Penicillin amidohydrolase was partially purified from the fermented broth of Bacillus megaterium, and was immobilized on nylon fiber. The surface area of nylon fiber was increased by roughening it with fine sand and activated by acid treatment. The free amino groups on the nylon fiber exposed by such treatment were then utilized to immobilize the penicillin amidase. Enzymatic properties of penicillin amidohydrolase immobilized on the nylon fiber by covalent bonding and cross linking with glutaraldehyde were studied and compared with those of soluble enzyme. The optimal pH and temperature profile of immobilized enzyme showed only slightly broader peaks, and the values of kinetic constants, $K_m$, $K_{ia}$, and $K_{ip}$, of the immobilized enzyme are only slightly greater than those of the soluble enzyme. These results suggest that the mass transfer effect on the reaction rate for the penicillin amidase immobilized on nylon fiber is not so significant as the enzyme immobilized on some other support material like bentonite. The experimental results of batch reaction agreed well with the results of computer simulation for both the immobilized and soluble enzyme systems, confirming the validity of the rate equation derived which was based on the combined double inhibition by two reaction products.
Hyun, Jeongwoo;Abigail, Maria;Choo, Jin Woo;Ryu, Jin;Kim, Hyung Kwoun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.10
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pp.1708-1716
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2016
Glucose dehydrogenase (GDH) is an oxidoreductase enzyme and is used as a biocatalyst to regenerate NAD(P)H in reductase-mediated chiral synthesis reactions. In this study, the glucose 1-dehydrogenase B gene (gdhB) was cloned from Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki, and wild-type (GDH-BTWT) and His-tagged (GDH-BTN-His, GDH-BTC-His) enzymes were produced in Escherichia coli BL21 (DE3). All enzymes were produced in the soluble forms from E. coli. GDH-BTWT and GDH-BTN-His showed high specific enzymatic activities of 6.6 U/mg and 5.5 U/mg, respectively, whereas GDH-BTC-His showed a very low specific enzymatic activity of 0.020 U/mg. These results suggest that the intact C-terminal carboxyl group is important for GDH-BT activity. GDH-BTWT was stable up to 65℃, whereas GDH-BTN-His and GDH-BTC-His were stable up to 45℃. Gel permeation chromatography showed that GDH-BTWT is a dimer, whereas GDH-BTN-His and GDH-BTC-His are monomeric. These results suggest that the intact N- and C-termini are required for GDH-BT to maintain thermostability and to form its dimer structure. The homology model of the GDH-BTWT single subunit was constructed based on the crystal structure of Bacillus megaterium GDH (PDB ID 3AY6), showing that GDH-BTWT has a Rossmann fold structure with its N- and C-termini located on the subunit surface, which suggests that His-tagging affected the native dimer structure. GDH-BTWT and GDH-BTN-His regenerated NADPH in a yeast reductase-mediated chiral synthesis reaction, suggesting that these enzymes can be used as catalysts in fine-chemical and pharmaceutical industries.
Park, Min-Hee;Kim, Tae-Woon;Jo, Nam-Uk;Jeong, Ji-Yoon;Lee, Soon-Ho;Lee, Jong-Ok;Kim, Hae-Yeong
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.36
no.4
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pp.360-365
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2008
For the screening of residual antibiotics in foods, bioassays and microbiological inhibitor tests are commonly applied. These methods are tested by the various susceptibility of bacteria against different kinds of antibiotics. However, the sensitivity of bioassay is generally insufficient to detect some residual antibiotics at level of interest. This study was performed to investigate the detection limit of variable antibiotics of the bioassay and to improve the sensitivity to some antibiotics. The sensitivity of bioassay using Bacillus megaterium ATCC 9885, B. subtilis ATCC 6633, B. cereus ATCC 11778 and Geobacillus stearothermophilus ATCC 10149 was low in the detection of macrolides, quinolones, chloramphenicol, and monensin. On the contrary, Micrococcus luteus ATCC 9341 showed high sensitivity to macrolides and Escherichia coli ATCC 11303 was highly sensitive to quinolones and aminoglycosides. Consequently, both strains would be useful to improve sensitivity of bioassay with a wide detection range.
