A strain of Cucumber mosaic virus(CMV) was isolated newly from sweet pepper(Capsicum annuum var. angulosum) showing necrosis with large necrotic spots on fruits and vein banding with malformation on leaf at Cheongdo area in Gyeongsangbukdo. The new strain was designated as a CMV-NP and the shape of virus particles was isometric of 26 nm in diameter from the sweet pepper fruit by Dip method. The strain of CMV-NP was identified genetically by VC/RT-PCR. CMV-NP could infect systemically on the 9 indicator plants including Cucumis sativus, but it could infect locally on Chenopodim amaranticolor and C. quinoa. CMV-NP induced the specific symptoms of necrotic rings on the inoculated and the upper leaves of N. rustica and Tetragonia expansa. On Cucumis sativus, the large chlorotic ring and vein chlorosis were produced on the upper leaves. CMV-NP had no virulence on Datura stramonium.
Ye-Yeong Kim;Tae-Seon Park;Ji-Soo Park;Dong-Joo Min;You-Seop Shin;Jin-Sung Hong
Research in Plant Disease
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v.30
no.1
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pp.60-65
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2024
In July 2020, total RNA was extracted from passion fruit (Passiflora edulis) leaves showing virus symptoms such as chlorotic spots and vein banding in Haenam, South Korea. Cucumber mosaic virus (CMV)-HN2 was identified through reverse transcription polymerase chain reaction and sequencing analysis. To confirm the biological characteristics of the CMV infecting passion fruit, 10 indicator plants were inoculated with CMV-HN2, and the results showed a typical CMV symptoms. Phylogenetic analysis based on the amino acid of the coat protein (CP) of CMVs revealed that the CMV passion fruit isolates belonged to subgroup I, among which CMV-HN2 belonged to subgroup IA. Additionally, CMVs isolated from passion fruit in Korea have amino acid sequence variation between the subgroup. Among them, CMV-HN2 had four to eight amino acid differences in CP from other CMV isolates from passion fruit. These results confirm the presence of genetic diversity in the CPs of passion fruit CMV isolates.
A mosaic virus disease of ginger plant was investigated to determine its virus group on the basis of host range, physical and chemical properties, serological behavior and electron-microscopic morphology. The disease gave rise to yellowsih and dark-green mosaic on the leaves in the early stage and stunted all the leaves as well as rhizomes in the late stage. In the field about 43\% of the plants were observed to be diseased The disease was able to be artificially infected to the ginger plants by the sap and transmission as well as to 23 other species of plants which were known to be the CMV susceptible plants by the sap transmission; Chenopodium amaranticolar, Nicotiana tabaccum var. Havana, cow pea, cucumber, tomato,... etc. The dilution end point of the virus ranged $10^{-4}-10^{-5}$ and the thermal inactivation point $65-70^{\circ}C$. Serological test showed a positive reaction by a CMV antiserum. An electron microscopy of the purified virus showed that the virus particles were spherical with a diameter of $28-32m\mu$. Virus particles from the infected tissue were observed to be free or aggregated in the mesophyll tissue of artificially infected tobacco plant. The mosaic disease of ginger plants were conclusively suggested to the CMV group.
The occurrence and relative incidence of viruses including Cucumber mosaic virus (CMV), Zucchini yellow mosaic virus (ZYMV), Papaya rings pot virus (PRSV), and Watermelon mosaic virus (WMV), Cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV), Kyuri green mottle mosaic virus (KGMMV), and Melon necrotic spot virus (MNSV) were surveyed from main melon (Cucumis melo L.) production areas in Jeonnam province during 2000-2002. Virus disease incidences of melon cultivating fields were 0% and 11% in spring and fall 2000; 40%, 2.1%, and 8.8% in spring, summer, and fall 2001; and 6.3 % in spring 2002 in main cultivated areas in Jeonnam province, respectively. Field disease incidences of melon virus infections were 0% and 18.8% in spring and fall 2000; 50%, 38.5%, and 82.6% in spring, summer, and fall 2001; and 47.4% in spring 2002, respectively. Total of 101 melon samples showing typical disease symptoms were collected from 2000 to 2002 and tested for virus infection by RT-PCR. Potyvirus-specific DNA fragments for WMV, ZYMV, and PRSV were amplified from 46, 5, and 4 samples, respectively. MNSV specific DNA fragment was amplified from 18 samples. CMV-specific DNA fragment was detected from only 3 samples.
Cucumber mosaic virus (CMV)-like isolate was collected from Raphanus sativus (cv. Choon-hyang), which showed mosaic symptoms. The isolate was confirmed to a strain of CMV by host responses in Vigna unguiculata, Chenopodium amaranticolor and Gomphrena globosa, by viral genome composition with RT-PCR and PCR-RFLP, and by serological analysis. Symptom developed by the strain of CMV was severe in Nicotiana benthamiana, N. glutinosa, N. tabacum (cv. Samsun, cv. Xanthi), Cucumis melo (cv. Early hanover), Cucumis sativus (cv. White wonder), Capsicum annuum (cv. Chung-yang and cv. Geum-top), but mild symptom was developed in Raphanus sativus (cv. Choon-hyang), Brassica rapa ssp. pekinensis (cv. Bul-Am No. 3), and B. juncea (cv. Daenong Jukgot). Newly isolated strain of CMV could infect diverse crops including Solanaceae, Cucurbitaceae and Brassicaceae. We designated the new strain of CMV as Gn-CMV based on the novel infectivity of Brassicaceae. In double-stranded (ds) RNA analysis, Gn-CMV consisted of 3.3, 3.0, and 2.2 kb genomes likewise other strains of CMV. SDS-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) showed 28 kDa of the CMV coat protein. By restriction enzyme mapping using Cac8I, ClaI and MspI of RT-PCR products indicated that Gn-CMV belongs to CMV subgroup I.
