Zhang, Lijun;Park, Jeoung Yun;Zhao, Dong;Kwon, Hak Cheol;Yang, Hyun Ok
Biomolecules & Therapeutics
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제29권6호
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pp.615-629
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2021
An active compound, triterpene saponin, astersaponin I (AKNS-2) was isolated from Aster koraiensis Nakai (AKNS) and the autophagy activation and neuroprotective effect was investigated on in vitro and in vivo Parkinson's disease (PD) models. The autophagy-regulating effect of AKNS-2 was monitored by analyzing the expression of autophagy-related protein markers in SH-SY5Y cells using Western blot and fluorescent protein quenching assays. The neuroprotection of AKNS-2 was tested by using a 1-methyl-4-phenyl-2,3-dihydropyridium ion (MPP+)-induced in vitro PD model in SH-SY5Y cells and an MPTP-induced in vivo PD model in mice. The compound-treated SH-SY5Y cells not only showed enhanced microtubule-associated protein 1A/1B-light chain 3-II (LC3-II) and decreased sequestosome 1 (p62) expression but also showed increased phosphorylated extracellular signal-regulated kinases (p-Erk), phosphorylated AMP-activated protein kinase (p-AMPK) and phosphorylated unc-51-like kinase (p-ULK) and decreased phosphorylated mammalian target of rapamycin (p-mTOR) expression. AKNS-2-activated autophagy could be inhibited by the Erk inhibitor U0126 and by AMPK siRNA. In the MPP+-induced in vitro PD model, AKNS-2 reversed the reduced cell viability and tyrosine hydroxylase (TH) levels and reduced the induced α-synuclein level. In an MPTP-induced in vivo PD model, AKNS-2 improved mice behavioral performance, and it restored dopamine synthesis and TH and α-synuclein expression in mouse brain tissues. Consistently, AKNS-2 also modulated the expressions of autophagy related markers in mouse brain tissue. Thus, AKNS-2 upregulates autophagy by activating the Erk/mTOR and AMPK/mTOR pathways. AKNS-2 exerts its neuroprotective effect through autophagy activation and may serve as a potential candidate for PD therapy.
Po, Wah Wah;Choi, Won Seok;Khing, Tin Myo;Lee, Ji-Yun;Lee, Jong Hyuk;Bang, Joon Seok;Min, Young Sil;Jeong, Ji Hoon;Sohn, Uy Dong
Biomolecules & Therapeutics
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제30권4호
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pp.348-359
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2022
Gastric adenocarcinoma is among the top causes of cancer-related death and is one of the most commonly diagnosed carcinomas worldwide. Benzyl isothiocyanate (BITC) has been reported to inhibit the gastric cancer metastasis. In our previous study, BITC induced apoptosis in AGS cells. The purpose of the present study was to investigate the effect of BITC on autophagy mechanism in AGS cells. First, the AGS cells were treated with 5, 10, or 15 μM BITC for 24 h, followed by an analysis of the autophagy mechanism. The expression level of autophagy proteins involved in different steps of autophagy, such as LC3B, p62/SQSTM1, Atg5-Atg12, Beclin1, p-mTOR/mTOR ratio, and class III PI3K was measured in the BITC-treated cells. Lysosomal function was investigated using cathepsin activity and Bafilomycin A1, an autophagy degradation stage inhibitor. Methods including qPCR, western blotting, and immunocytochemistry were employed to detect the protein expression levels. Acridine orange staining and omnicathepsin assay were conducted to analyze the lysosomal function. siRNA transfection was performed to knock down the LC3B gene. BITC reduced the level of autophagy protein such as Beclin 1, class III PI3K, and Atg5-Atg12. BITC also induced lysosomal dysfunction which was shown as reducing cathepsin activity, protein level of cathepsin, and enlargement of acidic vesicle. Overall, the results showed that the BITC-induced AGS cell death mechanism also comprises the inhibition of the cytoprotective autophagy at both initiation and degradation steps.
