Bovine Carbonic anhydrase (BCA) was immobilized on a submicro-porous membrane through covalent immobilization. The immobilization was conducted on the porous membrane surface with the treatment of polyethyleneimine, glutaraldehyde, and the anhydrase, in sequence. The immobilization was confirmed using X-ray photon spectrometer. The pH values of carbon-dioxide saturated solution with buffer were monitored with respect to time to calculate the catalytic activities of hydration of carbon-dioxide for free and immobilized CA. The catalytic rate constant values for free CA, immobilized CA on polystyrene nanoparticles, and immobilized CA on a porous cellulose acetate membrane were 0.79, 0.67, and 0.56 $s^{-1}$, respectively. Reusability was studied up to 10 cycles of $CO_2$ sequestration. The activity for the CA immobilized on the membrane was kept to 95% after 10 cycles, and comparable to the CA on the nanoparticles. The stabilities for heat and storage were also investigated for the three cases. The results suggested that the CA immobilized the membrane had the least loss rate of the activity compared to the others. From this study, the porous membrane was feasible as a carrier for the CA immobilization in hydration and sequestration of carbon-dioxide.
The present work proposes a simple electrochemical method applicable to any immobilization processes of oxidase using a Clark type oxygen electrode as a base transducer. The present work suggests an optimal immobilization technique among three different methods of glucose oxidase(GOD) onto one side of $37[\mu}$mthick blend membranes, composed o 80% of cellulose triacetate and 20% of polycaprolactone, on the basis of the maximum Michaelis-Menten parameter(Vm) determined by either steady state or transient analyses. The electrode system was made of disk type gold cathode(4mm diameter) and Ag/AgCl anode. One side of the blend membrane was in contact with the cathode surface while the other side was immobilized with GOD either in covalent-bond or cross-linked forms, the latter being covered by $25{\mu}$m thick dialysis membrane of cellulose acetate. The resultant current density was on-line monitored by a potentiostat while glucose level was varied from 1 to 20 mM. The present study shows that direct cross-linking of GOD with glutaraldehyde was mostly preferred for fabrication of glucose sensor, on the basis of resultant kinetic parameters from either steady state or transient analyses.
The dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase from Salmonella enterica was immobilized using covalent binding to cyanogen bromide activated sepharose. The immobilized enzyme was used to produce dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose, a key sugar intermediate that can be used economically to produce diverse classes of unusual sugars appended in various antibiotics. The enzyme was immobilized on the sepharose after activation with cyanogen bromide. The maximum immobilization (80.03%) was achieved after 14 h of coupling. The covalently immobilized enzyme was stable, and an average of 78.4 % conversion was achieved until 120 h of immobilization when it was repeatedly used. Similar conversion was noticed for the first batch using the enzyme entrapped-hydrogel but activity was gradually decreased in the following batches. The production of dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose by using an immobilized enzyme has high potential for commercial application.
MFI structural zeolite (ZSM-5 or Sililcalite) was treated with HF solution to introduce mesoporous channels in the microporous crystals. Inner mesopore size could be controlled from 2.5 to 3.5 nm by changing the concentration of HF solution. The pore structure of HF-treated MFI zeolite was studied by instrumental analysis. The active Co (III) salen complex monomers were successfully anchored non-covalently on the surfaces of mesoporous MFI-type zeolite. These heterogeneous catalysts could be applied in asymmetric ring opening of terminal epoxides by phenol derivatives. It showed very high enantioselectivity and yield up to 95% in the catalytic synthesis of optically active $\alpha$-aryloxy alcohol compounds.
Thiol-ene polymerization is a versatile tool for several applications. Here we report the preparation of epoxide groups containing thiol-ene photocurable polymeric support and the covalent immobilization of ${\alpha}$-amylase onto these polymeric materials. The morphology of the polymeric support was characterized by scanning electron microscopy (SEM), and energy dispersive spectroscopy (EDS) coupled with SEM was used to explore the chemical composition. The polymeric support and the immobilization of the enzyme were characterized by FTIR analysis. SEM-EDS and FTIR results showed that the enzyme was successfully covalently attached to the polymeric support. The immobilization efficiency and enzyme activity of ${\alpha}$-amylase were examined at various pH (5.0-8.0) and temperature ($30-80^{\circ}C$) values. The storage stability and reusability of immobilized ${\alpha}$-amylase were investigated. The immobilization yield was $276{\pm}1.6$ mg per gram of polymeric support. Enzyme assays demonstrated that the immobilized enzyme exhibited better thermostability than the free one. The storage stability and reusability were improved by the immobilization on this enzyme support. Free enzyme lost its activity completely within 15 days. On the other hand, the immobilized enzyme retained 86.7% of its activity after 30 days. These results confirm that ${\alpha}$-amylase was successfully immobilized and gained a more stable character compared with the free one.
