Two distinct CD3 homologue genes, $CD3\gamma/\delta\;and\;CD\varepsilon$, were isolated from a olive flounder leukocyte cDNA library and a BAC library. $CD3\gamma/\delta$ consisted of 961 bp encoding 178 amino acid residues, and $CD3\varepsilon$ consisted of 1006 bp encoding 164 amino acid residues. When compared with other known CD3 peptide sequences, the most conserved region of the two olive flounder CD3 chain peptides are the cytoplasmic domain and the least conserved are the extracellular domain. A phylogenetic analysis based on the deduced amino acid sequence grouped the two olive flounder CD3 sequences with $CD3\varepsilon$ and $CD3\gamma/\delta$, respectively. The olive flounder CD3 cluster (consisting of $CD3\varepsilon\;and\;CD3\gamma/\delta$) spans only 10.4 kb. The $CD3\varepsilon\;and\;CD3\gamma/\delta$ genes are oppositely transcribed only 3.8 kb apart. Both olive flounder CD3 genes have five exons. The two olive flounder CD3 genes were predominantly expressed in PBLs, kidney, spleen, and gills.
The fission yeast Schizosaccharomyces pombe contains two distinct superoxide dismutase (SOD) activities, one in the cytosol encoded by the $sod2^{+}$ gene and the other in mitochondria. The $sod2^{+}$ gene encoding putative mitochondrial manganese superoxide dismutase (MnSOD) was isolated from the S. pombe genomic library using a PCR fragment as the probe. The nucleotide sequence of the $sod2^{+}$ gene and its flanking region (4051 bp HindIII fragment) was determined. An intron of 123 nt in size was predicted and confirmed by sequencing the cDNA following reverse transcription PCR. The predicted Sod2p consists of 218 amino acid residues with a molecular mass of 24,346 Da. The deduced amino acid sequence showed a high degree of homology with other MnSODs, especially in the metal binding residues at the active site and their relative positions. The transcriptional start site was mapped by primer extension at 231 at upstream from the ATG codon. A putative TATA box(TATAAAA) was located 58 nt upstream from the transcriptional start site and putative polyadenylation sites were located at 1000, 1062, and 1074 nt downstream from the ATG start codon.
A tomato zinc-finger protein gene, LeZFP1, encoding the Cys2/His2-type zinc-finger transcription factor was searched from cDNA microarray analysis of gene expression following induction of the overexpressed tomato transgenic plants showing resistance for pathogen and abiotic stresses. The full-length cDNA of LeZFP1 encoded a protein of 261 amino acid residues. Analysis of the deduced amino acid sequence of LeZFP1 revealed that it shares high sequence identity with pepper CAZFP1 (81% identity). We found that single copy of LeZFP1 gene is present in the tomato genome through southern blot analysis. The LeZFP1 transcripts were constitutively expressed in the tomato mature and young leaves, but were detectable weakly in the flower, stem and root. The LeZFP1 transcripts were significantly reduced in treated leaf tissues with NaCl and mannitol. The LeZFP1 gene was induced by oxidative stress especially. Our results indicated that LeZFP1 may play a role function involved in oxidative stress signaling pathways.
Kim, Seong-Ryul;Lee, Kwang-Sik;Kim, Iksoo;Kang, Seok-Woo;Nho, Si-Kab;Sohn, Hung-Dae;Jin, Byung-Rae
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제6권1호
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pp.93-97
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2003
We describe here the cloning of a cDNA encoding putative calreticulin (CRT) from the silkworm, Bombyx mori. The CRT cDNA comprised of 1,194 bp encoding 398 amino acid residues. B. mori. CRT has a HDEL sequence at the end of the C-domain. The B. morl, CRT showed 88% protein sequence identity to the G. mellonella CRT, 71 % to A. aegypti CRT, and 63% to H. sapiens CRT, Phylogenetic analysis revealed that the deduced amino acid sequences of the B. mori CRT formed a highly inclusive subgroup with other insect CRTs. Northern blot analysis exhibited an expression of the B. mori CRT gene in the fat body, evidencing the fat body as a major site for CRT synthesis.
The sequence coding for carboxymethylcellulase (CMCase, CelC) was isolated from the DNA of Salmonella typhimurium URl. Comparison between the deduced amino acid sequence of CelC (368 amino acid residues, Molecular mass 41 kDa) and that of the previously published CMCase revealed that this enzyme belongs to the cellulase family 8 and D. The protein was overproduced in Escherichia coli using T7 expression system, and its activity was confirmed by CMC-SDS-PAGE. When the overexpressed CelC protein was tested on cellulose-type substrates, the recombinant protein is able to degrade cellulose-type substrates, such as CM-cellulose, xylan, avicel, lichenan, and laminarin. Optimal temperature and pH for enzyme activity were found to be 50$^{\circ}C$ and pH 6.5, respectively.
Iron- and zinc-containing superoxide dismutase (FeZnSOD) and nickel-containing superoxide dismutase (NiSOD) are cytoplamic enzymes in Streptomyces griseus. The sodF gene coding for FeZnSOD was cloned from genomic Southern hybridization analysis with a 0.5-kb DNA probe, which was PCR-amplified with facing primers corresponding to the N-terminal amino acid of the purified FeZnSOD of S. griseus and a C-terminal region which is conserved among bacterial FeSODs and MnSODs. The sodF open reading frame (ORF) was comprised of 213 amino acid (22,430 Da), and the deduced sequence of the protein was highly homologous (86% identity) to that of FeZnSOD of Streptomyces coelicolor. The FeZnSOD expression of exponentially growing S. griseus cell was approximately doubled as the cell growth reached the early stationary phase. The growth-associated expression of FeZnSOD was mainly controlled at the transcriptional level, and the regulation was exerted through the 110 bp regulatory DNA upstream from the ATG initiation codon of the sodF gene.
