Park, Bog-Im;Jung, Yeon-Woo;Kim, Young-Hoi;Lee, Sang-Moo;Kwon, Lee-Seong;Kim, Kang-Ju;An, So-Youn;Choi, Na-Young;You, Yong-Ouk
International Journal of Oral Biology
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v.41
no.4
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pp.253-262
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2016
Streptococcus mutans (S. mutans) is one of the most important bacteria in the formation of dental plaque and dental caries. S. mutans adheres to an acquired pellicle formed on the tooth surface, and aggregates with many oral bacteria. It initiates plaque formation by synthesizing glucan from sucrose, which is catalyzed by glucosyltransferases. Propolis is a resinous mixture produced by honeybees, by mixing saliva and beeswax with secretions gathered from wood sap and flower pollen. Bees prevent pathogenic invasions by coating the propolis to the outer and inner surface of the honeycomb. Propolis has traditionally been used for the treatment of allergic rhinitis, asthma and dermatitis. We investigated the inhibitory effects of propolis ethanol extract on biofilm formation and gene expression of S. mutans. The biofilm formation of S. mutans was determined by scanning electron microscopy (SEM) and safranin staining. We observed that the extract of propolis had an inhibitory effect on the formation of S. mutans biofilms at concentrations higher than 0.2 mg/ml. Real-time PCR analysis showed that the gene expression of biofilm formation, such as gbpB, spaP, brpA, relA and vicR of S. mutans, was significantly decreased in a dose dependent manner. The ethanol extract of propolis showed concentration dependent growth inhibition of S. mutans, and significant inhibition of acid production at concentrations of 0.025, 0.05, 0.1 and 0.2 mg/ml, compared to the control group. These results suggest that the ethanol extract of propolis inhibits gene expression related to biofilm formation in S. mutans.
Kim, Eun-Ah;Mang, So-Yeon;Seong, Jong-Hwan;Lee, Young-Guen;Kim, Han-Soo;Kim, Dong-Seob
Journal of Life Science
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v.22
no.5
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pp.692-696
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2012
$Listeria$$monocytogenes$, a fatal food-borne pathogenic bacteria, can form a biofilm on many different supports. The biofilm gives $L.$$monocytogenes$ more viability and resistance to disinfectants and sterilization procedures.$L.$$monocytogenes$ formed biofilms on various culture vessels tested in this experiment and showed the maximum amount of biofilm when it was cultured for 4 days at $30^{\circ}C$ in BHI broth. In this study, biofilm formation was stimulated or inhibited by addition of different Kimchi samples. That was not in accordance with the effect of Kimchi on the growth of $L.$$monocytogenes$.
Infections are caused due to the infiltration of tissue or organ space by infectious bacterial agents, among which Staphylococcus aureus bacteria are clinically most relevant. While current treatment modalities are in general quite effective, several bacterial strains exhibit high resistance to them, leading to complications and additional surgeries, thereby increasing the patient morbidity rates. Titanium dioxide is a celebrated photoactive material and has been utilized extensively in antibacterial functions, making it a leading infection mitigating agent. In view of the property amelioration in materials via nanofication, free-standing titania nanofibers (pure and nominally doped) and nanocoatings (on Ti and Ti6Al4V implants) were fabricated and evaluated to assess their efficacy to mitigate the viability and growth of S. aureus upon brief (30 s) activation by a portable hand-held infrared laser. In order to gauge the effect of exposure and its correlation with the antibacterial activities, both isolated (only titania substrate) and simultaneous (substrate submerged in the bacterial suspension) activations were performed. The bactericidal efficacy of the IR-activated $TiO_2$ nanocoatings was also tested against E. coli biofilms. Toxicity study was conducted to assess any potential harm to the tissue cells in the presence of photoactivated materials. These investigations showed that the photoactivated titania nanofibers caused greater than 97% bacterial necrosis of S. aureus. In the case of titania-coated Ti-implant surrogates, the bactericidal efficacy exceeded 90% in the case of pre-activation and was 100% in the case of simultaneous-activation. In addition to their high bactericidal efficacy against S. aureus, the benignity of titania nanofibers and nanocoatings towards tissue cells during in-vivo exposure was also demonstrated, making them safe for use in implant devices.
Dental chair unit (DCU) is the most essential equipment for the dental treatment in dentistry. DCU output water is used for various applications during dental treatment. DCU output water must be clean at the same level as drinking water since patients and dental staff are regularly exposed to water and aerosols generated from the DCU. Many studies demonstrated that DCU output water is frequently contaminated with microorganisms including opportunistic pathogen such as Legionella and Pseudomonas species. Thus, DCU output water may be a potential source of infection. In order to reduce microbial contamination levels in DCU output water, periodic management and continuous disinfection are necessary. Currently, there are a variety of disinfection methods for managing DCU output water and its efficacy is also diverse. We reviewed the level of microbial contamination, clinical implications of contaminated DCU output water and the various DCU disinfection methods.
