Lactobacillus acidophilus KFCC12731 and Saccharomyces cerevisiae KFCC32017 were incubated together in soymilk and the conditions for acid production were investigated. The acid production of Lactobacillus acidophilus was much higher when this organism was incubated with Saccharomyces cerevisiae in soymilk than when it was incubated alone. Optimum acid production by the mixed cultures of Lactobacillus acidophilus and Saccharomyces cerevisiae was achieved with the following conditions; a temperature of 34$^{\circ}C$, a 3:7-8:2 (OD 660) ratio of Lactobacillus acidophilus to Saccharomyces cerevisiae at inoculum, a 1.5% level of sucrose fortification or a 2.0-3.0 % level of skim milk powder fortification and a culture time of 12 hours or more.
An effective leavening yeast was isolated from raisin broth. The isolate was identified as Saccharomyces cerevisiae by comparing the homology of 18S rDNA ITS sequences and named as S. cerevisiae MF10003. S. cerevisiae MF10003 showed a 1.9-fold and 3.1-fold increase in $CO_2$ production and leavening ability, respectively, compared with the wild yeast S. ellipsoideus KCTC7243, and the dough had a rich and volatile flavor. When glucose, sucrose, fructose, and maltose were added to the culture broth as a carbon and energy source, $CO_2$ was produced in 4 hr.
The domestic cultured Campbell's Early and Geubong grapes were fermented far the production of red wines with the isolated wild yeast Saccharomyces cerevisiae IJ850. For the isolation of wild yeast, Geubong and Campbell's Early grapejuices were naturally fermented at room temperature for 6 days without adding stater culture. The strain isolated from Geubong which has 1.8 times higher fermentative ability than the strains isolated Campbell Early was selected. The selected strain was identified by using 26S rDNA sequencing. The strain showed 99.7% of similarity with Saccharomyces cerevisiae and thus identified as Saccharomyces cerevisiae IJ850. It was investigated the fermentative ability as the start culture. For the production of grapewine, the final sugar concentrations of grapejuices were adjusted to the $25^{\circ}Brix$ with anhydrous glucose. The grapejuices were fermented at room temperature for 10 days in the air-locked bottles filled with $CO_2$ gas. The final yield and alcohol concentration of Campbell's Early and Geubong grapewines fermented with the isolated wild yeast were 80.8%, 11.0% and 87.8%, 13.0%, respectively. Between the isolated wild yeast S. cerevisiae IJ850 and the commercial yeast S. cerevisiae EC1118, total acidities of grapewines produced with wild yeast were lower than those produced with the commercial yeast. The pH values and the values of color analysis of grapewines produced with both strains were similar. The total phenol contents of campbell's Early and Geubong wines produced with the isolated yeast and the commercial yeast were obtained in the range of 75 to 125mg/L. In conclusion, S. cerevesiae IJ850 isolated from the domestic cultured Geubong grape is able to use to produce grapewines as stater culture.
KIM IL-SUP;YUN HAE SUN;SHIMISU HISAYO;KITAGAWA EMIKO;IWAHASHI HITOSHI;JIN INGNYOL
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.15
no.6
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pp.1240-1249
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2005
Saccharomyces cerevisiae KNU5377 has potential as an industrial strain that can ferment wasted paper for fuel ethanol at $40^{\circ}C$ [15, 16]. To understand the characteristics of the strain, genome-wide expression was performed using DNA microarray technology. We compared the homology of the DNA microarray between genomic DNAs of S. cerevisiae KNU5377 and a control strain, S. cerevisiae S288C. Approximately $97\%$ of the genes in S. cerevisiae KNU5377 were identified with those of the reference strain. YHR053c (CUP1), YLR155c (ASP3), and YDR038c (ENA5) showed lower homology than those of S. cerevisiae S288C. In particular, the differences in the regions of YHR053c and YLR155c were confirmed by Southern hybridization, but did not with that of the region of YDR038c. The expression level of mRNA in S. cerevisiae KNU5377 and S288C was also compared: the 550 ORFs of S. cerevisiae KNU5377 showed more than two-fold higher intensity than those of S. cerevisiae S288C. Among the 550 ORFs, 59 ORFs belonged to the groups of ribosomal proteins and mitochondrial ribosomal proteins, and 200 ORFs belonged to the group of cellular organization. DIP5 and GAP1 were the most highly expressed genes. These results suggest that upregulated DIP5 and GAP 1 might take the place of ASP3 and, additionally, the sensitivity against copper might be contributable to the lowest expression level of copper-binding metallothioneins encoded by CUP 1a (YHR053c) and CUP1b (YHR055c) in S. cerevisiae KNU5377.
To construct an amylolytic industrial strain of Saccharomyces cerevisiae, the glucoamylase cDNA gene (GAl) from Aspergillus awamori was expressed under the control of the alcohol dehydrogenase gene promoter (ADC1p) and integrated into the chromosomes of industrial S. cerevisiae. An integrative cassette lacking bacterial ampicillin resistance gene but containing the GA1 gene, $\delta$ sequences of Ty1 retrotransposon as target sites for homologous recombination and S. cerevisiae aureobasidin A resistance gene (AUR1-C) as the selection marker was constructed to obtain a strain eligible for commercial use. Industrial S. cerevisiae transformed with this 15-integrative cassette efficiently secreted glucoamylase into the medium and grew on starch as the sole carbon source. The transformants were mitotically stable for 100 generations in nonselective medium.
