To establish more specific and simple diagnostic methods for detection of the antibodies and antigens of Aujeszky's disease virus(ADV), we designed indirect dot-immunoassay(IDI) and double sandwich dotimmunoassay(DSDI) using the solid phases of nitrocellolose paper and polystyrene plate. The diagnostic efficacy of these methods was investigated. As the sensitivity of IDI was tested by various virus concentration, the specimens with the virus titer above $10^{4.0}TCID_{50}/0.2ml$ showed positive reaction, but that below $10^{1.0}TCID_{50}/ml$ revealed negative. Tonsil emulsion at the virus titer of $10^{4.5}TCID_{50}/0.2ml$ showed the highest sensitivity as diluted by 1/100. In detection of ADV antigens from the various tissues of the rats and pigs infected with ADV, IDI using monoclonal antibody showed the higher specificity as compared with IDI using polyclonal antibody and virus isolation method. The efficacy of the DSDI for detection of ADV antibody was compared with other tests. The sensitivity of DSDI was higher than virus neutralization(VN) and agar gel immunodiffusion test(AGID). Meanwhile, specificity of DSDI was lower than AGID, but similar to IDEA. In comparison with VN test, DSDI showed 96.9% agreement to VN test that is the highest of three tests. In general, application of polyclonal antibody in both tests caused the higher sensitivity but the lower specificty.
Salmonella, a major contributor to foodborne infections, typically causes self-limiting gastroenteritis. However, it is frequently invasive and disseminates across the intestinal epithelium, leading to deadly bacteremia. Although the genus is subdivided into >2,600 serotypes based on their antigenic determinants, only few serotypes are responsible for most human infections. In this study, a rapid dot-blot immunoassay was developed to diagnose multiple Salmonella enterica serotypes with high incidence rates in humans. The feasibility of 10 commercial antibodies (four polyclonal and six monoclonal antibodies) was tested using the 18 serotypes associated with 67.5% Salmonella infection cases in the United States of America (U.S.A) in 2016. Ab 3 (polyclonal; eight of 18 serotypes), Ab 8 (monoclonal; 13 of 18 serotypes), and Ab 9 (monoclonal; 10 of 18 serotypes) antibodies exhibited high detection rates in western blotting and combinations of two antibodies (Ab 3+8, Ab 3+9, and Ab 8+9) were applied to dot-blot assays. The combination of Ab 3+8 identified 15 of the tested 18 serotypes in 3 h, i.e., S. Enteritidis, S. Typhimurium, S. Javiana, S. I 4,[5],12:i:-, S. Infantis, S. Montevideo, S. Braenderup, S. Thompson, S. Saintpaul, S. Heidelberg, S. Oranienburg, S. Bareilly, S. Berta, S. Agona, and S. Anatum, which were responsible for 53.7% Salmonella infections in the U.S. in 2016. This cost-effective and rapid method can be utilized as an on-site colorimetric method for Salmonella detection.
Selahi, Fatemeh;Namavari, Mehdi;Hosseini, Mohammad Hossein;Mansourian, Maryam;Tahamtan, Yahya
Parasites, Hosts and Diseases
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v.51
no.1
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pp.129-132
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2013
In this study a disperse dye immunoassay method was standardized and evaluated for detection of antibodies against Neospora caninum in cattle. Sera from 150 cattle with a recent history of abortion were collected and tested by commercial ELISA kit and a standardized in-house dye immunoassay system. The positivity rate for the sera used in this study was 34.6% for the disperse dye immunoassay (DDIA) compared to 32% obtained by ELISA kit. This study showed no significant difference between DDIA and ELISA. The results indicated that the DDIA provide an economic, simple, rapid and robust test for detection of N. caninum infection in cattle.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.6
no.1
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pp.27-31
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2003
Infectious flacherie of silkworm Bombyx mori is caused by B. mori infectious flacherie virus (BmIFV) and causes severe crop loss to sericulturists. In the present study, a colloidal textile dye-based dipstick immunoassay is developed for the detection of infectious flacherie in silkworms. Colloidal textile dye (blue D2R) with Aλ$_{max}$ at 620 nm was sensitised with 500 $\mu\textrm{g}$/ml of purified anti-BmIFV IgG. The dye-antibody reagent detects purified antigen up to 10 ng/ml and BmIFV infection in diseased larval extracts $(up to a dilution of {10^-5})$ and faecal matter extracts $(up to a dilution of {10^-2})$ by forming clear blue dot within 30 min. It was observed to be stable for three months period at $4^{\circ}C$. The efficacy of textile dye-based dipstick immunoassay was on pay with HRP-based dipstick immunoassay and fluorescent antibody test, and better than latex agglutination and ouchterlony tests in the detection of BmIFV The dye-based dipstick immunoassay method provides a simple, sensitive and less expensive test for the detection of BmIFV infection in silkworms.s.
