The biodegradation of BTEX components (benzene, toluene, ethylbenzene, o-xylene, m-xylene, and p-xylene) individually and in mixtures was investigated using the o-xylene-degrading thermo-tolerant bacterium Ralsronia sp. strain PHS1 , which utilizes benzene, toluene, ethylbenzene, or o-xylene as its sole carbon source. The results showed that as a single substrate for growth, benzene was superior to both toluene and ethylbenzene. While growth inhibition was severe at higher o-xylene concentrations, no inhibition was observed (up to 100 mg $l^-1$) with ethylbenzene. In mixtures of BTEX compounds, the PHS1 culture was shown to degrade all six BTEX components and the degradation rates were in the order of benzene, toluene, o-xylene, ethylbenzene, and m- and p-xylene. m-Xylene and p-xylene were found to be co-metabolized by this microorganism in the presence of the growth-supporting BTEX compounds. In binary mixtures containing the growth substrates (benzene, toluene, ethylbenzene. and o-xylene), PHS1 degraded each BTEX compound faster when it was alone than when it was a component of a BTEX mixture, although the degree of inhibition varied according to the substrates in the mixtures. p-Xylene was shown to be the most potent inhibitor of BTEX biodegradation in binary mixtures. On the other hand, the degradation rates of the non-growth substrates (m-xylene and p-xylene) were significantly enhanced by the addition of growth substrates. The substrate utilization patterns between PHS1 and other microorganisms were also examined.
Kim, Sung Bong;Yoo, Hah-Young;Lee, Sang Jun;Lee, Ja Hyun;Choi, Han Seok;Kim, Seung Wook
한국신재생에너지학회:학술대회논문집
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2011.11a
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pp.114.2-114.2
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2011
Furfural is a versatile derivative. It can be utilized for a building-block of furfuryl alcohol production and a component of fuels or liquid alkanes. But in bio-process, furfural is a critical compound because it inhibits cell growth and metabolism. Furfural could be converted from xylose and usually produced from biomass in which hemicellulose is abundant. In this study, furfural production from miscanthus was performed and utilization of miscanthus residue was consequently conducted. At first, hydrolysis for investigation of miscanthus composition and furfural production was performed using sulfuric acid. Previously, we optimized dilute acid pretreatment condition for miscanthus pretreatment and the condition was found to be about 15 min of reaction time, 1.5% of acid concentration and about $140^{\circ}C$ of temperature and 60% (about 7 g/L) of xylose was solubilized from miscanthus. Using the xylose, furfural production was conducted as second step. Approximately $160{\sim}200^{\circ}C$ of temperature was accompanied with the hydrolysis for pyrolysis of biomass. When the investigated condition; $180^{\circ}C$ of temperature, 20 min of reaction time and 2% of acid concentration was operated for furfural production, furfural productivity was reached to be 77% of theoretical maximum. After reaction, residue of miscanthus was utilized as feedstock of ethanol fermentation. Residue was well washed using water and saccharified using hydrolysis enzymes. Hydrolysate (glucose) from saccharification was utilized for the carbon source of Saccharomyces cervisiae K35.
Previously our laboratory showed that Pseudomonas alkylphenolica KL28 possesses two different lap and pcu gene clusters for p-cresol catabolism. In this study, additional gene cluster (pchACXF-pcaHG-orf4-pcaBC) has been identified to encode enzymes necessary for catabolism of p-cresol to ${\beta}$-carboxy-cis,cis-muconate. This gene cluster showed almost identical nucleotide sequence homologies to those in the plasmid of Pseudomonas putida NCIMB 9866 and 9869, British origins, indicating the possibility of a horizontal gene transfer. Through mutagenesis of each gene cluster and gfp-based promoter reporter assays, it has been shown that the three gene clusters are functionally operated and pch genes are induced by p-cresol. Furthermore, the pcu gene cluster of the three was shown to be dominantly expressed in utilization of p-cresol. Mutation of the pcu gene was defective in aerial structure formation under p-cresol vapor, indicating the utilization rate of carbon source is one of key elements for the multicellular development of this strain.
A well characterized naphthalene-degrading strain, Pseudomonas putida PpG7 was observed to utilize limonin, a highly-oxygenated triterpenoid compound as a sole source of carbon and energy. Limonin concentrations evidenced a 64% reduction over 48 h of growth in batch cultures. Attempts were made to acquire a plasmid-less derivative via various methods (viz. Ethidium Bromide, SDS, elevated temperature & mitomycin C), among which the method involving mitomycin C ($20{\mu}g/ml$) proved successful. Concomitant with the loss of plasmid in P. putida PpG7 strain, the cured derivative was identified as a $lim^-$ phenotype. The $lim^+$ phenotype could be conjugally transferred to the cured derivative. Based on the results of curing with mitomycin C, conjugation studies and presence of ndo gene encoding naphthalene 1,2 dioxygenase, it was demonstrated that genes for the limonin utilization were encoded on an 83 kb indigenous transmissible Inc. P9 NAH plasmid in Pseudomonas putida PpG7 strain.