Hybrid plasmid pEA24, shuttle vector YRp7 carrying amylase gene of Bacillus amyloliquefaciens, was transformed to yeast Saccharomyces cerevisiae, and the expression of B. amyloliquefaciens amylase gene in yeast was investigated. The frequency of transformation to S. cerevisiae DBY747 with YRp7 was increased by treatment of 40% polyethylene glycol (MW 4, 000), PH 7.0, at 3$0^{\circ}C$, and by regeneration used 2% top agar. The amount of cellular amylase activity produced by S. cerevisiae containing pEA24 was 2% of that secreted from B. amyloliquefaciens, but in case of S. cerevisiae transformant, the amylase secreted was not detected. A comparison of genetic stability of pEA24 and YRp7 plasmids in yeast was carried out by cultivation of transformants in tryptophan-supplement-medium. The pEA24 plasmid was more unstable than YRp7 in S. cerevisiae. The size of pEA24 extracted from S. cerevisiae transformants was found to be identical with that from E. coli transformants by agarose gel electrophoresis.
Susceptibility of a thermophilic strain (D-71) of Saccharomyces cerevisiae and an osmotolerant strain (SR-S) of Zygosaccharomyces rouxii to Zymolyase-20T were studied in various renditions. Content of glucan and mannan in cell wall of Saocharomyces cerevisiae D-71 were 14.5% and 14.8%, and Zygosaccharomyces rouxii SR-S were 24.0% and 19.0%, respectively. Susceptibility of Saccharomyces cerevisiae D-71 cultured in Wickerham synthetic medium containing 0.5% of methionine and 0.1% of glucose to Zymolyase-20T was 66%, and $K_2$HPO$_4$ and aminobenzoic acid were greatly effective to susceptibility. Susceptibility of Zygosaccharomyces rouxii SR-S cultured in Wickerhnin synthetic medium containing 0.5% of peptone, 0.15% of methionine and 0.l% of glucose to Zymolyase-20T was 80%, and KI and pyridoxine were greatly effective to susceptibility. Susceptibility of Saccharomyces cerevisiae D-71 stationary cultured in YMPG medium at $25^{\circ}C$ for 12 hours was 16o1e and Zygosaccharomyces rouxii SR-S stationary cultured in YMPG medium at $25^{\circ}C$ for 30 hours was 82%.
CoenzymeQ is a quinone derivative with a long isoprenoid side chain. It transports electrons in the respiratory chain located in the inner mitochondrial membrane of eukaryotes and the plasma membrane of prokaryotes. It also functions as an antioxidant. Saccharomyces cerevisine coq mutants, that are deficient coenzyme Q biosynthesis fail to aerobically grow. They are not able to grow on non-fermentable carbon sources, such as glycerol, either The putative $coq^{-7}$ gene involved in coenzyme Q biosynthesis of Neurospora crassa was cloned and used for complementation of S. cerevisiae coq7 mutant. The predicted amino acid sequence of N. crassa COQ7 showed about 58% homology with Coq7p of S. cerevisiae. The growth rate of S. cerevisiae $coq^7$ mutant transformed with the N. crassa $coq^{-7}$ gene was restored to the wild-type level. The complemented 5. cerevisiae strain was able to grow with glycerol as a sole carbon source and showed less sensitivities to linolenic acid, a polyunsaturated fatty acid.
Stability of spheroplasts prepared from Saccharomyces cerevisiae D-71, a thermophilic strain and Zygosaccharomyces rouxii SR-S, an osmotolerant strain were studied. Stability of spheroplast from Saccharomyces cerevisiae D-71 was highest in 0.8M KCI and 1.0M sorbitol ; that from Zygosaccharomyces rouxii SR-S was highest in 0.4M KCI and mannitol and that from both strains was less than 10% for sonic oscillation at 20Kc for 60 sec. In centrifugation at 10000 x g for 10 min., stability of spheroplast from Saccharomyces cerevisiae D-71 was 93% and that from Zygosaccharomyces rouxii SR-S was 84%. Breakage of spheroplast from Saccharomyces cerevisiae D-71 was 99% and that from Zygosaccharomyces rouxii SR-S was 55% for UV irradiation with 15W UV lamp at a distance of 20 cm for 60 min.
A thermotolerant yeast Saccharomyces cerevisiae OE-16 was isolated from traditional Meju was investigated on their physiological characteristics and ethanol fermentation ability. Saccharomyces cerevisiae OE-16 were able to grow up to 45$^{\circ}C$ and 40% of glucose. Saccharomyces cerevisiae OE-16 was also resistant to 15% of KCl 1,200ppm of Pb2+, Hg2+ and 500ppm of potassium sorbate. From 20% glucose media Saccharomyces cerevisiae OE-16 produced 83.4g per liter of ethanol at 3$0^{\circ}C$ and 9.5g per liter of ethanol at 4$0^{\circ}C$ for 72 hours.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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