To establish more specific and simple diagnostic methods for detection of the antibodies and antigens of Aujeszky's disease virus(ADV), we designed indirect dot-immunoassay(IDI) and double sandwich dotimmunoassay(DSDI) using the solid phases of nitrocellolose paper and polystyrene plate. The diagnostic efficacy of these methods was investigated. As the sensitivity of IDI was tested by various virus concentration, the specimens with the virus titer above $10^{4.0}TCID_{50}/0.2ml$ showed positive reaction, but that below $10^{1.0}TCID_{50}/ml$ revealed negative. Tonsil emulsion at the virus titer of $10^{4.5}TCID_{50}/0.2ml$ showed the highest sensitivity as diluted by 1/100. In detection of ADV antigens from the various tissues of the rats and pigs infected with ADV, IDI using monoclonal antibody showed the higher specificity as compared with IDI using polyclonal antibody and virus isolation method. The efficacy of the DSDI for detection of ADV antibody was compared with other tests. The sensitivity of DSDI was higher than virus neutralization(VN) and agar gel immunodiffusion test(AGID). Meanwhile, specificity of DSDI was lower than AGID, but similar to IDEA. In comparison with VN test, DSDI showed 96.9% agreement to VN test that is the highest of three tests. In general, application of polyclonal antibody in both tests caused the higher sensitivity but the lower specificty.
Salmonella, a major contributor to foodborne infections, typically causes self-limiting gastroenteritis. However, it is frequently invasive and disseminates across the intestinal epithelium, leading to deadly bacteremia. Although the genus is subdivided into >2,600 serotypes based on their antigenic determinants, only few serotypes are responsible for most human infections. In this study, a rapid dot-blot immunoassay was developed to diagnose multiple Salmonella enterica serotypes with high incidence rates in humans. The feasibility of 10 commercial antibodies (four polyclonal and six monoclonal antibodies) was tested using the 18 serotypes associated with 67.5% Salmonella infection cases in the United States of America (U.S.A) in 2016. Ab 3 (polyclonal; eight of 18 serotypes), Ab 8 (monoclonal; 13 of 18 serotypes), and Ab 9 (monoclonal; 10 of 18 serotypes) antibodies exhibited high detection rates in western blotting and combinations of two antibodies (Ab 3+8, Ab 3+9, and Ab 8+9) were applied to dot-blot assays. The combination of Ab 3+8 identified 15 of the tested 18 serotypes in 3 h, i.e., S. Enteritidis, S. Typhimurium, S. Javiana, S. I 4,[5],12:i:-, S. Infantis, S. Montevideo, S. Braenderup, S. Thompson, S. Saintpaul, S. Heidelberg, S. Oranienburg, S. Bareilly, S. Berta, S. Agona, and S. Anatum, which were responsible for 53.7% Salmonella infections in the U.S. in 2016. This cost-effective and rapid method can be utilized as an on-site colorimetric method for Salmonella detection.
Selahi, Fatemeh;Namavari, Mehdi;Hosseini, Mohammad Hossein;Mansourian, Maryam;Tahamtan, Yahya
Parasites, Hosts and Diseases
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제51권1호
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pp.129-132
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2013
In this study a disperse dye immunoassay method was standardized and evaluated for detection of antibodies against Neospora caninum in cattle. Sera from 150 cattle with a recent history of abortion were collected and tested by commercial ELISA kit and a standardized in-house dye immunoassay system. The positivity rate for the sera used in this study was 34.6% for the disperse dye immunoassay (DDIA) compared to 32% obtained by ELISA kit. This study showed no significant difference between DDIA and ELISA. The results indicated that the DDIA provide an economic, simple, rapid and robust test for detection of N. caninum infection in cattle.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제6권1호
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pp.27-31
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2003
Infectious flacherie of silkworm Bombyx mori is caused by B. mori infectious flacherie virus (BmIFV) and causes severe crop loss to sericulturists. In the present study, a colloidal textile dye-based dipstick immunoassay is developed for the detection of infectious flacherie in silkworms. Colloidal textile dye (blue D2R) with Aλ$_{max}$ at 620 nm was sensitised with 500 $\mu\textrm{g}$/ml of purified anti-BmIFV IgG. The dye-antibody reagent detects purified antigen up to 10 ng/ml and BmIFV infection in diseased larval extracts $(up to a dilution of {10^-5})$ and faecal matter extracts $(up to a dilution of {10^-2})$ by forming clear blue dot within 30 min. It was observed to be stable for three months period at $4^{\circ}C$. The efficacy of textile dye-based dipstick immunoassay was on pay with HRP-based dipstick immunoassay and fluorescent antibody test, and better than latex agglutination and ouchterlony tests in the detection of BmIFV The dye-based dipstick immunoassay method provides a simple, sensitive and less expensive test for the detection of BmIFV infection in silkworms.s.
The purpose of the present study was to evaluate the potential role of the 27-Kilodalton (KDa) antigen versus Fasciola gigantica adult worm regurge antigens in a DOT-Blot assay and to assess this assay as a practical tool for diagnosis fascioliasis in Egyptian patients. Fasciola gigantica antigen of an approximate molecular mass 27- (KDa) was obtained from adult worms by a simple elution SDS-PAGE. A Dot-Blot was developed comparatively to adult worm regurge antigens for the detection of specific antibodies from patients infected with F. gigantica in Egypt. Control sera were obtained from patients with other parasitic infections and healthy volunteers to assess the test and compare between the antigens. The sensitivity, specificity, positive and negative predictive values of Dot-Blot using the adult worm regurge were 80%, 90%, 94.1%, and 69.2% respectively, while those using 27-KDa were 100% which confirms the diagnostic potential of this antigen. All patients infected with Fasciola were positive, with cross reactivity reported with Schistosoma mansoni serum samples. This 27-KDa Dot-Blot assay showed to be a promising test which can be used for serodiagnosis of fascioliasis in Egyptian patients especially, those presenting with hepatic disease. It is specific, sensitive and easy to perform method for the rapid diagnosis particularly when more complex laboratory tests are unavailable.
