In order to darify the neuroprotective effect of Gamibojungikki-tang(GBJIKT) water extract on cultured mouse spinal sensory neuron damaged by glucose Oxidase (GO), NR (Neutral Red) assay and LDH (Lactate Dehydrogenase) activity assay were carried out after the cultured mouse spinal sensory neuron were preincubated with various concentrations of GBJIKT water extract for 3 hours prior to exposure of GO. Cell viability of cultured mouse spinal sensory neurons exposed to various concentrations of GO for 8 hours was decreased in a dose-dependent manner. NR/sub 50/ values were 50 mU/ml GO. Cultured mouse spinal sensory neurons in the medium containing various concentration of GO for 8 hours showed increasing of LDH activity. We knew that GO was toxic on cultured spinal sensory neurons. Pretreatment of GBJIKT water extract for 3 hours following GO prevented the GO-induced neurotoxicity such as increasing of LDH activity. These results suggest that GO shows toxic effect on cultured spinal sensory neurons and GBJIKT water extract is highly effective in proecting the neurotoxicity induced by GO.
The present study was carried out to examine the effect of oviduct epithelium and its conditioned medium on e development of early bovine embryos in vitro. Oocytes obtained from ovarian follicles of slaughtered cows were cultured in TCM199 with 10% fetal calf serum for 22-24hrs and then fertillzed in vitro using frozen-thawed semen treated with BO-caffein, BO-BSA(20mM heparin added). Oviduct epithelium was collected in each stage of the estrus cycle and conditioned medium was the medium in which oviduct epithelium in early luteal stage was cultured. In vitro fertilized bovine embryos of 1~2 cell were co-cultured with oviduct epithelium from different estrus cycles, cultured in conditioned medium, and cultured in rabbit oviduct. The cleavage rates of in vitro fertilized early bovine embryos co-cultured with oviduct epithelial cell from early luteal, luteal and follicular phase of estrus cycle(67.2~70.8%) and cultured in conditioned medium(56.7%) were significantly(p<0.05) higher than that of the control(44.2%) The rate of development to morula or blastocyst stage in oviduct epithelial cell co-culture(15.3~32.5%) from three phase of estrus cycles and conditioned medium(14.5%) were significantly(p<0.05) higher than that of the control(5.2%). The oviduct epithelial cell from early luteal phase gave a significantly( p<0.05) higher rate of development to morula or blastocyst stage than both luteal and follicular phase. The results of in vivo culture in rabbit oviduct of early bovine embryos were 52.1% for the cleavage rate and 26.7% for the rate of development to morula or blastocyst stage.
This study was performed to enhance contents of low molecular weight ginsenoside Rh2 and Rg3 using an ultra high pressure and steaming process in wild cultured-Root in wild ginseng. For selective increase in contents of Rg3 and Rh2 in cultured wild ginseng roots, an ultra high extraction was applied at 500MPa for 20 min which was followed by steaming process at $90^{\circ}C$ for 12 hr. It was revealed that contents of ginsenosides, Rb1, Rb2, Rc and Rd, were decreased with the complex process described above, whereas contents of ginsenoside Rh2 and Rg3 were increased up to 4.918 mg/g and 6.115 mg/g, respectively. In addition, concentration of benzo[${\alpha}$]pyrene in extracts of the cultured wild ginseng roots treated by the complex process was 0.64 ppm but it was 0.78 ppm when it was treated with the steaming process. From the results, it was strongly suggested that low molecular weight ginsenosides, Rh2 and Rg3, are converted from Rb1, Rb2, Rc, and Rd which are easily broken down by an ultra high pressure and steaming process. This results indicate that an ultra high pressure and steaming process can selectively increase in contents of Rg3 and Rh2 in cultured wild ginseng roots and this process might enhance the utilization and values of cultured wild ginseng roots.