The cDNAs derived from the coat protein (CP) genes of six plant RNA viruses, tobacco mosaic virus-pepper strains (TMV-P) and -ordinary strain (TMV-OM), potato virus Y (PVY), turnip mosaic virus (TuMV), cucumber mosaic virus (CMV) and potato leafroll virus (PLRV), were subcloned into the transcription vector, pSPT18, containing SP6 and T7 promoters. The digoxigenin (DIG)-labeled RNA polymerase after linearlization of the cloned pSPTs with XbaI or SacI, and were tested for their sensitivities for the detection of the six viruses. In slot-blot hybridization, dilution end points for the detection of TMV-P and TMV-OM were 10-4, while those of PVY, TuMV and CMV were 10-3. PLRV was detected at the dilution of 10-2. When each RNA probe was applied for the detection of the viruses in the preparations from the leaf disks (8 mm in diameter, and 12 to 15 mg in weight) of infected natural host plants, TMV-P, TMV-OM and TuMV could be detected from one disk, while PVY from 1 or 2 disks. CMV was detected in the preparation from two disks, and PLRV from three disks. With DIG-labeled RNA probe, PVY was detected at 5 days after inoculation, but with ELISA the virus was detected at 8 days after inoculation to tobacco (Nicotiana tabacum cv. Xanthi nc) plants on which symptoms appeared at 9 days after inoculation. No difference was observed in cross reaction between the RNA probes for the detection of TMV-P and TMV-OM.
Transformation of Fuji apple (Malus domestica 'Fuji') was performed using Agrobacterium tumefaciens harboring a coat protein (CP) gene of Cucumber mosaic virus (CMV). A plasmid DNA containing the virus CP and NPT II genes was introduced into the loaves of apple by th e Agrobacterium - mediated transformation procedure. Regenerated transformants of the apple were obtained by kanamycin resistance conferred by the introduced NPT II gene. PCR analysis showed that 3 out of 20 putatively selected R0 plant lines contain the CMV-CP gene. Nine putative transgenic lines out of 20 lines were investigated with the PCR analysis; 5 regenerants produced a 450 bp DNA band and 3 regenerants showed a 671 bp DNA band for the NPT II and CMV-CP genes, respectively. Southern hybyidization results demonstrate the successful integration of the CMV-CP gene into the genome of the apple. This is the first report on the generation of useful vius resistance source of transgenic apple for molecular breeding program.
The coat protein (CP) gene was cloned from RNA genome of the Cucumber Mosaic Virus strain ABI (CMV-ABI) isolated in Korea. The comparisons of the nucleotide sequence of the cloned CP gene and its deduced amino acid sequences with other CP genes revealed that the CMV-ABI belongs to subgroup I (type I), CMV-ABI developed the typical mosaic symptom in infected plants. Tobacco plants (Samsun and NC82) were transformed by leaf-disc transformation via Agrobacterium, temefaciens LB4404 harboring pVCP, witch CMV-ABI CP gene was inserted into the pBI121, and a number of mature transgenic tobacco plants were developed. Southern and PCR analysis of genomic DNA from the transgenic plants showed that the CP gene was integrated into the genomes of the most of the transgenic plant. Result of the segregation patterns of resistance in T1 seedlings of the plants to kanamycin showed that the transgenic plants containing l,2 and 3 copies of CP gene were50%, 39% and 11% of the total transgenic plants, respectively.
Molecular characterization of Cucumber mosaic virus (CMV) was done by using samples from tomato and cucurbitaceous plants collected from different locations in the northwest region of Iran. After screening by enzyme-linked immunosorbent assay, 91 CMV-infected samples were identified. Biological properties of eight representative isolates were compared with each other revealing two distinct phenotypes on squash and tomato plants. Phylogenetic analyses based on nucleotide sequences of the coat protein (CP), movement protein (MP) and 2b of the new isolates, together with that of previously reported isolates, led to the placement of the Iranian isolates in subgroups IA and IB according to CP and MP genes, but in subgroup IA according to the 2b gene. These data suggest that reassortment may have been a major event in the evolution of CMV in Iran, and that the Iranian isolates are derived from a common recent ancestor that had passed through a bottleneck event.
Extracts of 33 medicinal herbs belonging to 28 different families used as precious resources in the Northeast Asia were tested for their antiviral activities against two major plant viruses. Twenty one methanol extracts from 19 different families were found to have a antiviral activity against tobacco mosaic virus (TMV) and cucumber mosaic virus (CMV) when tested on indicator plants under greenhouse conditions. Most of these extracts have weak activities at the concentration used. But the methanol extracts of Phellinus linteus exhibited potent ($98.7{\pm}1.3%$) antiviral activity against TMV infection and also showed $97.2{\pm}2.2%$ activity against CMV infection. The methanol extracts of the gall of Rhus javanica also showed strong inhibitory efficacy over $98.7{\pm}1.1%$ against TMV or CMV infection. Further research is needed to elucidate the active constituents of these medicinal herbs which may be useful in the development of new and effective antiviral agent against plant viruses.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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