The bacterial strain isolated from Kimchi showed antibacterial activity against Micrococcus luteus IAM 1056. The selected strain was identified as Lactococcus lactis by 16S rRNA nucleotide sequence analysis and named as Lactococcus sp. KD 28. The treatment of culture supernatant with proteinase K removed antibacterial activity, indicating its proteinaceous nature, a bacteriocin. This bacteriocin was sensitive to hydrolytic enzymes such as ${\alpha}$-chymotrypsion, trypsin, proteinase K, lipase, ${\alpha}$-amylase and subtilisin A. The bacteriocin was highly thermostable and resistant to heating at $80^{\circ}C$ for up to an hour but 50 % of the total activity was remained at $100^{\circ}C$ for 30 min. The pH range from 2.0 to 8.0 had no effect on bacteriocin activity and it was not affected by solvents such as acetonitrile, isopropanol, methanol, chloroform and acetone up to 50% concentration. The bacteriocin showed antibacterial activity against M. luteus IAM 1056, Lactobacillus delbrueckii subsp. lactis KCTC 1058, Enterococcus faecium KCTC 3095, Bacillus cereus KCTC 1013, B. subtilis KCTC 1023, Listeria ivanovii subsp. ivanovii KCTC 3444, Staphylococcus aureus subsp. aureus KCTC 1916, B. megaterium KCTC 1098 and B. sphaericus KCTC 1184. The bacteriocin was purified through ammonium sulfate concentration, SP-Sepharose chromatography and RP-HPLC. The molecular weight was estimated to be about 3.4 kDa by tricine-SDS-PAGE analysis.
A mutant strain PRM1 defective in light-activated heterotrophic growth was isolated from Synechocystis sp. PCC 6803. PRM1 could be grown at growth rate equivalent to Synechocystis 6803 under mixotrophic growth conditions. However, PRM1 could not be grown under light-activated heterotrophic conditions, in which a daily pulse of light for 5 min was given. These results suggest that PRM1 is not defective in heterotrophic metabolism, but in the transduction pathway of light signal essential to the growth. Plasmid patterns, absorption spectra of whole cells, and the exterior and interior structures of PRM1 were similar to those of Synechocystis 6803, except that PRM1 could not produce amorphous slime holding cells together.
Cytochrome P450 enzymes (P450s) are involved in the synthesis of a wide variety of valuable products and in the degradation of numerous toxic compounds. The P450 BM3 (CYP102A1) from Bacillus megaterium was the first P450 discovered to be fused to its redox partner, a mammalian-like diflavin reductase. Here, we report the development of a whole-cell biocatalyst using ice-nucleation protein (Inp) from Pseudomonas syringae to display a hemeand diflavin-containing oxidoreductase, P450 BM3 (a single, 119-kDa polypeptide with domains of both an oxygenase and a reductase) on the surface of Escherichia coli. The surface localization and functionality of the fusion protein containing P450 BM3 were verified by flow cytometry and measurement of enzymatic activities. The results of this study comprise the first report of microbial cell-surface display of a heme- and diflavin-containing enzyme. This system should allow us to select and develop oxidoreductases containing heme and/or flavins into practically useful whole-cell biocatalysts for extensive biotechnological applications, including selective synthesis of new chemicals and pharmaceuticals, bioconversion, bioremediation, live vaccine development, and biochip development.
Park, SangJun;Oh, YoungHwan;Jo, BoYeon;Choi, MiYeon;Hyun, MinWoo;Jeong, JaeHyun;Kim, EuiYong
KSBB Journal
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v.30
no.2
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pp.69-76
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2015
The antibacterial activity of a antimicrobial (organic synthetic or organic natural material) on the bacteria (Bacillus megaterium, Arthrobacter oxydans, Micrococcus luteus, Methylobacterium aquaticum) detected in the automobiles showed 99.9% bacteria decrease rate within 30 min of being in contact with the tested bacteria culture. The MIC of the organic synthetic material based antimicrobials and the organic natural material based antimicrobial on the bacteria were 31~500 mg/mL and 8~250 mg/mL, respectively. The bacteria and biofilms were formed on the surface of aluminum after 5 ~8 days in the case of addition of the organic synthetic material based antimicrobial to the MIC values for the tested bacteria culture. On the other hand, there was no proliferation of bacteria and formation of biofilms on the surface of aluminum even after 30 days in the case of addition of the organic natural material based antimicrobial to the MIC values for the tested bacteria culture. As a result, the organic natural material based antimicrobial was confirmed to be more excellent effect of inhibition of bacterial proliferation and restraint of biofilms formation than the organic synthetic material based antimicrobial.
