Yeom, Su-Cheong;Koo, Ok Jae;Park, Chung-Gyu;Lee, Byeong-Chun;Lee, Wang-Jae
Reproductive and Developmental Biology
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제37권1호
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pp.1-8
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2013
In order to investigate genetic stability and gene expression profile after cloning procedure, two groups of cloned pigs were used for swine leukocyte antigen (SLA) gene nucleotide alteration and microarray analyses. Each group was consist of cloned pigs derived from same cell line (n=3 and 4, respectively). Six SLA loci were analyzed for cDNA sequences and protein translations. In total, 16 SLA alleles were identified and there were no evidence of SLA nucleotide alteration. All SLA sequences and protein translations were identical among the each pig in the same group. On the other hand, microarray assay was performed for profiling gene expression of the cloned pigs. In total, 43,603 genes were analyzed and 2,150~4,300 reliably hybridized spots on the each chip were selected for further analysis. Even though the cloned pigs in the same group had identical genetic background, 18.6~47.3% of analyzed genes were differentially expressed in between each cloned pigs. Furthermore, on gene clustering analysis, some cloned pigs showed abnormal physiological phenotypes such as inflammation, cancer or cardiomyopathy. We assumed that individual environmental adaption, sociality and rank in the pen might have induced these different phenotypes. In conclusion, the results of the present study indicate that SLA locus genes appear to be stable following SCNT. However, gene expressions and phenotypes between cloned pigs derived from the same cell line were not identical even under the same rearing conditions.
Cystic echinococcosis (CE) caused by E. granulosus is a serious helminthic zoonosis in humans, livestock and wildlife. Xinjiang is one of high endemic province for CE in China. A total of 55 sheep and cattle livers containing echinococcal cysts were collected from slaughterhouses in Changji and Yining City, northern region of Xinjiang. PCR was employed for cloning 2 gene fragments, 12S rRNA and CO1 for analysis of phylogenetic diversity of E. granulosus. The results showed that all the samples collected were identified as G1 genotype of E. granulosus. Interestingly, YL5 and CJ75 strains were the older branches compared to those strains from France, Argentina, Australia. CO1 gene fragment showed 20 new genotype haploids and 5 new genotype haplogroups (H1-H5) by the analysis of Network 5.0 software, and the YLY17 strain was identified as the most ancestral haplotype. The major haplotypes, such as CJ75 and YL5 strains, showed identical to the isolates from Middle East. The international and domestic trade of livestock might contribute to the dispersal of different haplotypes for E. granulosus evolution.
This study was conducted to develop a method for production of nuclear transplant bovine embryos using in vitro-matured (IVM) oocytes and to examine the effect of different conditions of electrofusion on fusion rate and developmental capacity of donor nucleus transplanted to enucleated oocytes. Eight- to sixteen-cell embryos derived from oocytes matured and fertilized in vitro used as donor blastomeres and IVM oocytes were used as recipient oocytes. Oocytes were enucleated immediately after 23-24 h IVM and then reconstituted with a donor blastomere in two different micromanipulation media. Fusion rate and subsequent development of the reconstituted oocytes was compared under the different electric stimuli and recipient oocyte ages. Success rate of enucleation was significantly higher in TCM-199 medium containing FCS than in DPBS. The high fusion rate(75-94%) and development (6.4-14.8%) to morulae and blastocyst (M + B) were obtained from 0.6-0.75 kV/cm DC voltage, although total cleavage was not different among the electric pulses. Most optimal condition of electric stimulation for fusion and development was 1 DC voltage of 0.75 kV/cm, in which 80.5% of oocytes were fused, 80.0% and 31.7% of which was cleaved and developed to M + B, respectively. No M + B was obtained from 1.2 kV/cm DC voltage regardless of pulse frequency. Recipint oocyte age at electrofusion greatly affected the cleavage and subsequent development to M + B, showing high rate at 40-41 h oocyte maturation. These results suggest that a suitable condition of electrofusion for donor nuclei derived from IVF may be 1-2 DC pulses of 0.7 kV/cm for $70{\mu}sec$ and that processing of a transplanted nucleus in IVM oocytes may be affected by maturation age of recipient oocytes.