A previously unreported bacterial disease on chili pepper (Capsicum annuum L.) seedlings affecting as many as 4% of seedlings was observed in greenhouses in Chihuahua, Mexico (Delicias and Meoqui counties). Initial lesions appeared as irregular small spots on leaves and brown necrosis at margins tips were observed. Later, the spots became necrotic with a chlorotic halo. Advanced disease was associated with defoliation. A Gram negative, rod-shaped bacterium was isolated from diseased chili pepper seedlings. Three inoculation methods revealed that isolated strains produce foliage symptoms, similar to those observed in naturally infected seedlings. Pathogenic strains that caused symptoms in inoculated seedlings were re-isolated and identified to fulfill koch's postulate. Polyphasic approaches for identification including biochemical assays (API 20E and 50CH), carbon source utilization profiling (Biolog) and 16S rDNA, hsp60 and rpoB sequence analysis were done. Enterobacter cloacae was identified as the causal agent of this outbreak on chili pepper seedlings.
The causal agents of bacterial blossom blight in kiwifruit were isolated from flowers displaying symptoms in Korea. The pathogens were characterized by biochemical and physiological tests, and identified on the basis of 16S rDNA and 16S-23S internal transcribed spacer (ITS) sequences. Pathogenicity tests demonstrated that the blossom blight of kiwifruit in Korea is caused by two pathogens, Pseudomonas syringae pv. syringae and P. fluorescens. Carbon source utilization and DNA-DNA hybridization experiments confirmed P. fluorescens as one of the causal agents of blossom blight of kiwifruit. P. syringae pv. syringae and P. fluorescens can be distinguished from each other by the symptoms they produce in flowers. P. syringae pv. syringae primarily affected the stamen, while P. fluorescens caused rotting of all internal tissues of buds or flowers.
Two strains of polyvinyl alcohol (PVA) utilizing bacteria were isolated from the waste water and soil. These strains, G5Y and PW, were able to utilize PVA symbiotically as a carbon source, but could not utilize PVA separately. In the mixed culture of these strains, 0.5 percent of PVA was almost completely degraded in 3 days. Effect of degree of PVA polymerization on the its utilization was examined, and there was no remarkable difference among three kind of PVA (PVA 500, 1500, a d 2000). These bacteria were able to utilize PV,4 in the desizing waste water of factory as well as enrichment PVA medium. These strains, C5Y and PW, were identified as Pseudomonas cepucia and Pseudomonus pseudomallei, respectively, based on morpholofical and biological characteristics.
Song, Chan Woo;Rathnasingh, Chelladurai;Park, Jong Myoung;Lee, Julia;Song, Hyohak
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.28
no.3
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pp.409-417
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2018
Biologically produced 2,3-butanediol (2,3-BDO) has diverse industrial applications. In this study, schematic isolation and screening procedures were designed to obtain generally regarded as safe (GRAS) and efficient 2,3-BDO producers. Over 4,000 candidate strains were isolated by pretreatment and enrichment, and the isolated Bacillus strains were further screened by morphological, biochemical, and genomic analyses. The screened strains were then used to test the utilization of the most common carbon (glucose, xylose, fructose, sucrose) and nitrogen (yeast extract, corn steep liquor) sources for the economical production of 2,3-BDO. Two-stage fed-batch fermentation was finally carried out to enhance 2,3-BDO production. In consequence, a newly isolated Bacillus licheniformis GSC3102 strain produced 92.0 g/l of total 2,3-BDO with an overall productivity and yield of 1.40 g/l/h and 0.423 g/g glucose, respectively, using a cheap and abundant nitrogen source. These results strongly suggest that B. licheniformis, which is found widely in nature, can be used as a host strain for the industrial fermentative production of 2,3-BDO.
Saccharide utilizations for the growth by Bifidobacterium longum and Bifidobacterium breve were compared. B. longum fermented glucose more rapidly than lactose as a carbon source whereas B. breve fermented lactose at a rate higher than that of glucose. The highest cell concentration, in the case of B. longum, was obtained when cultivated in a jar fermentor that contained modified MRS medium that half the beef extract was replaced by the same amount of tuna extract, and that pH was controlled at 6.0. B. breve showed the best growth when grown in a jar fermentor containing the MRS medium with lactose instead of glucose, controlled at pH 6.0. The optimal concentration of peptone in MRS medium for the growth of B. breve was 5 g/l.
Five types of agricultural wastes were used for the production of xylanolytic enzyme by Aspergillus flavus K-03. All wastes materials supported high levels of xylanase and ${\beta}-xylosidase$ production. A high level of proteolytic activity was observed in barley and rice bran cultures, while only a weak proteolytic activity was detected in corn cob, barley and rice straw cultures. Maximum production of xylanase was achieved in basal liquid medium containing rice barn as carbon source for 5 days of culture at pH 6.5 and $25^{\circ}C$. The xylanolytic enzyme of A. flavus K-03 showed low thermostability. The times required for 50% reduction of the initial enzyme activity were 90 min at $40^{\circ}C$, 13 min at $50^{\circ}C$, and 3 min at $60^{\circ}C$. Xylanolytic activity showed the highest level at pH $5.5{\sim}10.5$ and more than 70% of the original activity was retained at pH 6.5 and 7.0. The higher stability of xylanolytic enzymes in the broad range of alkaline pH is useful for utilization of the enzymes in industrial process requiring in alkaline conditions. Moreover, the highest production of xylanolytic enzyme was obtained when 0.5% of rice bran was supplied in basal liquid medium. SDS-PAGE analysis revealed a single xylanase band of approximately 28.5 kDa from the culture filtrates.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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