The (Na, K) ATPase is a membrane ion transporting ATPase composed of an ${\alpha}$ catalytic subunit and a ${\beta}$ glycoprotein subunit. The topology of the rat ${\alpha}$1 and ${\beta}$1 subunits has been studied by insertion of epitope(s) : at the NH2-terminus and COOH-terminus and between Glu117 and Glul18, Lys828 and Arg829, Gln900 and Trp901, and Va1939 and Phe940 of the ${\alpha}$ subunit; and at the NH2-terminus and COOH-terminus and between Glu228 and Tyr229 of the ${\beta}$ subunit. The epitope-tagged ${\alpha}$l, constructs were expressed in HeLa cells to select for stable cell lines expressing a functional (Na, K)ATPase. All constructs, except for the one tagged between Gln900 and Trp901, resulted in ouabain-resistant colonies indicating that modified proteins retained functional integrity. The epitope-tagged ${\beta}$ constructs were transiently expressed in Cos-7 cells. The orientation of the epitopes with respect to the cell membrane was revealed by indirect immunofluorescence performed on permeabilized and non-permeabilized cells expressing the (Na, K)ATPase chains. The results indicate that the ${\alpha}$ subunit has 4 transmembrane segments in the COOH terminal membrane bound domain between residues 760 and 938, and that both the NH2-terminus and the COOH-terminus are in the cytosol; it was not determined whether there are more transmembrane segments between residue 938 and the COOH-terminus. The ${\beta}$ subunit has only one transmembrane spanning region with the NH2-terminus in the cytosol and the COOH-terminus on the extracytoplasmic surface of the plasma membrane.
A genomic library was constructed to clone a xylanase gene (Mxyn10) from Demequina sp. JK4 isolated from a deep sea. Mxyn10 encoded a 471 residue protein with a calculated molecular mass of 49 kDa. This protein showed the highest sequence identity (70%) with the xylanase from Streptomyces lividans. Mxyn10 contains a catalytic domain that belongs to the glycoside hydrolase family 10 (GH10) and a carbohydrate-binding module (CBM) belonging to family 2. The optimum pH and temperature for enzymatic activity were pH 5.5 and $55^{\circ}C$, respectively. Mxyn10 exhibited good pH stability, remaining stable after treatment with buffers ranging from pH 3.5 to 10.0. The protein was not significantly affected by a variety of chemical reagents, including some compounds that usually inhibit the activity of other related enzymes. In addition, Mxyn10 showed activity on cellulose. These properties mark Mxyn10 as a potential enzyme for industrial application and saccharification processes essential for bioethanol production.
The pyruvate dehydrogenase complex (PDC), a member of $\alpha$-keto acid dehydrogenase complex, catalyzes the oxidative decarboxylation of pyruvate with the formation of $CO_2$, acetyl-CoA, NADH, and $H^+$. This complex contains multiple copies of three catalytic components including pyruvate dehydrogenase (E1), dihydrolipoamide acetyltransferase (E2), and dihydrolipoamide dehydrogenase (E3). Two regulatory components (E1-kinase and phospho-E1 phosphatase) and functionally less-understood protein (protein X, E3BP) are also involved in the formation of the complex. In this study, we have partially cloned the gene for E3BP in human. Nine putative clones were isolated by human genomic library screening with 1.35 kb fragment of E3BP cDNA as a probe. For investigation of cloned genes, Southern blot analysis and the construction of the restriction map were performed. One of the isolated clones, E3BP741, has a 3 kb-SacI fragment, which contains 200 bp region matched with E3BP cDNA sequences. The matched DNA sequence encodes the carboxyl-terminal portion of lipoyl-bearing domain and hinge region of human E3BP. Differences between yeast E3BP and mammalian E3BP coupled with the remarkable similarity between mammalian E2 and mammalian E3BP were confirmed from the comparison of the nucleotide sequence and the deduced amino acid sequence in the cloned E3BP. Cloning of human E3BP gene and analysis of the gene structure will facilitate the understanding of the role(s) of E3BP in mammalian PDC.
