The 3' region of Potato virus X (PVX) has the 74 nt 3'-nontranslated region (NTR) that is conserved among all potexviruses and contains several cis-acting elements for minus-strand and plus-strand RNA accumulation. Three stem-loop structures (SL1-SL3), especially formation of SL3 and U-rich sequence of SL2, and near upstream elements in the 3' NTR were previously demonstrated as important cis-acting elements. To Investigate the binding of these cis-acting elements within 3' end with host protein, we used the electrophoretic mobility shift assays (EMSA) and UV-cross linking analysis. The EMSA with cellular extracts from tobacco and RNA transcripts corresponding to the 150 nt of the 3' end of PVX RNA showed that the 3' end of PVX formed complexes with cellular proteins. The specificity of protein binding was confirmed through competition assay by using with 50-fold excess of specific and non-specific probes. We also conducted EMSA with RNAs containing various mutants on those cis-acting elements (${\Delta}10$10, SL3B, SL2A and ${\Delta}21$; J Mol Biol 326, 701-720) required for efficient PVX RNA accumulation. These analyses supported that these cis-acting elements are required for interaction with host protein(s). UV-cross linking analysis revealed that at least three major host proteins of about 28, 32, and 42 kDa in mass bound to these cis-elements. These results indicate that cis-acting elements from 3' end which are important for minus and plus-strand RNA accumulation are also required for host protein binding.
In a signal transduction network, from the perception of stress signals to stress-responsive gene ex- pression, binding of various transcription factors to cis-acting elements in stress-responsive promoters coordinate the adaptation of plants to abiotic stresses. Among the AP2/ERF transcription factor family genes, group VII ERF genes, such as RAP2.12, RAP2.2, RAP2.3, AtERF73/HRE1, and AtERF71/ HRE2, are known to be involved in the response to hypoxia stress in Arabidopsis. In this study, we dissected the HRE1 promoter to identify hypoxia-responsive region(s). The 1,000 bp upstream promoter region of HRE1 showed increased promoter activity in Arabidopsis protoplasts and transgenic plants under hypoxia conditions. Analysis of the promoter deletion series of HRE1, including 1,000 bp, 800 bp, 600 bp, 400 bp, 200 bp, 100 bp, and 50 bp upstream promoter regions, using firefly luciferase and GUS as reporter genes indicated that the -200 to -100 region of the HRE1 promoter is responsible for the transcriptional activation of HRE1 in response to hypoxia. In addition, we identified two putative hypoxia-responsive cis-acting elements, the ERF-binding site and DOF-binding site, in the -200 to -100 region of the HRE1 promoter, suggesting that the expression of HRE1 might be regulated via the ERF transcription factor(s) and/or DOF transcription factor(s). Collectively, our results suggest that HRE1 contains hypoxia-responsive cis-acting elements in the -200 to -100 region of its promoter.
Kim, Kihwan;Kim, Byeonggyu;Shin, Juhyung;Kim, Won-Chan
Journal of Applied Biological Chemistry
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v.64
no.1
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pp.39-48
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2021
Droughts are one of the abiotic stresses that hinders the growth and productivity of crop plants. Coping with abiotic stress is necessary to understand the molecular regulatory networks that makes plants respond to adverse environmental conditions. In our experiment to find a combination that can cope with abiotic stress (respond to drought), we screened 5 stress-inducible promoters that are expressed only under stress conditions. This founded 36 cis-elements in stress-inducible promoters. With the result we designed 2 synthetic promoters (BL1, BL2) for fine-controlled regulation by assembling cis-elements from the native promoters, which are expressed only under stress caused by droughts. Analysis of the transgenic plant (BL1-GUS, BL2-GUS) showed that the synthetic promoters increased the expression of β-glucuronidase (GUS) in transgenic plants under desiccation. Also in the transient activation assay demonstrated that synthetic promoters induced the co-transformation of effector DREB1A and DREB2C. These results expect that the synthetic promoter with a combination of drought-specific elements can be used to respond to various abiotic stress and is resistant to stress without causing growth retardation.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.14-14
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2003
Potato virus X (PVX), the type member of Potexvirus genus, is a flexuous rod-shaped virus containing a single-stranded (+) RNA. Infection by PVX produces genomic plus- and minus-strand RNAs and two major subgenomic RNAs (sgRNAs). To understand the mechanism for PVX replication, we are studying the cis- and/or trans-acting elements required for RNA replication. Previous studies have shown that the conserved sequences located upstream of two major sgRNAs, as well as elements in the 5' non-translated region (NTR) affect accumulation of genomic and sg RNAs. Complementarity between sequences at the 5' NTR and those located upstream of two major sgRNAs and the binding of host protein(s) to the 5' NTR have shown to be important for PVX RNA replication. The 5 NTR of PVX contains single-stranded AC-rich sequence and stem-loop structure. The potential role(s) of these cis-elements on virus replication, assembly, and their interaction with viral and host protein(s) during virus infection will be discussed based on the data obtained by in vitro binding, in vitro assembly, gel shift mobility assay, host gene expression profiling using various mutants at these regions.