Jiang, Ming Feng;Hu, Ming Jun;Ren, Hong Hui;Wang, Li
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제28권12호
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pp.1774-1783
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2015
Milk lysozyme is the ubiquitous enzyme in milk of mammals. In this study, the cDNA sequence of a new chicken-type (c-type) milk lysozyme gene (YML), was cloned from yak mammary gland tissue. A 444 bp open reading frames, which encodes 148 amino acids (16.54 kDa) with a signal peptide of 18 amino acids, was sequenced. Further analysis indicated that the nucleic acid and amino acid sequences identities between yak and cow milk lysozyme were 89.04% and 80.41%, respectively. Recombinant yak milk lysozyme (rYML) was produced by Escherichia coli BL21 and Pichia pastoris X33. The highest lysozyme activity was detected for heterologous protein rYML5 (M = 1,864.24 U/mg, SD = 25.75) which was expressed in P. pastoris with expression vector $pPICZ{\alpha}A$ and it clearly inhibited growth of Staphylococcus aureus. Result of the YML gene expression using quantitative polymerase chain reaction showed that the YML gene was up-regulated to maximum at 30 day postpartum, that is, comparatively high YML can be found in initial milk production. The phylogenetic tree indicated that the amino acid sequence was similar to cow kidney lysozyme, which implied that the YML may have diverged from a different ancestor gene such as cow mammary glands. In our study, we suggest that YML be a new c-type lysozyme expressed in yak mammary glands that plays a role as host immunity.
Polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism (PCR-RFLP) and subsequent sub-cloning and sequencing were used in this study to analyze the molecular phylogenetic diversity and spatial distribution of bacterial communities in different spatial locations during the cooling stage of composted swine manure. Total microbial DNA was extracted, and bacterial near full-length 16S rRNA genes were subsequently amplified, cloned, RFLP-screened, and sequenced. A total of 420 positive clones were classified by RFLP and near-full-length 16S rDNA sequences. Approximately 48 operational taxonomic units (OTUs) were found among 139 positive clones from the superstratum sample; 26 among 149 were from the middle-level sample and 35 among 132 were from the substrate sample. Thermobifida fusca was common in the superstratum layer of the pile. Some Bacillus spp. were remarkable in the middle-level layer, and Clostridium sp. was dominant in the substrate layer. Among 109 OTUs, 99 displayed homology with those in the GenBank database. Ten OTUs were not closely related to any known species. The superstratum sample had the highest microbial diversity, and different and distinct bacterial communities were detected in the three different layers. This study demonstrated the spatial characteristics of the microbial community distribution in the cooling stage of swine manure compost.
Seo, Heewon;Choi, Yohan;Yu, Inkyu;Shim, Jangsoo;Lee, Chang-Kyu;Hyun, Sang-Hwan;Lee, Eunsong;Ka, Hakhyun
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제26권9호
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pp.1255-1261
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2013
Somatic cell nuclear transfer (SCNT) is a useful tool for animal cloning, but the efficiency of producing viable offspring by SCNT is very low. To improve this efficiency in the production of cloned pigs, it is critical to understand the interactions between uterine function and cloned embryos during implantation. Lysophosphatidic acid (LPA) is a lipid mediator that plays an important role in the establishment of pregnancy in pigs; however, LPA production in the uterine endometrium of pigs carrying SCNT-cloned conceptuses has not been determined. Therefore, we investigated expression of ENPP2, an LPA-generating enzyme, in the uterine endometrium of gilts with conceptuses derived from SCNT during the implantation period. Uterine endometrial tissue and uterine flushing were obtained from gilts carrying SCNT-derived conceptuses and from gilts carrying conceptuses resulting from natural mating on d 12 of pregnancy. Our results demonstrated no difference in the level of ENPP2 mRNA expression in the uterine endometrium between gilts carrying SCNT-derived conceptuses and gilts carrying naturally-conceived conceptuses, but secretion of ENPP2 protein into the uterine lumen did decrease significantly in pigs with SCNT-derived conceptuses. These results indicate that expression and secretion of ENPP2, which are critical for appropriate LPA production and successful pregnancy, are dysregulated in the uterine endometrium of pigs carrying SCNT-derived conceptuses.
형질 전환동물의 유선을 이용한 단백질의 생산이 보편화되고 있지만 원하는 단백질이 만들어지기 까지 많은 시간과 노력이 필요하며 기술적인 어려움이 항시 따른다. 그래서 보다 쉽게 재조합된 유전자의 발현 정도를 시험하는 in vitro에서의 시험방법의 개발은 중요한 의미가 있다고 하겠다. 따라서 본 연구에서는 인간의 유방암을 가진 환자의 유선에서 유래된 MCF7 cell line을 이용하여 유선 특징의 유전자 발현을 위한 세포 배양 모델을 개발하고자 하였다. 우선 소의 카제인의 cDNA를 MMTV-LTR의 통제하에 clone하였으며, 이것을 CaPO4의 침전법으로 MCF7 cell에 transfection 시킨 다음, HAT 배양액으로 선발하였으며, dexamethasone으로 유도시키고, 발현되는 정도를 면역 항체를 이용하여 분석하였다. 선발된 세포는 dexamethasone에 의하여 MMTV promoter가 유도되는 것을 확인할 수 있었다. 따라서 MCF7 cell과 같이 다양한 steroid receptor를 가지고 있는 세포는 유선 특정의 유전자 발현을 위한 세포 배양 모델에 유용하게 사용이 될 수 있을 것이다.