For easy and rapid screening of hemorrhagic fever with renal syndrome (HFRS) without any laboratory equipment, dot blot enzyme immunoassay was developed and tried to detect anti-hantavirus antibodies. The nucleocapsid protein of Hantaan virus was isolated by affinity chromatography and used for making the dot strip. 28 of 29 Hantaan virus infected sera showed positive signals and 21 of 22 HFRS negative sera showed no positive signals. Anti-Seoul virus monoclonal antibody also exibited positive signal but the intensity of colorization was approximately 5 fold less than that of anti-Hantaan monoclonal antibody. The sensitivity of dot blot assay was equal or superior to indirect immunofluorescent assay (IFA) or ELISA test. Overall, the screening results with dot blot assay showed 92.2 % of concordance with IFA or ELISA test. This results suggests that dot blot assay could be applied a tool for easy and rapid screening of HFRS.
병원성 미생물을 측정할 수 있는 분석시스템을 구성하기 위해 면역학적 성분들을 합성하였고, 이를 이용하여 모델 시스템을 구성함으로써 균 세포 분석원리가 연구되었다. 구성성분을 준비하기 위해 Salmonella thompson에 대한 복합 클론항체를 면역 친화 크로마토그래피를 이용하여 정제하였고, 이렇게 정제된 항체를 Streptavidin과 horseradush peroxdase에 화학결합시켰다. 항체와 Streptavidinfdm은 각각 SMCC와 SPDP에 의해 활성화 되있고 두 물질을 반응시킴으로써 중합체가 합성되었다. 중합체는diaminobiotion 젤과 sephades G-100젤을 이중 층으로 쌓은 칼럼을 이용하여 정제되었다. 항체- HRP 중합체의 합성을 위해, HRP를 $NAIO_4$ 처리에 의해 안정화된 중합체는 Biohel A5M을 이용한size exchusion크로토그래피로 정제되었다. 이렇게 준비된 중합체들과 dot-bloner 그리고 biotim이 고정화된 nitrocellulose membrane($12\mum$ pore size)을 이용하여 모델시스템을 구성하였다. 분석물질(S.Thormpson cells)을 먼적 액상에서 두 중합체와 반응되었고 반응먹을 membrane이 정착된 blotter에 옮긴 후 하부에 진공을 걸어 면역복합체를 biotin-streptavidin 반응에 의해 membrane 표면에 포획하였다.최적조건 하에서 시스템의 균 세포 분석원리를 확인하였으며 측정하한농도는 약 $1{\mu}g/m{\ell}(10^5 {\cdot} 10^6\;cells/m{\ell}$인 것으로 나타났다. 이러한 측정성능의 주요조절인자는 두항체 종합체 농도의 증가는 항원-항체 응집반응을 초래하는 것으로 나타났다.
Human gnathostomiasis is a parasitic disease caused by Gnathostoma nematode infection. A rapid, reliable, and practical immunoassay, named dot immuno-gold filtration assay (DIGFA), was developed to supporting clinical diagnosis of gnathostomiasis. The practical tool detected anti-Gnathostoma-specific IgG4 in human serum using crude extract of third-stage larvae as antigen. The result of the test was shown by anti-human IgG4 monoclonal antibody conjugated colloidal gold. The sensitivity and specificity of the test were both 100% for detection in human sera from patients with gnathostomiasis (13/13) and from healthy negative controls (50/50), respectively. Cross-reactivity with heterogonous serum samples from patients with other helminthiases ranged from 0 (trichinosis, paragonimiasis, clonorchiasis, schistosomiasis, and cysticercosis) to 25.0% (sparganosis), with an average of 6.3% (7/112). Moreover, specific IgG4 antibodies diminished at 6 months after treatment. This study showed that DIGFA for the detection of specific IgG4 in human sera could be a promising tool for the diagnosis of gnathostomiasis and useful for evaluating therapeutic effects.
반도체 양자점은 우수한 형광 특성을 가진 광학 탐침자로 생명-의학 영상화 기술 및 바이오센싱 분야에서 광범위하게 활용되고 있다. 양자점은 넓은 광흡수 에너지띠, 좁은 형광 에너지띠와 같은 광학 특성을 가지므로 서로 다른 형광 파장을 지닌 양자점을 조합해 다종의 신호를 생성할 수 있도록 구성하면 복수의 바이오마커를 동시에 검출할 수 있다. 본 총설에서는 이와 같은 다중 검출 분석법에서의 양자점 및 이에 기반한 양자점 나노비드가 가지는 장점과 활용 사례를 기술하고 다중 형광 바이오마커 검출법의 최근 개발 동향 및 개선사항을 요약 정리하였다. 특히 양자점을 활용한 형광-결합 면역흡착 분석법, 양자점 나노비드를 이용한 면역크로마토그래피 분석법 등 면역 분석법에서의 신호 전환 소재 디자인을 중심으로 최근의 연구 결과를 검토하였다. 정확성과 민감도가 우수한 다중 바이오마커 검출 기술이 확보된 데이터를 처리하고 해석하는 인공지능 알고리즘과 결합될 경우 질병의 조기 진단을 포함한 다양한 분야에 활용가능한 새로운 검출 플랫폼의 개발로 이어질 것으로 기대된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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