Park, Jong-Pil;Kim, Sin-Kyu;Park, Jae-Young;Ok, Kang-Min;Shim, Il-Wun
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.30
no.4
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pp.853-856
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2009
Highly polycrystalline copper indium diselenide (CuInSe2, CIS) thin films were deposited on glass or ITO glass substrates by two-stage metal organic chemical vapor deposition (MOCVD) at relatively mild conditions, using Cuand In/Se-containing precursors. First, pure Cu thin film was prepared on glass or ITO glass substrates by using a single-source precursor, bis(ethylbutyrylacetate)copper(II) or bis(ethylisobutyrylacetato)copper(II). Second, on the resulting Cu films, tris(N,N-ethylbutyldiselenocarbamato)indium(III) was treated to produce CuInSe2 films by MOCVD method at 400 ${^{\circ}C}$. These precursors are very stable in ambient conditions. In our process, it was quite easy to obtain high quality CIS thin films with less impurities and uniform thickness. Also, it was found that it is easy to control the stoichiometric ratio of relevant elements on demands, leading to Cu or In rich CIS thin films. These CIS films were analyzed by XRD, SEM, EDX, and Near-IR spectroscopy. The optical band gap of the stoichiometric CIS films was about 1.06 eV, which is within an optimal range for harvesting solar radiation energy.
Flowering time is determined by florigens. These genes include, Heading date 3a (Hd3a) and Rice FT 1 (RFT1) in rice, which are specifically expressed in the vascular tissues of leaves at the floral transition stage. To study the cis-regulatory elements present in the promoter region of Hd3a, we generated transgenic plants carrying the 1.75-kb promoter fragment of Hd3a that was fused to the ${\beta}$-glucuronidase (GUS) reporter gene. Plants expressing this construct conferred a vascular cell-specific expression pattern for the reporter gene. However, GUS was expressed in leaves at all developmental stages, including the early seedling stage when Hd3a was not detected. Furthermore, the reporter was expressed in roots at all stages. This suggests that the 1.75-kb region lackings cis-elements that regulate leaf-specific expression at the appropriate developmental stages. Deletion analyses of the promoter region indicated that regulatory elements determining vascular cell-specific expression are present in the 200-bp region between -245 bp and -45 bp from the transcription initiation site. By transforming the Hd3a-GUS construct to rice cultivar 'Taichung 65' which is defective in Ehd1, we observed that Ehd1 is the major regulatory element that controls Hd3a promoter activity.
Eukaryotic gene expression is precisely regulated at all points between transcription and translation. In this review, we focus on translational control mediated by the 3'-untranslated regions (UTRs) of mRNAs. mRNA 3'-UTRs contain cis-acting elements that function in the regulation of protein translation or mRNA decay. Each RNA binding protein that binds to these cis-acting elements regulates mRNA translation via various mechanisms targeting the mRNA cap structure, the eukaryotic initiation factor 4E (eIF4E)-eIF4G complex, ribosomes, and the poly (A) tail. We also discuss translation-mediated regulation of mRNA fate.
NPR1 is a positive regulator of systemic acquired resistance in Arabidopsis and rice. Expression of the rice gene OsNPR1 is induced by salicylic acid (SA). To identify the region of the OsNPR1 promoter involved in response to SA, we carried out deletion mutagenesis of the region 1005 bp upstream of the OsNPR1 start codon. Ciselement analysis revealed that the OsNPR1 promoter contains W-boxes and ASF1 motifs, both of which are known to be functional cis-elements of the WRKY and bZIP proteins, respectively. The deletion constructs 1005:LUC and 752:LUC, were induced by up to 4.3- and 3.8-fold, respectively, following SA treatment, suggesting that W-boxes and ASF1 motifs may play an important role in the strong induction of these constructs by SA. Using mutation analysis, we also showed that both the W-box and ASF1 motif are necessary for SA-induced expression of OsNPR1.
$Potato$$virus$$X$ (PVX) contains $cis$-acting elements including stem-loop 1 (SL1) RNA at the 5' region; SL1 is conserved among all potexviruses. The SL1 at the positive-sense RNA, SL1(+), is required for PVX RNA replication, cell-to-cell movement, and translation. Previous research demonstrated that SL1(+) RNA also serves as the origin of assembly for encapsidation of PVX RNA. To identify the essential sequences and/or regions for capsid protein (CP) subunit recognition within SL1(+) RNA, we used electrophoretic mobility shift assays (EMSA), UV cross-linking, and yeast three-hybrid analyses. The EMSA and UV cross-linking analyses with PVX CP subunits and RNA transcripts corresponding to the SL1(+) RNA showed that the SL1(+) RNA formed complexes with CP subunits. We also conducted EMSA and yeast three-hybrid analyses with RNAs containing various mutations of SL1(+) RNA elements. These analyses indicated that SL1(+) RNA is required for the interaction with PVX CP and that the RNA sequences located at the loop C and tetra loop of the SL1(+) are crucial for CP binding. These results indicate that, in addition to being important for RNA accumulation, the SL1(+) RNA from the 5' region of the PVX genome is also required for specific binding of PVX CP.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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