본 연구에서는 zebrafish에 인간의 KCNE1 유전자가 삽입된 형광단백질 vector를 microinjection하고, 그 발현 여부를 확인하고자 하였다. 먼저 양 말단에 제한효소(EcoRΙ, BamHΙ) site를 넣어 제작한 primer들로 genomic DNA에서 KCNE1 유전자를 분리하였다. 그 결과는 약 402 bp 크기의 DNA band였고 이 PCR 산물을 형광단백질 vector인 pPB-CMVp-EF1-GreenPuro 속에 클로닝하여 pPB-CMVp-hKCNE1-EF1-GreenPuro plasmid를 제작하였다. 이렇게 준비된 형광 vector를 zebrafish 수정란에 microinjection하였고, 부화된 치어에서 RT-PCR과 DNA sequencing을 통해 GFP 및 hKCNE1의 발현을 최종 확인하였다. 본 연구는 향후 QT 연장증후군(LQTs)에 대한 동물 모델로써 신경자극 전도, 유전자 치료, 유용 유전자 클로닝을 위한 기술 개발에 응용될 수 있을 것으로 기대된다.
Follicle-stimulating hormone (FSH) is a pituitary glycoprotein hormone that is encoded by separate alpha- and betasubunit genes. It plays a key role in stimulating and regulating ovarian follicular development and egg production in chicken. FSH signal transduction is mediated by the FSH receptor (FSHR) that exclusively interacts with the beta-subunit of FSH, but characterization of prokaryotic expression of the FSHb gene and its effect on the expression of the FSHR gene in local chickens have received very little attention. In the current study, the cDNA fragment of the FSHb gene from Dagu chicken was amplified using reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR), and inserted into the pET-28a (+) vector to construct the pET-28a-FSHb plasmid. After expression of the plasmid in E. coli BL21 (DE3) under inducing conditions, the recombination protein, $FSH{\beta}$ subunit, was purified and injected into the experimental hens and the effect on the mRNA expression levels of the FSHR gene was investigated. Sequence comparison showed that the coding region of the FSHb gene in the local chicken shared 99%-100% homology to published nucleotides in chickens; only one synonymous nucleotide substitution was detected in the region. The encoded amino acids were completely identical with the reported sequence, which confirmed that the sequences of the chicken FSHb gene and the peptides of the $FSH{\beta}$ subunit are highly conserved. This may be due to the critical role of the normal function of the FSHb gene in hormonal specificity and regulation of reproduction. The results of gene expression revealed that a recombinant protein with a molecular weight of about 19 kDa was efficiently expressed and it was identified by Western blotting analysis. After administration of the purified $FSH{\beta}$ protein, significantly higher expression levels were demonstrated in uterus, ovary and oviduct samples (p<0.05). These observations suggested that the expressed $FSH{\beta}$ protein possesses biological activity, and has a potential role in regulation of reproductive physiology in chickens.
Kim, Sung Chan;Kang, Seung Ha;Choi, Eun Young;Hong, Yeon Hee;Bok, Jin Duck;Kim, Jae Yeong;Lee, Sang Suk;Choi, Yun Jaie;Choi, In Soon;Cho, Kwang Keun
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제29권1호
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pp.126-133
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2016
A gene from Actinomyces sp. Korean native goat (KNG) 40 that encodes an endo-${\beta}$-1,4-glucanase, EG1, was cloned and expressed in Escherichia coli (E. coli) $DH5{\alpha}$. Recombinant plasmid DNA from a positive clone with a 3.2 kb insert hydrolyzing carboxyl methyl-cellulose (CMC) was designated as pDS3. The entire nucleotide sequence was determined, and an open-reading frame (ORF) was deduced. The ORF encodes a polypeptide of 684 amino acids. The recombinant EG1 produced in E. coli $DH5{\alpha}$ harboring pDS3 was purified in one step using affinity chromatography on crystalline cellulose and characterized. Sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis/zymogram analysis of the purified enzyme revealed two protein bands of 57.1 and 54.1 kDa. The amino terminal sequences of these two bands matched those of the deduced ones, starting from residue 166 and 208, respectively. Putative signal sequences, a Shine.Dalgarno-type ribosomal binding site, and promoter sequences related to the consensus sequences were deduced. EG1 has a typical tripartite structure of cellulase, a catalytic domain, a serine-rich linker region, and a cellulose-binding domain. The optimal temperature for the activity of the purified enzyme was $55^{\circ}C$, but it retained over 90% of maximum activity in a broad temperature range ($40^{\circ}C$ to $60^{\circ}C$). The optimal pH for the enzyme activity was 6.0. Kinetic parameters, $K_m$ and $V_{max}$ of rEG1 were 0.39% CMC and 143 U/mg, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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