Background: Ganoderma lucidum cultured on hulled barley was investigated as a potential natural source of antioxidants and anti-inflammatory agents. Methods and Results: The yields from Ganoderma lucidum cultured on hulled barley water and ethanol extract were 17.69% and 25.77%, respectively. The antioxidant activity of Ganoderma lucidum cultured on hulled barley extracts was confirmed by various methods including assayss of 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH), 2,2-azino-bis-(3-ethylbenzo thiazoline-6-sulfonic acid) (ABTS), nitrite radical scavenging, and $Fe^{3+}$ to $Fe^{2+}$ reducing power activity. The ethanol extract of Ganoderma lucidum cultured on hulled barley showed improved DPPH, ABTS and nitrite radical scavenging activity compared with the water extract. After treatment of RAW264.7 cells with Ganoderma lucidum cultured on hulled barley ethanol extracts, the cell viability compared with the control was 92.82%, even at a concentration of $3,000{\mu}g/m{\ell}$. The ethanol extract inhibited reactive oxygen species (ROS) generation in RAW264.7 cells stimulated with $H_2O_2$, even at low concentrations. In addition, the ethanol extract showed an inhibitory effects on the production of lipopolysaccharide-induced nitric oxide (NO) in RAW264.7 cells. Conclusions: This study suggests that the extract of Ganoderma lucidum cultured on hulled barley is a potential source of natural antioxidants and anti-inflammatory agents.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제26권6호
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pp.565-580
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2000
This study was designed to evaluate the influence of cultured epidermal tissue graft and the administration of transforming growth factor(TGF)-${\beta}_3$ on maxillary growth in surgically created palatal defects. A total of 155 rats were divided into 2 groups according to surgical timing : postnatal 2 weeks(n=95), 4 weeks(n=40) and control(unoperated) group(n=20). The postnatal 2-week surgical group was subdivided into 3 groups according to repair methods: conventional surgery(Von Langenbeck technique)group(n=23); cultured tissue graft group(n=25); and full thickness skin graft group(n=25). Additionally, recombinant human TGF-${\beta}_3$ was administered(30ng or 150ng) on collagen matrix in surgically created palatal defects during surgery(9 conventional surgeries, 9 cultured tissue grafts) in 2-week-old rats. The results showed that all types of surgical treatment decreased maxillary growth compared with the control(unoperated) group(p<0.0001). On the other hand, the tissue graft group, whether cultured tissue or grafted skin, contributed to increased maxillary growth(p<0.0001).And exogenous TGF-${\beta}_3$ might play a role in connective tissue proliferation and new bone generation during wound healing on palatal defects. Our results suggest that grafting cultured epidermis with collagen matrix decreases the scar tension on maxillary growth more than conventional palatal surgery does. Therefore, exogenous TGF-${\beta}_3$ may contribute to accelerate wound healing on palatal defects.
To evaluate the effect of antioxidant on the cytotoxicity induced by oxidative stress of reactive oxygen species (ROS) in cultured human skin melanocytes, colorimeric assay of XTT and tyrosinase activity assay were adopted after human skin melanocytes were preincubated for 2 hours in the media containing various concentrations of superoxide dismutase (SOD) before the treatment of hydrogen peroxide. Light microscopic study was carried out in same cultures. The results of this study were as follows 1. Cell viability of human skin melanocytes was significantly decreased by 30 and $40{\mu}M$ of hydrogen peroxide($H_2O_2$), respectively. 2. XTT50 was determined at $30{\mu}M$ after human skin melanocytes were treated with $10{\sim}40{\mu}M$ of hydrogen peroxide for 6 hours. 3. The cell viability of cultured human skin melanocytes pretreated with SOD was increased than that of cultured human skin melanocytes treated with $H_2O_2$ dose-dependently. 4. In tyrosinase activity of human skin melanocytes, the cell treated with SOD showed brown stain compared with $H_2O_2$ treated cells, dark stain. 5. In light microscopy, cultured human skin melanocytes exposed to $H_2O_2$ showed morphological changes such as the decreased cell number and cytoplasmic processes, compared with control. 6. In light microscopy, cultured human skin melanocytes pretreated with SOD showed the increase of cell number and cytoplasmic processes compared with $H_2O_2-treated$ group. From these results, it is suggested that oxidative stress of ROS such as $H_2O_2$ has cytotoxicity by showing the decreased cell viability, the increased tyrosinase activity and mophological changes of the decreased cell number and cytoplasmic processes. While, antioxidant like SOD was effective in the prevention of oxidative stress-mediated cytotoxicity by the increased cell viability, decreased tyrosinase activity and the protection of degenerative morphological changes in cultured human skin melanocytes.
In order to clarify the neuroprotective effect of Cornu Saigae Tataricae(CST) water extract on cultured mouse spinal motor neuron damaged by hydrogen peroxide (H₂O₂), MTT [3-(4,5-dimethylthiazole-2-yl)- 2,5-diphenyltetrazolium bromide] assay, LDH (Lactate Dehydrogenase) activity assay and SRB (Sulforhodamine B) assay were carried out after the cultured mouse spinal motor neuron were preincubated with various concentrations of CST water extract for 3 hours prior to exposure of hydrogen peroxide Cell viability of cultured mouse spinal motor neurons exposed to various concentrations of hydrogen peroxide for 6 hours was decreased in a dose-dependent manner. MTT50 values were 40 uM hydrogen peroxide. Cultured mouse spinal motor neurons in the medium containing various concentration of hydrogen peroxide for 6 hours showed increasing of LDH activity and decreasing of total protein synthesis. We know that hydrogen peroxide was toxic on cultured spinal motor neurons. Pretreatment of CST water extract for 3 hours following hydrogen peroxide prevented the hydrogen peroxide-induced neurotoxicity such as increasing of LDH activity and decreasing of total protein synthesis. These results suggest that hydrogen peroxide shows toxic effect on cultured spinal motor neurons and CST water extract is highly effective in protecting the neurotoxicity induced by hydrogen peroxide.