Lee, Seung-Hong;Kang, Sung-Myung;Sok, Chang Hyun;Hong, Jin Tae;Oh, Jae-Young;Jeon, You-Jin
ALGAE
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v.30
no.2
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pp.163-170
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2015
Tyrosinase inhibitors are an important component of cosmetic products. Our previous studies have proposed that eckol isolated from the brown alga Ecklonia cava, can be explored as a tyrosinase inhibitor. However, cellular activities and mechanism of action of eckol remain unknown. Therefore, the current study analyzed the eckol binding modes using the crystal structure of Bacillus megaterium tyrosinase. The effects of eckol on melanin synthesis induced by ${\alpha}$-melanocyte stimulating hormone in B16F10 melanoma cells were also investigated. We predicted the 3D structure of tyrosinase and used a docking algorithm to simulate binding between tyrosinase and eckol. These molecular modeling studies were successful (calculated binding energy value, $-115.84kcal\;mol^{-1}$) and indicated that eckol interacts with Asn205, His208, and Arg209. Furthermore, eckol markedly inhibited tyrosinase activity and melanin synthesis in B16F10 melanoma cells. We also found that eckol decreased the expression of tyrosinase, tyrosinase-related protein (TRP) 1, and TRP2. These results indicate that eckol is a potent inhibitor of melanogenesis, and this finding may be useful for the development of novel pharmaceutical and cosmetic agents.
Park, Seon-Ha;Kang, Ji-Yeon;Kim, Dong-Hyun;Ahn, Taeho;Yun, Chul-Ho
Biomolecules & Therapeutics
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v.20
no.6
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pp.562-568
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2012
Cytochrome P450 BM3 (CYP102A1) from Bacillus megaterium is a self-sufficient monooxygenase that consists of a heme domain and FAD/FMN-containing reductase domain (BMR). In this report, the reduction of 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT) and 5-cyano-2,3-ditolyl tetrazolium chloride (CTC) by BMR was evaluated as a method for monitoring BMR activity. The electron transfer proceeds from NADPH to BMR and then to BMR substrates, MTT and CTC. MTT and CTC are monotetrazolium salts that form formazans upon reduction. The reduction of MTT and CTC followed classical Michaelis-Menten kinetics ($k_{cat}=4120\;min^{-1}$, $K_m=77{\mu}M$ for MTT and $k_{cat}=6580\;min^{-1}$, $K_m=51{\mu}M$ for CTC). Our continuous assay using MTT and CTC allows the simple, rapid measurement of BMR activity. The BMR was able to metabolize mitomycin C and doxorubicin, which are anticancer drug substrates for CPR, producing the same metabolites as those produced by CPR. Moreover, the BMR was able to interact with CYP1A2 and transfer electrons to promote the oxidation reactions of substrates by CYP1A2 and CYP2E1 in humans. The results of this study suggest the possibility of the utilization of BMR as a surrogate for mammalian CPR.
In the present investigation, bacterial isolates from infected apple trees causing apple canker during winter were studied in the northern Gyeongbuk Province, Korea. The pathogen was identified as Pseudomonas syringae pv. syringae (Pss) through various physiological and biochemical characterization assays such as BIOLOG, gas chromatography of fatty acid methyl esters, and 16S rRNA. Bioassays for the production of phytotoxins were positive for syringopeptin and syringomycin against Bacillus megaterium and Geotrichum candidum, respectively. The polymerase chain reaction (PCR) method enabled the detection of toxin-producing genes, syrB1, and sypB in Pss. The differentiation of strains was performed using LOPAT and GATTa tests. Pss further exhibited ice nucleation activity (INA) at a temperature of -0.7℃, indicating an INA+ bacterium. The ice-nucleating temperature was -4.7℃ for a non-treated control (sterilized distilled water), whereas it was -9.6℃ for an INA- bacterium Escherichia coli TOP10. These methods detected pathogenic strains from apple orchards. Pss might exist in an apple tree during ice injury, and it secretes a toxin that makes leaves yellow and cause canker symptoms. Until now, Korea has not developed antibiotics targeting Pss. Therefore, it is necessary to develop effective disease control to combat Pss in apple orchards. Pathogenicity test on apple leaves and stems showed canker symptoms. The pathogenic bacterium was re-isolated from symptomatic plant tissue and confirmed as original isolates by 16S rRNA. Repetitive element sequence-based PCR and enterobacterial repetitive intergenic consensus PCR primers revealed different genetic profiles within P. syringae pathovars. High antibiotic susceptibility results showed the misreading of mRNA caused by streptomycin and oxytetracycline.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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