Objective: Pork is an important source of animal protein in many countries. Subtle physiochemical changes occur during pork postmortem aging. The changes of apoptosis and autophagy in pork at 6 h to 72 h after slaughter were studied to provide evidence for pork quality. Methods: In this article, morphological changes of postmortem pork was observed through Hematoxylin-eosin staining, apoptotic nuclei were observed by TdT-mediated dUTP nick end labeling assay, protein related to apoptosis and autophagy expressions were tested by western blot and LC3 level were expressed according to immunofluorescence assay. Results: In this study, we found the occurrence of apoptosis in postmortem pork, and the process was characterized by nucleus condensation and fragmentation, formation of apoptotic bodies, increase in apoptosis-related Bax/Bcl-2 levels, and activation of caspases. Autophagy reached its peak between 24 and 48 h after slaughter, accompanied by the formation of autophagosomes on the cell membrane and expression of autophagy-related proteins beclin-1, P62, LC3-I, LC3-II, and ATG5. Conclusion: Obvious apoptosis was observed at 12 h and autophagy reached its peak at 48 h. The present work provides the evidence for the occurrence of apoptosis and autophagy during postmortem aging of pork. In conclusion, the apoptosis and autophagy of muscle cells discovered in this study have important implications for pork in the meat industry.
Metformin, a predominantly prescribed anti-diabetic drug for decades, has gained new insights for its anti-tumor activity in a variety of cancer cells. Our previous studies also showed the obvious pro-apoptotic activity of metformin and the underlying action mechanisms in hepatocellular carcinoma cells. Together with apoptosis, autophagy is a crucial intracellular process to determine the survival or death of cells under some stressful environments. The present study aimed to determine the role of autophagy in metformin-induced death of H4IIE hepatocellular carcinoma cells. Metformin blocked the formation of autophagosome and the expression of LC3A, generally described as a biomarker of autophagy. Inhibition of AMPK reversed the metformin-induced blockade of autophagy. Antioxidant (NAC) suppressed the metformin-induced cell death but not affected LC3A. The inhibition of protein kinase C totally restored the metformin-suppressed expression of LC3A. In summary, our present study suggests that autophagy is an anti-apoptotic player in metformin-induced apoptosis in H4IIE cells.
Autophagy is a homeostatic degradation process that is involved in tumor development and normal development. Autophagy is induced in cancer cells in response to chemotherapeutic agents, and inhibition of autophagy results in enhanced cancer cell death or survival. Chloroquine (CQ), an anti-malarial drug, is a lysosomotropic agent and is currently used as a potential anticancer agent as well as an autophagy inhibitor. Here, we evaluate the characteristics of these dual activities of CQ using human colorectal cancer cell line HCT15. The results show that CQ inhibited cell viability in dose- and time-dependent manner in the range between 20 to 80 uM, while CQ did not show any antiproliferative activity at 5 and 10 uM. Cotreatment of CQ with antitumor agent NVP-BEZ235, a dual inhibitor of PI3K/mTOR, rescued the cell viability at low concentrations meaning that CQ acted as an autophagy inhibitor, but CQ induced the lethal effect at high concentrations. Acridine orange staining revealed that CQ at high doses induced lysosomal membrane permeabilization (LMP). High doses of CQ produced cellular reactive oxygen species (ROS) and cotreatment of antioxidants, such as NAC and trolox, with high doses of CQ rescued the cell viability. These results suggest that CQ may exert its dual activities, as autophagy inhibitor or LMP inducer, in concentration-dependent manner.
The ubiquitin-proteasome system (UPS) and autophagy are two major degradative pathways of proteins in eukaryotic cells. As about 30% of newly synthesized proteins are known to be misfolded under normal cell conditions, the precise and timely operation of the UPS and autophagy to remove them as well as their tightly controlled regulation, is so important for proper cell function and survival. In the UPS, target proteins are labeled by small proteins called ubiquitin, which are then transported to the proteasome complex for degradation. Alternatively, many greatly damaged proteins are believed to be delivered to the lysosome for autophagic degradation. Although these autophagy and UPS pathways have not been considered to be directly related, many recent studies proposed their close link and dynamic interconversion. In this review, we'll focus on the several regulatory molecules that function in both UPS and autophagy and their crosstalk. Among the proposed multiple modulators, we will take a closer look at the so-called main connector of UPS-autophagy regulation, p62. Last, the functional role of p62 in the mitophagy and its implication for the pathogenesis of Parkinson's disease, one of the major neurodegenerative diseases, will be briefly reviewed.
Autophagy is crucial for immune defense against Mycobacterium tuberculosis (Mtb) infection. Mtb can evade host immune attack and survival within macrophages by manipulating the autophagic process. MicroRNAs (miRNAs) are small, non-coding RNAs that are involved in regulating vital genes during Mtb infection. The precise role of miRNAs in autophagy with the exits of Mtb remains largely unknown. In this study, we found miR-1958, a new miRNA that could regulate autophagy by interacting with 3'UTR of autophagy-related gene 5 (Atg5). In addition, Mtb infection triggered miR-1958 expression in RAW264.7 cells. What's more, miR-1958 overexpression blocked autophagic flux by impairing the fusion of autophagosomes and lysosomes. Overexpression of miR-1958 reduced Atg5 expression and LC3 puncta while inhibition of miR-1958 brought an increase of Atg5 and LC3 puncta; the opposite results were observed in detection of p62. The survival of Mtb in RAW264.7 cells transfected with mimic of miR-1958 was enhanced. Taken together, our research demonstrated that a novel miR-1958 could inhibit autophagy by interacting with Atg5 and favored intracellular Mtb survival in RAW264.7 cells.