Kim, Jong-Hyun;Kim, Cheorl-Ho;Hacker, Jorg;Ziebuhr, Wilma;Lee, Bok-Kwon;Cho, Seung-Hak
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.1
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pp.28-34
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2008
Biofilm formation in association with the intercellular adhesion (icaADBC) gene cluster is a serious problem in nosocomial infections of Staphylococcus aureus. In all 112 S. aureus strains tested, the ica genes were present, and none of these strains formed biofilms. The biofilm formation is known to be changeable by environmental factors. We have found about 30% of phase variation in these strains with treatment of tetracycline, pristinamycin, and natrium chloride. However, this phenotype disappeared without these substances. Therefore, we have constructed stable biofilm-producing variants through a passage culture method. To explain the mechanism of this variation, nucleotide changes of ica genes were tested in strain S. aureus 483 and the biofilm-producing variants. No differences of DNA sequence in ica genes were found between the strains. Additionally, molecular analysis of three regulatory genes, the accessory gene regulator (agr) and the staphylococcal accessory regulator (sarA), and in addition, alternative transcription factor ${\sigma}^B$ (sigB), was performed. The data of Northern blot and complementation showed that SigB plays an important role for this biofilm variation in S. aureus 483 and the biofilm-producing variants. Sequence analysis of the sigB operon indicated three point mutations in the rsbU gene, especially in the stop codon, and two point mutations in the rsbW gene. This study shows that this variation of biofilm formation in S. aureus is deduced by the role of sigB, not agr and sarA.
The cathode reaction is one of the most seriously limiting factors in a microbial fuel cell (MFC). The critical dissolved oxygen (DO) concentration of a platinum-loaded graphite electrode was reported as 2.2 mg/l, about 10-fold higher than an aerobic bacterium. A series of MFCs were run with the cathode compartment inoculated with activated sludge (biotic) or not (abiotic) on platinum-loaded or bare graphite electrodes. At the beginning of the operation, the current values from MFCs with a biocathode and abiotic cathode were $2.3{\pm}0.1$ and $2.6{\pm}0.2mA$, respectively, at the air-saturated water supply in the cathode. The current from MFCs with an abiotic cathode did not change, but that of MFCs with a biotic cathode increased to 3.0 mA after 8 weeks. The coulomb efficiency was 59.6% in the MFCs with a biotic cathode, much higher than the value of 15.6% of the abiotic cathode. When the DO supply was reduced, the current from MFCs with an abiotic cathode decreased more sharply than in those with a biotic cathode. When the respiratory inhibitor azide was added to the catholyte, the current decreased in MFCs with a biotic cathode but did not change in MFCs with an abiotic cathode. The power density was higher in MFCs with a biotic cathode ($430W/m^3$ cathode compartment) than the abiotic cathode MFC ($257W/m^3$ cathode compartment). Electron microscopic observation revealed nanowire structures in biofilms that developed on both the anode and on the biocathode. These results show that an electron-consuming bacterial consortium can be used as a cathode catalyst to improve the cathode reaction.
Jung, Gi Hoon;Lim, Eun Seob;Woo, Min-Ah;Lee, Joo Young;Kim, Joo-Sung;Paik, Hyun-Dong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.27
no.11
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pp.1942-1951
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2017
Campylobacter jejuni and Campylobacter coli are important foodborne pathogenic bacteria, particularly in poultry meat. In this study, the presence of extracellular DNase activity was investigated for biofilm-deficient Campylobacter strains versus biofilm-forming Campylobacter strains isolated from chickens, to understand the relationship between extracellular DNase activity and biofilm formation. A biofilm-forming reference strain, C. jejuni NCTC11168, was co-incubated with biofilm non-forming strains isolated from raw chickens or their supernatants. The biofilm non-forming strains or supernatants significantly prohibited the biofilm formation of C. jejuni NCTC11168. In addition, the strains degraded pre-formed biofilms of C. jejuni NCTC11168. Degradation of C. jejuni NCTC11168 biofilm was confirmed after treatment with the supernatant of the biofilm non-forming strain 2-1 by confocal laser scanning microscopy. Quantitative analysis of the biofilm matrix revealed reduction of extracellular DNA (16%) and proteins (8.7%) after treatment. Whereas the biofilm-forming strains C. jejuni Y23-5 and C. coli 34-3 isolated from raw chickens and the C. jejuni NCTC11168 reference strain showed no extracellular DNase activity against their own genomic DNA, most biofilm non-forming strains tested, including C. jejuni 2-1, C. coli 34-1, and C. jejuni 63-1, exhibited obvious extracellular DNase activities against their own or 11168 genomic DNA, except for one biofilm non-former, C. jejuni 22-1. Our results suggest that extracellular DNase activity is a common feature suppressing biofilm formation among biofilm non-forming C. jejuni or C. coli strains of chicken origin.