To study the effects of Ramulus et Uncus Uncariae (REUU) on oxygen free radical-mediated damage by hydrogen peroxide $(H_{2}O_{2})$ on cultured spinal sensory neurons, in vitro assays such as MTT assay, NR assay, neurofilament enzymeimmuno assay (EIA), sulforhodamine B (SRB) assay, assay for lactate dehydrogenase (LDH) activity and assay for lipid peroxidation were used in cultured spinal dorsal root ganglion neurons derived from mice, Spinal dorsal root ganglion neurons were cultured in media containing various concentrations of $H_{2}O_{2}$ for 5 hours, after which the neurotoxic effect of $H_{2}O_{2}$ was measured by in vitro assay. The protective effect of the herb extract, Ramulus et Uncus Uncariae (REUU) against H2O2-induced neurotoxicity was also examined. The results are as follows. 1. In NR assay and MTT assay, $H_{2}O_{2}$ significantly decreased the cell viability of cultured mouse spinal dorsal root ganglion neurons according to exposure concentration in these cultures. An additional time course study was done on these cultures. 2. Cultured spinal dorsal root ganglion neurons which were exposed to various concentrations of $H_{2}O_{2}$ showed a quantitative decrease of neuronal cells by EIA and of total protein by sulforhodamine B (SRB) assay, while they showed an increase of both lipid peroxidation and LDH activity. 3. The effect of Ramulus et Uncus Uncariae (REUU) on $H_{2}O_{2}$ induced neurotoxicity showed a quantitative increase in both neurofilament and total protein, but showed a decrease of lipid peroxidation and LDH activity. These results suggest that $H_{2}O_{2}$ has a neurotoxic effect on cultured spinal dorsal root ganglion neurons from mice and that the herb extract, Ramulus et Uncus Uncariae (REUU), was very effective in protecting $H_{2}O_{2}$ induced neurotoxicity by decreasing lipid peroxidation and LDH activity.
Objectives and Methods : To evaluate the mechanism of oxidative damage by xanthine oxydase(XO) and hypoxanthine(HX)-induced oxygen radicals, MTT assay and NR assay were carried out after the cultured mouse spinal sensory neurons were preincubated for 4 hours with various concentrations of XO/HX. And the amount of total protein. neurofilament EIA. lipid peroxidation and LDH activity were measured, to evaluate the protective effect of Herbar Chelidonii(HC) water extract on cultured spinal sensory neurons damaged by XO/HX. after the cultured mouse spinal sensory neurons were preincubated with various concentrations of HC water extract for 3 hours prior to exposure of XO/HX. Results : XO/HX decreased significantly the survival rate of the cultured mouse sensory neurons by NR assay and MTT assay In proportion to concentration and exposed time. In proportion to concentration and exposed time on cultured spinal sensory neurons, XO/HX showed the quantitative decrease of neurofilament by EIA. the decrease of total protein amount by SRB assay and the Increase of lipid peroxidation as well as LDH. HC showed the quantitative increase of neurofilament and total protein, but showed the decrease of lipid peroxidation and LDH activity against the neurotoxicity of XO/HX. Conclusions : From the above results, it is concluded that XO/HX have a neurotoxic effect on cultured spinal sensory neurons and that the herbs extract, such as HC, prevent the toxicity of XO/HX effectively in that they decrease lipid peroxidation and LDH activity.
To evaluated the usefulness of cultured human fibroblast for insulin receptor assay, the authors cultured fibroblast from biopsied normal adult female eyelid skin and assayed the insulin receptor with radioreceptor assay method. From the data obtained, percent of labeled insulin bound, numbers of insulin binding sites, affinity constants(Ka) and affinity of the empty sites(Ke) were calculated. The results were as follow; 1) The percent radioactivity bound of cultured fibroblast reached plateau at 4 hours $15^{\circ}C$ incubation. 2) The scatchard plot of insulin binding to cultured human fibroblast was curvilinear and the affinity to receptor was decreased with increased receptor occupancy. 3) The numbers of high affinity, low affinity and total insulin receptor of cultured fibroblasts were 852, 24,800 and 25,652 sites per cell. 4) High and low affinity constants of cultured fibroblasts were $3.4\times^{10}M^{-1},\;and\;1.08\times10^8M^{-1}$, and the affinity of empty site was $5.0\times10^8M^{-1}$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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