Transglutaminase 2 (TGase 2) plays a key role in p53 regulation, depleting p53 tumor suppressor through autophagy in renal cell carcinoma. We found that microtubule-associated protein 1A/1B-light chain 3 (LC3), a hallmark of autophagy, were tightly associated with the level of TGase 2 in cancer cells. TGase 2 overexpression increased LC3 levels, and TGase 2 knockdown decreased LC3 levels in cancer cells. Transcript abundance of LC3 was inversely correlated with level of wild type p53. TGase 2 knockdown using siRNA, or TGase 2 inhibition using GK921 significantly reduced autophagy through reduction of LC3 transcription, which was followed by restoration of p53 levels in cancer cells. TGase 2 overexpression promoted the autophagy process by LC3 induction, which was correlated with p53 depletion in cancer cells. Rapamycin-resistant cancer cells also showed higher expression of LC3 compared to the rapamycin-sensitive cancer cells, which was tightly correlated with TGase 2 levels. TGase 2 knockdown or TGase 2 inhibition sensitized rapamycin-resistant cancer cells to drug treatment. In summary, TGase 2 induces drug resistance by potentiating autophagy through LC3 induction via p53 regulation in cancer.
Yeom, Hojin;Hwang, Sung-Hee;Han, Byeal-I;Lee, Michael
Biomolecules & Therapeutics
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제29권4호
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pp.434-444
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2021
BRAF inhibitors are insufficient monotherapies for BRAF-mutated cancer; therefore, we investigated which inhibitory pathway would yield the most effective therapeutic approach when targeted in combination with BRAF inhibition. The oncogenic BRAF inhibitor, PLX4720, increased basal autophagic flux in BRAF-mutated cells compared to wild-type (WT) BRAF cells. Interestingly, early autophagy inhibition improved the effectiveness of PLX4720 regardless of BRAF mutation, whereas late autophagy inhibition did not. Although ATG5 knockout led to PLX4720 resistance in both WT and BRAF-mutated cells, the MEK inhibitor trametinib exhibited a synergistic effect on PLX4720 sensitivity in WT BRAF cells but not in BRAF-mutated cells. Conversely, the prolonged inhibition of endoplasmic reticulum (ER) stress reduced basal autophagy in BRAF-mutated cells, thereby increasing PLX4720 sensitivity. Taken together, our results suggest that the combined inhibition of ER stress and BRAF may simultaneously suppress both pro-survival ER stress and autophagy, and may therefore be suitable for treatment of BRAF-mutated tumors whose autophagy is increased by chronic ER stress. Similarly, for WT BRAF tumors, therapies targeting MEK signaling may be a more effective treatment strategy. Together, this study presents a rational combination treatment strategy to improve the efficacy of BRAF inhibitors depending on BRAF mutation status.
Thein, Wynn;Po, Wah Wah;Choi, Won Seok;Sohn, Uy Dong
Biomolecules & Therapeutics
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제29권4호
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pp.353-364
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2021
The gastrointestinal (GI) tract is a series of hollow organs that is responsible for the digestion and absorption of ingested foods and the excretion of waste. Any changes in the GI tract can lead to GI disorders. GI disorders are highly prevalent in the population and account for substantial morbidity, mortality, and healthcare utilization. GI disorders can be functional, or organic with structural changes. Functional GI disorders include functional dyspepsia and irritable bowel syndrome. Organic GI disorders include inflammation of the GI tract due to chronic infection, drugs, trauma, and other causes. Recent studies have highlighted a new explanatory mechanism for GI disorders. It has been suggested that autophagy, an intracellular homeostatic mechanism, also plays an important role in the pathogenesis of GI disorders. Autophagy has three primary forms: macroautophagy, microautophagy, and chaperone-mediated autophagy. It may affect intestinal homeostasis, host defense against intestinal pathogens, regulation of the gut microbiota, and innate and adaptive immunity. Drugs targeting autophagy could, therefore, have therapeutic potential for treating GI disorders. In this review, we provide an overview of current understanding regarding the evidence for autophagy in GI diseases and updates on potential treatments, including drugs and complementary and alternative medicines.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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