. In the meantime, the recombinant baculovirus was obtained by cotransfection of BacPAK6 viral DNA and pBP/T4 endo V in Spodoptera frugiperda (Sf21) insect cells, and used to infect Sf21 cells to overexpress T4 endo V protein. The level of rT4 endo V protein expressed in Sf21 cells was optimized by varying the virus titers and time course of infection. The optimal expression condition was set as follows; infection of the cells at a MOI of 10 and harvest at 96 h post-infection. Under these conditions, we estimated the amount of rT4 endo V produced in the baculovirus expression vector system to be 125 mg/l. The rT4 endo V was purified to homogeneity by a rapid procedure, consisting of ion-exchange, affinity, and reversed phase chromatographies, based on FPLC. The rT4 endo V positively reacted to an antiserum made against rHis-Tag/T4 endo V and showed a residual nicking activity against CPD-containing DNA caused by UV. This is the first report to have T4 endo V expressed in an insect system to exclude the toxic effect of a bacterial expression system, retaining enzymatic activity.
Nam, Seung Taek;Seok, Heon;Kim, Dae Hong;Nam, Hyo Jung;Kang, Jin Ku;Eom, Jang Hyun;Lee, Min Bum;Kim, Sung Kuk;Park, Mi Jung;Chang, Jong Soo;Ha, Eun-Mi;Shong, Ko Eun;Hwang, Jae Sam;Kim, Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.22
no.12
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pp.1629-1635
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2012
Previously, we demonstrated that the erythropoietin receptor (EpoR) is present on fibroblasts, where it regulates focal contact. Here, we assessed whether this action of EpoR is involved in the reduced cell adhesion observed in colonocytes exposed to Clostridium difficile toxin A. EpoR was present and functionally active in cells of the human colonic epithelial cell line HT29 and epithelial cells of human colon tissues. Toxin A significantly decreased activating phosphorylations of EpoR and its downstream signaling molecules JAK-2 (Janus kinase 2) and STAT5 (signal transducer and activator of transcription 5). In vitro kinase assays confirmed that toxin A inhibited JAK 2 kinase activity. Pharmacological inhibition of JAK2 (with AG490) abrogated activating phosphorylations of EpoR and also decreased focal contacts in association with inactivation of paxillin, an essential focal adhesion molecule. In addition, AG490 treatment significantly decreased expression of occludin (a tight junction molecule) and tight junction levels. Taken together, these data suggest that inhibition of JAK2 by toxin A in colonocytes causes inactivation of EpoR, thereby enhancing the inhibition of focal contact formation and loss of tight junctions known to be associated with the enzymatic activity of toxin A.
The marine microorganism PX-1, which can hydrolyze xylan, was isolated from coastal sea water of Jeju Island, Korea. Based on the 16S rRNA gene sequence and chemotaxonomy analysis, PX-1 was identified as a species of the genus Aestuariibacter and named Aestuariibacter sp PX-1. From the culture broth of PX-1, an extracellular xylanase was purified to homogeneity through ammonium sulfate precipitation and subsequent adsorption chromatography using insoluble xylan. Sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis and gel filtration chromatography estimated the molecular weight of the purified putative xylanase (XylA) as approximately 64 kDa. XylA showed xylanase activity toward beechwood xylan, with a maximum enzymatic activity at pH 6.0 and 45℃. Through thin-layer chromatographic analysis of the xylan hydrolysate produced by XylA, it was confirmed that XylA is an endo-type xylanase that decomposes xylan into xylose and xyloligosaccharides of various lengths. The Km and Vmax values of XylA for beechwood xylan were 27.78 mM and 78.13 μM/min, respectively.
Houttuynia Cordata thunb has been used as folk medicine for analgesics, beriberi, edema, hepatitis and icterus etc. We investigated, the effects of Houttuynia Cordata thunb administration on protective in liver of 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin(TCDD) treated rats. Seven days after the injection of TCDD(1${\mu}g$/kg), Houttuynia Cordata thunb (200mg/kg) was administered into rats intraperitoneally for four weeks. We examined the antioxidative enzymatic activity by measuring the level of GOT, GPT in serum and MDA, GSH, GSSG, GPx, SOD and Catalase in liver tissue of rats. GOT activity of Houttuynia Cordata thunb and TCDD administered group(HTT) showed 49.00% of inhibitive effect compared to TCDD-treated abnormal group(TTA). GPT level of HTT group was decreased to the level of Non TCDD-treated group(NTT). MDA content in the TTA group was 1.27 times increased compared to NTT group. HTT group was inhibited by 69.53% compared to TTA group. GSH contents in HTT group was 1.91 times increased compared to TTA group. GSSG contents in HTT group was 46.72% decreased compared to TTA group. SOD and Catalase in TTA group were lower than in NTT group, but SOD and Catalase in HTT group were increased by 82% and 55.45% respectively compared to TTA group.