Jeong, Hii Sun;Lee, Byeong Ho;Lee, Hye Kyung;Kim, Hyoung Suk;Moon, Min Seon;Suh, In Suck
Archives of Plastic Surgery
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v.42
no.1
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pp.59-67
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2015
Background Negative-pressure wound therapy (NPWT) induces angiogenesis and collagen synthesis to promote tissue healing. Although acetic acid soaks normalize alkali wound conditions to raise tissue oxygen saturation and deconstruct the biofilms of chronic wounds, frequent dressing changes are required. Methods Combined use of NPWT and acetic acid irrigation was assessed in the treatment of chronic wounds, instilling acetic acid solution (1%) beneath polyurethane membranes twice daily for three weeks under continuous pressure (125 mm Hg). Clinical photographs, pH levels, cultures, and debrided fragments of wounds were obtained pre- and posttreatment. Tissue immunostaining (CD31, Ki-67, and CD45) and reverse transcription-polymerase chain reaction (vascular endothelial growth factor [VEGF], vascular endothelial growth factor receptor [VEGFR]; procollagen; hypoxia-inducible factor 1 alpha [HIF-1-alpha]; matrix metalloproteinase [MMP]-1,-3,-9; and tissue inhibitor of metalloproteinase [TIMP]) were also performed. Results Wound sizes tended to diminish with the combined therapy, accompanied by drops in wound pH (weakly acidic or neutral) and less evidence of infection. CD31 and Ki-67 immunostaining increased (P<0.05) post-treatment, as did the levels of VEGFR, procollagen, and MMP-1 (P<0.05), whereas the VEGF, HIF-1-alpha, and MMP-9/TIMP levels declined (P<0.05). Conclusions By combining acetic acid irrigation with negative-pressure dressings, both the pH and the size of chronic wounds can be reduced and infections be controlled. This approach may enhance angiogenesis and collagen synthesis in wounds, restoring the extracellular matrix.
Kim, Jin-Chul;Ahn, Jeong-Keun;Ko, Soo-Young;Choi, Young-Hoon;Kim, Do-Hyun;Lee, Tae-Yong
Clean Technology
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v.13
no.1
s.36
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pp.22-27
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2007
Pacquer traditionally has been used to varnish. Many reports have revealed that lacquer has durability and antimicrobial activities. Therefore, we expect that lacquer will be used as a good antifouling agent to solve the environmental problem. Here we chemically synthesized urushiol, a major component in lacquer and two urushiol derivatives, urusiol regioisomer and cardanol. We also analyzed the antimicrobial activities of these molecules to examine the inhibitory effect on the formation of the biofilms. Our results showed that synthesized urushiol and its derivatives have strong antifungal activities. Urushiol also exhibited inhibitory effect on the growth of gram positive bacteria specifically. However urushiol derivatives have low antibacterial activities.
Kim, A-Leum;Park, Son-Young;Lee, Chi-Ho;Lee, Chung-Hak;Lee, Jung-Kee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.24
no.11
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pp.1574-1582
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2014
Bacteria recognize changes in their population density by sensing the concentration of signal molecules, N-acyl-homoserine lactones (AHLs). AHL-mediated quorum sensing (QS) plays a key role in biofilm formation, so the interference of QS, referred to as quorum quenching (QQ), has received a great deal of attention. A QQ strategy can be applied to membrane bioreactors (MBRs) for advanced wastewater treatment to control biofouling. To isolate QQ bacteria that can inhibit biofilm formation, we isolated diverse AHL-degrading bacteria from a laboratory-scale MBR and sludge from real wastewater treatment plants. A total of 225 AHL-degrading bacteria were isolated from the sludge sample by enrichment culture. Afipia sp., Acinetobacter sp. and Streptococcus sp. strains produced the intracellular QQ enzyme, whereas Pseudomonas sp., Micrococcus sp. and Staphylococcus sp. produced the extracellular QQ enzyme. In case of Microbacterium sp. and Rhodococcus sp., AHL-degrading activities were detected in the whole-cell assay and Rhodococcus sp. showed AHL-degrading activity in cell-free lysate as well. There has been no report for AHL-degrading capability in the case of Streptococcus sp. and Afipia sp. strains. Finally, inhibition of biofilm formation by isolated QQ bacteria or enzymes was observed on glass slides and 96-well microtiter plates using crystal violet staining. QQ strains or enzymes not only inhibited initial biofilm development but also reduced established biofilms.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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