As the antioxidant and free radical scavenger, glutathione (GSH) participates in the preservation of cellular redox status and defense against reactive oxygen species and xenobiotics. Glutamate-cysteine ligase (GCL; also known as ${\gamma}$-glutamylcysteine synthetase, EC 6.3.2.2) is the rate limiting enzyme in GSH synthesis. In the present study, the accurate method for determination of GCL activity in crude liver extracts was developed by measuring both ${\gamma}$-glutamylcysteine and GSH from cysteine in the presence of glutamate, glycine and an ATP-generating system. We added glycine to promote the conversion of ${\gamma}$-glutamylcysteine to GSH, and to minimize the possibility of ${\gamma}$-glutamylcysteine metabolism to cysteine and oxoproline by ${\gamma}$-glutamylcyclotransferase. We established optimal conditions and substrate concentrations for the enzyme assay, and verified that inhibition of GCL by GSH did not interfere with this assay. Therefore, this assay of hepatic GCL under optimal conditions could provide a more accurate measurement of this enzyme activity in the crude liver extracts.
Effect of taurine treatment on metabolism of glutathione (GSH) was studied in adult male ICR mice. An acute injection of taurine (250 mg/kg, ip) resulted in a significant decline of hepatic GSH level at t = 6 hr, but plasma GSH level was not altered. The activity of GSH-related enzyme in liver, such as GSH peroxidase, GSSG reductase, GSH S-transferases, ${\gamma}$-glutamylcysteine synthetase or ${\gamma}$-glutamyltranspeptidase, was not affected by taurine at t = 2.5 or 6 hr. Plasma cysteine and cystine levels were elevated rapidly following taurine treatment. Hepatic cysteine level was decreased by taurine, reaching a level approximately 70% of control at t = 4 and 6 hr. In conclusion, the results indicate that an acute dose of taurine decreases hepatic GSH level by reducing the availability of cysteine, an essential substrate for synthesis of this tripeptide in liver. It is also suggested that taurine may decrease the cysteine uptake by competing with this S-amino acid for a non-specific amino acid transporter.
The methabolism and phamacokinetics of a mixed disulfide S-(N, N-diethyldithiocarbamoyl)-N-acetyl-L-cysteine (AC-DDTC) were studied in rats. Two metabolites of AC-DDTC following iv and po administration were indentified in plasma and liver by HPLC and GC, namely N, N-diethyldithiocarbamate (DDTC) and the methyl ester of DDTC (Me-DDTC). AC-DDTC was very unstable in vivo and could not be detected neither in plasma nor in urine. Pharmacokinetic parameters of DDTC following intravenous administration of AC-DDTC (20 mg/kg) were calculated. DDTC has a low affinity to rat tissue and the body clearance was $9.0{\pm}3.4mkl/mim/kg$. The mean residence time (MRT) was $11.5{\pm}16.3 min$. After oral administration of 20 mg/kg AC-DDTC, maximal plasma concenttion ($C_{max}$) was $3.8{\pm}0.2 nmol/ml$ and the bioavailability was 7.04%. $C_{max}$ for DDTC at a dose of 120 mg/kg. AC-DDTC was $40.1{\pm}2.2 nmol/ml$. ART was $47.1{\pm}2.8min$.at a dose of 20 mg/kg and $110.5{\pm}6.0 min$ at 120 mg/kg.
Kim, Min-Gab;Su'udi, Mukhamad;Park, Sang-Ryeol;Hwang, Duk-Ju;Bae, Shin-Chul
Journal of Life Science
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v.20
no.12
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pp.1777-1783
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2010
Plants generate reactive oxygen species (ROS) as a by-product of normal aerobic metabolism or when exposed to a variety of stress conditions, which can cause widespread damage to biological macromolecules. To protect themselves from oxidative stress, plant cells are equipped with a wide range of antioxidant proteins. However, the detailed reaction mechanisms of these are still unknown. Peroxiredoxins (Prxs) are ubiquitous thiol-containing antioxidants that reduce hydrogen peroxide with an N-terminal cysteine. The active-site cysteine of peroxiredoxins is selectively oxidized to cysteine sulfinic acid during catalysis, which leads to inactivation of peroxidase activity. This oxidation was thought to be irreversible. Recently identified small protein sulphiredoxin (Srx1), which is conserved in higher eukaryotes, reduces cysteine.sulphinic acid in yeast peroxiredoxin. Srx1 is highly induced by $H_2O_2$-treatment and the deletion of its gene causes decreased yeast tolerance to $H_2O_2$, which suggest its involvement in the metabolism of oxidants. Moreover, Srx1 is required for heat shock and oxidative stress induced functional, as well as conformational switch of yeast cytosolic peroxiredoxins. This change enhances protein stability and peroxidase activity, indicating that Srx1 plays a crucial role in peroxiredoxin stability and its regulation mechanism. Thus, the understanding of the molecular basis of Srx1 and its regulation is critical for revealing the mechanism of peroxiredoxin action. We postulate here that Srx1 is involved in dealing with oxidative stress via controlling peroxiredoxin recycling in Arabidopsis. This review article thus will be describing the functions of Prxs and Srx in Arabidopsis thaliana. There will be a special focus on the possible role of Srx1 in interacting with and reducing hyperoxidized Cys-sulphenic acid of Prxs.