The gene encoding 4-$\alpha$-glucanotransferase (mgtA) from Thermotoga neapolitana was cloned and expressed in Escherichia coli in order to investigate whether this enzyme was capable of producing cycloamylose for industrial applications. MgtA was purified to homogeneity by HiTrap Q HP and Sephacryl S-200 HR column chromatographies. The size of the enzyme as determined by SDS-PAGE was about 52 kDa, which was in good agreement with its deduced molecular mass of 51.9 kDa. The optimal temperature and pH for the activity of the 4-$\alpha$-glucanotransferase was found to be $85^{\circ}C$ and 6.5, respectively. The enzyme hydrolyzed the 1,4-$\alpha$-glucosidic bonds in oligomeric 1,4-$\alpha$-glucans and transferred oligosaccharides (maltotriose being the shortest one) to acceptor maltodextrins. However, the enzymes had no activity against pullulan, glycogen, and other di- or trioligosaccharides with rare types of $\alpha$-bond. MgtA is distinguished from 4-$\alpha$-glucanotransferase from Thermotoga maritima in that it can convert maltotriose into maltooligosaccharides. The treatment of glucoamylase after the reaction of MgtA with maltotriose, maltotetraose, maltopentaose, or maltohexaose as sole substrate revealed that MgtA yielded linear maltooligosaccharides instead of cycloamylose.
Superoxide dismutases (SODs) constitute the first line of cellular defense against oxidative stress in plants. SODs generally occur in three different forms with Cu/Zn, Fe, or Mn as prosthetic metals. We cloned the full-length cDNA of the Thellungiella halophila Cu/Zn-SOD gene ThCSD using degenerate RT-PCR and rapid amplification of cDNA ends (RACE). Sequence analysis indicated that the ThCSD gene (GenBank accession number EF405867) had an open reading frame of 456 bp. The deduced 152-amino acid polypeptide had a predicted molecular weight of 15.1 kDa, an estimated pI of 5.4, and a putative Cu/Zn-binding site. Recombinant ThCSD protein was expressed in Escherichia coli and assayed for SOD enzymatic activity in a native polyacrylamide gel. The SOD activity of ThCSD was inactivated by potassium cyanide and hydrogen peroxide but not by sodium azide, confirming that ThCSD is a Cu/Zn-SOD. Northern blotting demonstrated that ThCSD is expressed in roots, stems, and leaves. ThCSD mRNA levels increased by about 30-fold when plants were treated with sodium chloride (NaCl), abscisic acid (ABA), and indole-acetic acid (IAA) and by about 50-fold when treated with UVB light. These results indicate that ThCSD is involved in physiological pathways activated by a variety of environmental conditions.
Park Ceun-Tae;Lee Dong-Ceun;Kim Nam Young;Lee Eo-Jin;Jung Jong-Ceun;Lee Jae-Hwa;Heo Moon-Soo;Lee Jung-Hyun;Kim Sang-Jin;Lee Sang-Hyeon
Journal of Life Science
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v.15
no.6
s.73
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pp.884-888
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2005
An agar-degrading bacterium was isolated from north-eastern sea of Jeju island and cultured in marine agar 2216 media. Biochemical and morphologicl characteristics and 165 rRNA gene revealed that isolated strain was member of Agarivorans genus, and named Agarivorans sp. JA-1. Agarase was produced as growth-related and expressed regardless of agar presence. Optimal pH was 8 at 50 mM Clycine-NaOH buffer, and activity was maximum at $40^{\circ}C$E Enzymatic activity was maintained over $80\%$ at $60^{\circ}C$t and $70\%$ at $80^{\circ}C$ which is thermotolerant. Hence isolated novel Agarivorans sp. JA-1 strain and its beta-agarase could be used for the production of functional oligosaccharide from agar in solution state.
In this study, the biological activities and physicochemical properties of polysaccharides from Gloiopeltis furcata were investigated. Polysaccharides were isolated by enzymes treatment (celluclast, flavourzyme, papain, termamyl, viscozyme) followed by ethanol precipitation and lyophilization. The yield of polysaccharides by enzymes treatment group were 52.8-66.4%. The major constituents in viscozyme treatment group were total sugar (71.04%), protein (7.22%), uronic acid (23.18 g/100 g), and sulfate (28.27%), respectively. The DPPH radical scavenging activity and ferric reducing antioxidant potential of the viscozyme treatment group at 5 mg/mL were 23.10% and $218.50{\mu}M$, respectively. The protective effects against $H_2O_2$-induced cytotoxicity in L132 cell of viscozyme treatment group at $1{\mu}g/mL$ was 85.64%. The viscozyme treatment group increased the production of nitric oxide (NO) in a dose-dependent manner. The antitumor activity of viscozyme treatment group (at $25{\mu}g/mL$) in A549, HeLa, SNU719 and MCF7 was 69.57%, 52.74%, 61.06% and 68.64%, respectively. All of data showed that the biological activities and chemical characteristics of enzymes treatment group are higher than that of the control group. The polysaccharides isolated from Gloiopeltis furcata investigated herein are useful as functional materials agents.
Han, Sang Mi;Hong, In Pyo;Woo, Soon Ok;Kim, Se Gun;Jang, Hye Ri
Journal of Apiculture
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v.32
no.3
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pp.269-273
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2017
We investigated whether purified bee venom increases the enzymatic activity of the alcohol dehydrogenase (ADH) and aldehyde dehydrogenase (ALDH). ADH and ALDH assay were tested by in vitro kits. The purified bee venom was assayed by ultra performance liquid chromatography, The contents of melittin, apamin and phospholipase A2, as main component of purified bee venom, were 63.9%, 2.3%, and 10.9%, respectively. The ADH and ALDH acitivity of purified bee venom(at 1mg/ml) were $88.6{\pm}7.34%$ and $94.6{\pm}0.57%$, respectively compared with positive control at 2mg/ml. These results showed that purified bee venom induces the activity of ADH and ALDH which reduce the aldehyde concentration in the blood, suggesting the possibility of purified bee venom as resource of medicine or functional beverage for hangover relieving.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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