The nucleotide sequence of the Paenibacillus curdlanolyticus B-6 xyn10A gene, encoding a xylanase Xyn10A, consists of 3,828 nucleotides encoding a protein of 1,276 amino acids with a predicted molecular mass of 142,726 Da. Sequence analysis indicated that Xyn10A is a multidomain enzyme comprising nine domains in the following order: three family 22 carbohydrate-binding modules (CBMs), a family 10 catalytic domain of glycosyl hydrolases (xylanase), a family 9 CBM, a glycine-rich region, and three surface layer homology (SLH) domains. Xyn10A was purified from a recombinant Escherichia coli by a single step of affinity purification on cellulose. It could effectively hydrolyze agricultural wastes and pure insoluble xylans, especially low substituted insoluble xylan. The hydrolysis products were a series of short-chain xylooligosaccharides, indicating that the purified enzyme was an endo-$\beta$-1,4-xylanase. Xyn10A bound to various insoluble polysaccharides including Avicel, $\alpha$-cellulose, insoluble birchwood and oat spelt xylans, chitin, and starches, and the cell wall fragments of P. curdlanolyticus B-6, indicating that both the CBM and the SLH domains are fully functioning in the Xyn10A. Removal of the CBMs from Xyn10A strongly reduced the ability of plant cell wall hydrolysis. These results suggested that the CBMs of Xyn10A play an important role in the hydrolysis of plant cell walls.
A $\beta$-agarase gene, agaB34, was functionally cloned from the genomic DNA of a marine bacterium, Agarivorans albus YKW-34. The open reading frame of agaB34 consisted of 1,362 bp encoding 453 amino acids. The deduced amino acid sequence, consisting of a typical N-terminal signal peptide followed by a catalytic domain of glycoside hydrolase family 16 (GH-16) and a carbohydrate-binding module (CBM), showed 37-86% identity to those of agarases belonging to family GH-16. The recombinant enzyme (rAgaB34) with a molecular mass of 49 kDa was produced extracellularly using Escherichia coli $DH5{\alpha}$ as a host. The purified rAgaB34 was a $\beta$-agarase yielding neoagarotetraose (NA4) as the main product. It acted on neoagarohexaose to produce NA4 and neoagarobiose, but it could not further degrade NA4. The maximal activity of rAgaB34 was observed at $30^{\circ}C$ and pH 7.0. It was stable over pH 5.0-9.0 and at temperatures up to $50^{\circ}C$. Its specific activity and $k_{cat}/K_m$ value for agarose were 242 U/mg and $1.7{\times}10^6/sM$, respectively. The activity of rAgaB34 was not affected by metal ions commonly existing in seawater. It was resistant to chelating reagents (EDTA, EGTA), reducing reagents (DTT, $\beta$-mercaptoethanol), and denaturing reagents (SDS and urea). The E. coli cell harboring the pUC18-derived agarase expression vector was able to efficiently excrete agarase into the culture medium. Hence, this expression system might be used to express secretory proteins.
DNA double-strand break (DSB) is a serious treat for the cells including mutations, chromosome rearrangements, and even cell death if not repaired or misrepaired. Ku heterodimer regulatory DNA binding subunits (Ku70/Ku80) bound to double strand DNA breaks are able to interact with 470-kDa DNA-dependent protein kinase catalytic subunit (DNA-PKcs), and the interaction is essential for DNA-dependent protein kinase (DNA-PK) activity. The Ku80 mutants were designed to bind Ku70 but not DNA end binding activity and the peptides were treated in breast cancer cells for co-therapy strategy to see whether the targeted inhibition of DNA-dependent protein kinase (DNA-PK) activity sensitized breast cancer cells to ionizing irradiation or chemotherapy drug to develop a treatment of breast tumors by targeting proteins involved in damage-signaling pathway and/or DNA repair. We designed domains of Ku80 mutants, 26 residues of amino acids (HN-26) as a control peptide or 38 (HNI-38) residues of amino acids which contain domains of the membrane-translocation hydrophobic signal sequence and the nuclear localization sequence, but HNI-38 has additional twelve residues of peptide inhibitor region. We observed that the synthesized peptide (HNI-38) prevented DNA-PKcs from binding to Ku70/Ku80, resulting in inactivation of DNA-PK complex activity in breast cancer cells (MDA-465 and MDA-468). Consequently, the peptide treated cells exhibited poor to no DNA repair, and became highly sensitive to irradiation or chemotherapy drugs. The growth of breast cancer cells was also inhibited. These results demonstrate the possibility of synthetic peptide to apply breast cancer therapy to induce apoptosis of cancer cells.