Sohn Ho- Yong;Kum Eun-Joo;Kwon Gi-Seok;Jin Ingnyol;Kuriyama Hiroshi
Journal of Microbiology
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v.43
no.4
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pp.375-380
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2005
Autonomous ultradian metabolic oscillation (T$\simeq$50 min) was detected in an aerobic chemostat culture of Saccharomyces cerevisiae. A pulse injection of GSH (a reduced form of glutathione) into the culture induced a perturbation in metabolic oscillation, with respiratory inhibition caused by $H_2S$ burst pro-duction. As the production of $H_2S$ in the culture was controlled by different amino acids, we attempted to characterize the effects of GSH on amino acid metabolism, particularly with regard to branched chain and sulfur-containing amino acids. During stable metabolic oscillation, concentrations of intra-cellular glutamate, aspartate, threonine, valine, leucine, isoleucine, and cysteine were observed to oscil-late with the same periods of dissolved $O_2$ oscillation, although the oscillation amplitudes and maximal phases were shown to differ. The methionine concentration was stably maintained at 0.05 mM. When GSH (100 $\mu$M) was injected into the culture, cellular levels of branched chain amino acids increased dramatically with continuous $H_2S$production, whereas the cysteine and methionine concentrations were noticeably reduced. These results indicate that GSH-dependent perturbation occurs as the result of the promotion of branched chain amino acid synthesis and an attenuation of cysteine and methionine synthesis, both of which activate the generation of $H_2S$. In a low sulfate medium containing 2.5 mM sulfate, the GSH injections did not result in perturbations of dissolved $O_2$ NAD(P)H redox oscillations without burst $H_2S$ production. This suggests that GSH-dependent perturbation is intimately linked with the metabolism of branched-chain amino acids and $H_2S$ generation, rather than with direct GSH-GSSG redox control.
Ferroptosis is a type of programmed cell death distinct from apoptosis or necroptosis. Ferroptosis is well characterized by an iron-dependent accumulation of lipid peroxides and disruption of cellular membrane integrity. Many metabolic alterations can prevent or accelerate ferroptosis induction. Recent advances in analytical techniques of mass spectrometry have allowed high-throughput analysis of metabolites known to be critical for understanding ferroptosis regulatory metabolism. In this review, we introduce mass spectrometry-based analytical methods contributing to recent discovery of various metabolic pathways regulating ferroptosis, focusing on cysteine metabolism, antioxidant metabolism, and poly-unsaturated fatty acid metabolism.
Liu Kwang-Hyeon;Moon Joon-Kwan;Seo Jong-Su;Park Byeoung-Soo;Koo Suk-Jin;Lee Hye-Suk;Kim Jeong-Han
Toxicological Research
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v.22
no.1
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pp.1-8
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2006
The primary metabolism of pyribenzoxim was studied in rat liver microsomes in order to identify the cytochrome P450 (CYP) isoform(s) and esterases involved in the metabolism of pyribenzoxim. Chemical inhibition using CYP isoform-selective inhibitors such as ${\alpha}$-naphthoflavone, tolbutamide, quinine, chlorzoxazone, troleandomycin, and undecynoic acid indicated that CYP1A and CYP2D are responsible for the oxidative metabolism of pyribenzoxim. And inhibitory studies using eserine, bis-nitrophenol phosphate, dibucaine, and mercuric chloride indicated pyribenzoxim hydrolysis involved in microsomal carboxylesterases containing an SH group (cysteine) at the active center.
Ovarian cancer is the most lethal gynecological malignancy, and specific biomarkers are important needed to improve diagnosis, prognosis, and to forecast and monitor treatment efficiency. There are a lot of pathological factors, including reactive oxygen species (ROS), involved in the process of cancer initiation and progression. The oxidative modification of proteins by ROS is implicated in the etiology or progression of disorders and diseases. In this study, a labeling experiment with the thiol-modifying reagent biotinylated iodoacetamide (BIAM) revealed that a variety of proteins were differentially oxidized between normal and tumor tissues of ovarian cancer patients. To identify cysteine oxidation-sensitive proteins in ovarian cancer patients, we performed comparative analysis by nano-UPLC-$MS^E$ shotgun proteomics. We found oxidation-sensitive 22 proteins from 41 peptides containing cysteine oxidation. Using Ingenuity program, these proteins identified were established with canonical network related to cytoskeletal network, cellular organization and maintenance, and metabolism. Among oxidation-sensitive proteins, the modification pattern of Collagen alpha-1(VI) chain (COL6A1) was firstly confirmed between normal and tumor tissues of patients by 2-DE western blotting. This result suggested that COL6A1 might have cysteine oxidative modification in tumor tissue of ovarian cancer patients.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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