Ferritin is an evolutionarily conserved protein that plays an important role in iron storage and detoxification. In this study, the gene encoding a ferritin H subunit homologue (RbFH) was cloned from rock bream (Oplegnathus fasciatus) and analyzed at the expression. The full-length ferritin H cDNA was 1162 bp long and contained an open reading frame (ORF) of 531 bp that encoded 177 amino acid residues with a predicted molecular mass of 20.8 kDa. The 5' UTR was 297 bp in length, and the 3' UTR 298 bp, and preceded by a 5'-untranslated region that contains a putative Iron Regulatory Element (IRE). The deduced amino acid sequence of RbFH shares extensive sequence identities with the H ferritins of a number of fish species and contains the ferroxidase center that is preserved in ferritin H subunits. Examination of tissue specific expression indicated that RbFH expression was most abundant in PBLs, RBC, liver and muscle.
There is a difference in the inhibitory effects to supplemental UVB (wavelengths 280 to 320 nm) among Japanese rice (Oryza sativa L.), the cultivar Norin I is less resistant while the cultivar Sasanishiki is resistant. UVB induces photodamage in DNA. Cyclobutane pyrimidine dimer (CPD) is a major UV-induced DNA lesion. Photorepair, which is mediated by photolyase, is the major pathway in plants for repairing CPD. We have analyzed CPD induction and repair in Sasanishiki and its close relative Norin I using alkaline agarose gel electrophoresis. Norin I is deficient in CPD photoreactivation and excision, thus UV sensitivity correlates with deficient dimer repair [I]. The photorepair deficiency in Norin I results from a functionally altered photolyase with a photoflash analysis [2]. In this paper, we examined the UVB-sensitivity of several other UV-sensitive and -resistant cultivars and found that the CPD photolyase activity was deficient in UV-sensitive ones. It was also evident that there was a variation in the deduced amino acid sequences of CPD photolyases of the UV-sensitive and -resistant cultivars, whereas each deduced amino acid sequence of the UV-sensitive cultivars and of the UV-resistant ones was the same. These results suggest that the difference in the CPD photolyases of UV-sensitive and -resistant rice might be due to the structural alteration of CPD photolyase.
Tea leaves are major source of catechins—antioxidant flavonoids. Dihydroflavonol 4-reductase (DFR, EC 1.1.1.219) is one of the important enzymes that catalyzes the reduction of dihydroflavonols to leucoanthocyanins, a key ''late'' step in the biosynthesis of catechins. This manuscript reports characterization of DFR from tea (CsDFR) that comprised 1,413 bp full-length cDNA with ORF of 1,044 bp (115-1,158) and encoding a protein of 347 amino acids. Sequence comparison of CsDFR with earlier reported DFR sequences in a database indicated conservation of 69-87% among amino acid residues. In silico analysis revealed CsDFR to be a membrane-localized protein with a domain (between 16 and 218 amino acids) resembling the NAD-dependent epimerase/dehydratase family. The theoretical molecular weight and isoelectric point of the deduced amino sequence of CsDFR were 38.67 kDa and 6.22, respectively. Upon expression of CsDFR in E. coli, recombinant protein was found to be functional and showed specific activity of 42.85 nmol $min^{-1}$ mg $protein^{-1}$. Expression of CsDFR was maximum in younger rather than older leaves. Expression was down-regulated in response to drought stress and abscisic acid, unaffected by gibberellic acid treatment, but up-regulated in response to wounding, with concomitant modulation of catechins content. This is the first report of functionality of recombinant CsDFR and its expression in tea.
YANG HYE-YOUNG;CHOI SI-SUN;CHI WON-JAE;KIM JONG-HEE;KANG DAE-KYUNG;CHUN JAESUN;KANG SANG-SOON;HONG SOON-KWANG
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제15권5호
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pp.1125-1129
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2005
Cloning of a 6.6-kb BamHI digested chromosomal DNA from S. griseus IFO13350 revealed the presence of an additional gene encoding a novel trypsin-like enzyme, named SprU. The SprU protein shows a high homology ($79\%$ identity, $88\%$ similarity) with the SGT protease, which has been reported as a bacterial trypsin in the same strain. The amino acid sequence deduced from the nucleotide sequence of the sprU gene suggests that SprU is produced as a precursor consisting of an amino-terminal presequence (29 amino acid residues), prosequence (4 residues), and mature trypsin consisting of 222 amino acids with a molecular weight of 22.94 kDa and a calculated pI of 4.13. The serine, histidine, and aspartic acid residues composing the catalytic triad of typical serine proteases are also well conserved. When the trypsin activity of the SprU was spectrophotometrically measured by the enzymatic hydrolysis of the artificial chromogenic substrate, N-${alpha}$-benzoyl-DL-arginine-p-nitroanilide, the S. lividans transformant with pWHM3-U gave 3 times higher activity than that of control. When the same recombinant plasmid was introduced into S. griseus, however, the gene dosage effect was not so significant, as in the cases of other genes encoding serine proteases, such as sprA, sprB, and sprD. Although two trypsins, SprU and SGT, have a high degree of homology, the pI values, the gene dosage effect in S. griseus, and the gene arrangement adjacent to the two genes are very different, suggesting that the biochemical and biological function of the SprU might be quite different from that of the SGT.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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