We have cloned a cDNA encoding a cysteine proteinase of the Acanthamoeba healui OC-3A strain isolated from the brain of a granulomatous amoebic encephalitis patient. A DNA probe for an A. healui cDNA library screening was amplified by PCR using degenerate oligonucleotide primers designed on the basis of conserved amino acids franking the active sites of cysteine and asparagine residues that are conserved in the eukaryotic cysteine proteinases. Cysteine proteinase gene of A. healui (AhCPI) was composed of 330 amino acids with signal sequence, a proposed pro-domain and a predicted active site made up of the catalytic residues, $Cys^{25},{\;}His^{159},{\;}and{\;}Asn^{175}$. Deduced amino acid sequence analysis indicates that AhCPI belong to ERFNIN subfamily of C 1 peptidases. By Northern blot analysis. no direct correlation was observed between AhCPI mRNA expression and virulence of Acanthamoeba, but the gene was expressed at higher level in amoebae isolated from soil than amoeba from clinical samples. These findings raise the possibility that AhCPI protein may play a role in protein metabolism and digestion of phagocytosed bacteria or host tissue debris rather than in invasion of amoebae into host tissue.
Cholangiocarcinoma (CCA) is the bile duct cancer which constitutes one of the important public health problems in Thailand with high mortality rate, especially in the Opisthorchis viverrini (a parasite risk factor for CCA) endemic area of the northeastern region of the country. This study aimed to identify potential biomarkers from the plasma peptidome by CCA patients. Peptides were isolated using 10 kDa cut-off filter column and the flow-through was then used as a peptidome for LC-MS/MS analysis. A total of 209 peptides were obtained. Among these, 15 peptides were concerned with signaling pathways and 12 related to metabolic, regulatory, and biosynthesis of secondary metabolite pathways. Five exclusive peptides were identified as potential biomarkers, i.e. ETS domain-containing transcription factor ERF (P50548), KIAA0220 (Q92617), phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate 3-kinase catalytic subunit beta isoform isoform 1 (P42338), LP2209 (Q6XYC0), and casein kinase II subunit alpha (P19784). Three of these biomarkers are signaling related molecules. A combination of these biomarkers for CCA diagnosis is proposed.
Kim, Sun-Young;Song, Eun-Joo;Chang, Keun-Hye;Kim, Eun-Hee;Chae, Suhn-Kee;Lee, Han-Soo;Lee, Kong-Joo
BMB Reports
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제34권4호
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pp.355-364
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2001
Major human Nucleoside diphosphate kinases (NDPKs) exist as hetero-oligomers, consisting of NDPK-A and NDPK-B, rather than homo-oligomer. To investigate their biological function depending on the oligomeric structure in vivo, we characterized the biochemical properties of cellular NDPK. Cellular NDPKs, which are made up of a unique combination of isoforms, were purified from human erythrocyte and placenta. We found that cellular NDPK and recombinant isoforms NDPKs have their own distinct biochemical properties in autophosphorylation, stability toward heat or urea, and DNA binding. Cellular NDPK was found to have unique characteristics rather than the expected additive properties of recombinant isoforms. The mutations in the dimeric interface of NDPK-B (R34G, N69H or K135L) caused defective DNA binding and simultaneously reduced the enzymatic stability These results suggest that the oligomeric interaction could play a major role in the stability of catalytic domain and might be related to the regulation of various cellular functions of NDPK.
Kim, Yun Hee;Song, Hyun-Ok;Ko, Kyung Min;Singaravelu, Gunasekaran;Jee, Changhoon;Kang, Junsu;Ahnn, Joohong
Molecules and Cells
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제25권4호
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pp.566-571
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2008
Calcineurin (Cn) is a calcium/calmodulin-dependent serine/threonine protein phosphatase that has diverse functions in different cell types and organisms. We screened proteins interacting with the C. elegans CnA homolog, TAX-6, by the yeast two-hybrid system. CNP-3 (Calcineurin interacting protein-3) is a novel protein that physically interacts with the catalytic domain of TAX-6. It is strongly expressed in the nuclei of intestine, hypodermis, dorsal uterine regions and spermatheca. Expression begins around the 60-cell stage and proceeds during all larval stages and the adult. To elucidate the biological function of cnp-3 we isolated a cnp-3 deletion mutant. Since CNP-3 binds CnA, we looked at factors associated with calcineurin loss-of-function mutants, such as brood size, body size, serotonin- and levamisole-mediated egg-laying behavior. The cnp-3(jh145) single mutant had no gross defects compared to wild-type animal. However, the phenotypes of the double mutants, tax-6(p675);cnp-3(jh145) and cnb-1(jh103);cnp-3(jh145), were more severe in terms of brood size, body size and serotonin-mediated egg-laying defects than tax-6(p675) and cnb-1(jh103), respectively. These results suggest that dysfunction of cnp-3 enhances certain calcineurin loss-of-function phenotypes in C. elegans.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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