Laccase activity is influenced by copper (Cu) as an inducer. In this study, laccase was immobilized on Cu and Cu-magnetic (Cu/Fe2O4) nanoparticles (NPs) to improve enzyme stability and potential applications. The Cu/Fe2O4 NPs functionally activated by 3-aminopropyltriethoxysilane and glutaraldehyde exhibited an immobilization yield and relative activity (RA) of 93.1 and 140%, respectively. Under optimized conditions, Cu/Fe2O4 NPs showed high loading of laccase up to 285 mg/g of support and maximum RA of 140% at a pH 5.0 after 24 h of incubation (4℃). Immobilized laccase, as Cu/Fe2O4-laccase, had a higher optimum pH (4.0) and temperature (45℃) than those of a free enzyme. The pH and temperature profiles were significantly improved through immobilization. Cu/Fe2O4-laccase exhibited 25-fold higher thermal stability at 65℃ and retained residual activity of 91.8% after 10 cycles of reuse. The degradation of bisphenols was 3.9-fold higher with Cu/Fe2O4-laccase than that with the free enzyme. To the best of our knowledge, Rhus vernicifera laccase immobilization on Cu or Cu/Fe2O4 NPs has not yet been reported. This investigation revealed that laccase immobilization on Cu/Fe2O4 NPs is desirable for efficient enzyme loading and high relative activity, with remarkable bisphenol A degradation potential.
In order to reuse inulinase effectively, a method for immobilizing both endo- and exoinulinase to vinylsulfone activated agarose via covalent bond was investigated. The immobilized enzyme preparation had, respectively, 400 U for exoinulinase activity and 80 U for endoinu- Iinase activity per gram gel. A thermal stability by immobilization had increased in the case of exoinulinase. Optimum pHs for two immobilized enzymes were 4.4 to 5.0. Synergistic effect which depends on mixed ratio of two immobilized enzymes was the best when the mixed ratio of endo/exo lay between 0.1 and 0.5, and its activity of the mixed enzyme increased 1.7 times as compared to that of each immobilized enzyme. Inulinase activities of both of the immobilized enzymes did not change during 20 times experimental runs in a batch reactor.
Cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) from Paenibacillus sp. JB-13 was immobilized on various carriers by several immobilization methods such as ionic binding, covalent linkage and ultrafiltration to improve the process performance. The ultrafiltration and covalent linkage with CNBr-activated sepharose 4B were found as the best method for immobilization of CGTase. The ability of CGTase immobilization onto CNBr-activated sepharose 4B was as high as 18,000 units/g resin when the conditions was as follows: contact time 9 hrs at $37^{\circ}C$, pH 6.0, 100 nm and enzyme loading 24,000 units/g resin. The optimum conditions for production of 2-O-$\alpha$-D-Glucopyranosyl L-Ascorbic acid by immobilized CGTase turned out to be: pH 5.0, temperature $37^{\circ}C$, 20% substrate solution containing 8% (w/v) of soluble starch and 12% (w/v) of L-ascorbic acid sodium salt, 100 rpm, far 25 hrs and with 800 units of immobilized CGTase/ml substrate solution. Moreover the CGTase activity could be stably maintained for 8 times of repetitive reactions after removing products by ultrafiltration through YM 10 membrane.
$\beta$-glucosidase derived from Aspergillus niger was immobilized by (1) covalent linkage on chitin and chitosan with glutaraldehyde, (2) adsorption on DEAE-cellulose and Amberite IRA93 after succinylation, and (3) entrapment on alginate and polyacrylamide gels with various cross linking agents. The retention yield of $\beta$-glucosidase immobilized on chitosan was 31.5% and operational stability was 69% after continuous operation at column reactor(5$0^{\circ}C$ at pH 4.8) for 15 days. The retention yield and operational stability were 24.7% and 60% respectively, in adsorption on Amberite IRA 93. On the other hand, the entrapment method by alginate and polyacrylamide gel was identified to be not appropriate due to the continuous elution of inlmobilized $\beta$-glucosidase. Optimum conditions for the immobilization on chitosan were also studied with optimum pH of 4.8 and glutaraldehyde concentration of 0.4%(w/v). The properties and stability of immobilized $\beta$-glucosidase are also investigted. The conversion yield of cellobiose to glucose was also analyzed using the column type enzyme reactor to evaluate the effectiveness of immobilized enzyme.
The glutamate decarboxylase gene (gadB) from Lactobacillus plantarum WCFS1 was cloned and expressed as an N-terminal hexa-histidine-tagged fusion protein in Escherichia coli BL21 (DE3) as the host strain. Purified glutamate decarboxylase (GAD) was immobilized onto porous silica beads by covalent coupling. The pH dependence of activity and stability of the immobilized GAD was significantly altered, when compared to those of the free enzyme. Immobilized GAD was stable in the range of pH 3.5 to 6.0. The resulting packed-bed reactor produced 41.7 g of γ-aminobutyric acid/l·h at 45℃.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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