The purpose of the present study was to evaluate the potential role of the 27-Kilodalton (KDa) antigen versus Fasciola gigantica adult worm regurge antigens in a DOT-Blot assay and to assess this assay as a practical tool for diagnosis fascioliasis in Egyptian patients. Fasciola gigantica antigen of an approximate molecular mass 27- (KDa) was obtained from adult worms by a simple elution SDS-PAGE. A Dot-Blot was developed comparatively to adult worm regurge antigens for the detection of specific antibodies from patients infected with F. gigantica in Egypt. Control sera were obtained from patients with other parasitic infections and healthy volunteers to assess the test and compare between the antigens. The sensitivity, specificity, positive and negative predictive values of Dot-Blot using the adult worm regurge were 80%, 90%, 94.1%, and 69.2% respectively, while those using 27-KDa were 100% which confirms the diagnostic potential of this antigen. All patients infected with Fasciola were positive, with cross reactivity reported with Schistosoma mansoni serum samples. This 27-KDa Dot-Blot assay showed to be a promising test which can be used for serodiagnosis of fascioliasis in Egyptian patients especially, those presenting with hepatic disease. It is specific, sensitive and easy to perform method for the rapid diagnosis particularly when more complex laboratory tests are unavailable.
For easy and rapid screening of hemorrhagic fever with renal syndrome (HFRS) without any laboratory equipment, dot blot enzyme immunoassay was developed and tried to detect anti-hantavirus antibodies. The nucleocapsid protein of Hantaan virus was isolated by affinity chromatography and used for making the dot strip. 28 of 29 Hantaan virus infected sera showed positive signals and 21 of 22 HFRS negative sera showed no positive signals. Anti-Seoul virus monoclonal antibody also exibited positive signal but the intensity of colorization was approximately 5 fold less than that of anti-Hantaan monoclonal antibody. The sensitivity of dot blot assay was equal or superior to indirect immunofluorescent assay (IFA) or ELISA test. Overall, the screening results with dot blot assay showed 92.2 % of concordance with IFA or ELISA test. This results suggests that dot blot assay could be applied a tool for easy and rapid screening of HFRS.
In order to eventually fabricate an analytical system for infectious microorganisms, we synthesized major immunochemical components, utilized them for the construction of model system, and investigated an assay concept for bacterial whole cells. For the preparation of system components, a polyclonal antibody, against Salmonella thompson as model analyte, purified by immuno-affinity chromatography was used to chemically link to streptavidin or an enzyme, horseradish peroxidase(HRP). The antibody and streptavidin was modified with sulfosuccinimidyl 4-[N-maleimidomethyl]cyclohexane-1-carboxylate and N-succinimidyl-3-[2-pyridyldithio]propionate(subsequently activated by dithiotheritol), respectively. The modified components were reacted to synthesize antibody-streptavidin conjugates which were then purified on a two-layer chromatography column of diaminobiotin gel and Sephadex G-100. For antibody-HRP conjugates, HRP molecules were activated by $NalO_4$ oxidation and then coupled to immunoglobulin. After stabilizing with ($NaCNBH_3$, the conjugates were purified by size exclusion chromatography on Biogel A5M column. To devise a model system, such produced components were combined with a dot-blotter in which a nitrocellulose membrane($12{\mu}m$ pre size) with immobilized biotin was already located. The analyte (S. thompson cells) was reacted with the both antibody conjugates in a liquid phase, and the complexes formed were captured on the membrane surfaces by applying vacuum in the bottom compartment of the blotter to invoke biotin-streptavidin reaction. Under optimal conditions, the system enabled to identify the analytical concept for bacterial whole cells, and the lower limit of detection was approximately $1{\mu}g/m{\ell}$($10^5-10^6$ cells/m$m{\ell}$). The controlling factors were the concentrations of each antibody conjugate that caused agglutination in the presence of analyte as they increased.
Human gnathostomiasis is a parasitic disease caused by Gnathostoma nematode infection. A rapid, reliable, and practical immunoassay, named dot immuno-gold filtration assay (DIGFA), was developed to supporting clinical diagnosis of gnathostomiasis. The practical tool detected anti-Gnathostoma-specific IgG4 in human serum using crude extract of third-stage larvae as antigen. The result of the test was shown by anti-human IgG4 monoclonal antibody conjugated colloidal gold. The sensitivity and specificity of the test were both 100% for detection in human sera from patients with gnathostomiasis (13/13) and from healthy negative controls (50/50), respectively. Cross-reactivity with heterogonous serum samples from patients with other helminthiases ranged from 0 (trichinosis, paragonimiasis, clonorchiasis, schistosomiasis, and cysticercosis) to 25.0% (sparganosis), with an average of 6.3% (7/112). Moreover, specific IgG4 antibodies diminished at 6 months after treatment. This study showed that DIGFA for the detection of specific IgG4 in human sera could be a promising tool for the diagnosis of gnathostomiasis and useful for evaluating therapeutic effects.
Kim, Yerin;Choi, Yu Rim;Kim, Bong-Geun;Na, Hyon Bin
Applied Chemistry for Engineering
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v.33
no.5
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pp.451-458
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2022
Semiconductor quantum dots (QDs) are optical probes with excellent fluorescence properties. Therefore, they have been applied to various bio-medical imaging techniques and biosensors. Due to the unique optical characteristics of wide absorption and narrow fluorescence energy bands, multiple types of signals can be generated by the combination of fluorescence wavelengths from different QDs, which enables the simultaneous detection of more than two biomarkers. In this review, the advantages and applications of QDs and QD nanobeads (QBs) in multiple biomarker assays were described, and new developments or improvements in multiplexed biomarker detection techniques were summarized. In particular, recent reports were summarized, focusing on the design strategies in immunoassay construction and signal transducing materials for fluorescence-linked immunosorbent assays using QDs and immunochromatographic assays using QBs. New detection platforms will be developed for early diagnosis of diseases and other fields if multiplexed detection technologies of excellent accuracy and sensitivity are combined with artificial intelligence algorithms.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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