Autophagy, which has the literal meaning of self-eating, is a cellular catabolic process executed by arrays of conserved proteins in eukaryotes. Autophagy is dynamically ongoing at a basal level, presumably in all cells, and often carries out distinct functions depending on the cell type. Therefore, although a set of common genes and proteins is involved in this process, the outcome of autophagic activation or deficit requires scrutiny regarding how it affects cells in a specific pathophysiological context. The uterus is a complex organ that carries out multiple tasks under the influence of cyclic changes of ovarian steroid hormones. Several major populations of cells are present in the uterus, and the interactions among them drive complex physiological tasks. Mouse models with autophagic deficits in the uterus are very limited, but provide an initial glimpse at how autophagy plays a distinct role in different uterine tissues. Herein, we review recent research findings on the role of autophagy in the uterine mesenchyme in mouse models.
The aim of this study was to investigate the effects of olanzapine on growth inhibition as well as autophagy in glioma cells in vitro and in vivo. The proliferation of both LN229 and T98 glioma cells, measured by MTT assay, was suppressed in a concentration-dependent and time-dependent manner. Moreover, apoptosis of both cells was significantly increased with the treatment of olanzapine as evidenced by increased Bcl-2 expression, Hoechst 33258 staining and annexinV-FITC/PI staining. Olanzapine treatment also enhanced activation of autophagy with increased expression of LC3-II, expression of protein p62, a substrate of autophagy, being decreased. The growth inhibition by olanzapine in both glioma cell lines could be blocked by co-treatment with 3-MA, an autophagy inhibitor. Furthermore, olanzapine effectively blocked the growth of subcutaneous xenografts of LN229 glioma cells in vivo. The increased level of protein LC3-II and decreased level of p62 followed by a decreased level of Bcl-2, suggesting that autophagy may contribute to apoptosis. In addition, reduced proliferation of glioma cells was shown by a decrease of Ki-67 staining and increased caspase-3 staining indicative of apoptosis in mouse xenografts. These results indicated that olanzapine inhibited the growth of glioma cells accompanied by induction of autophagy and apoptosis both in vitro and in vivo. Olanzapine-induced autophagy plays a tumor-suppressing role in glioma cells.
Increasing evidence suggests the role of miR-449a in the regulation of tumorigenesis and autophagy. Autophagy plays an important role in the malignancy of T-cell lymphoma. However, it is still unknown whether miR-449a is associated with autophagy to regulate the malignancy of T-cell lymp homa. In this study, we for the first time demonstrated that miR-449a enhanced apoptosis of T-cell lymphoma cells by decreasing the degree of autophagy. Further, miR-449a downregulated autophagy-associated 4B (ATG4B) expression, which subsequently reduced the autophagy of T-cell lymphoma cells. Mechanistically, miR-449a decreased ATG4B protein level by binding to its mRNA 3'UTR, thus reducing the mRNA stability. In addition, studies with nude mice showed that miR-449a significantly inhibited lymphoma characteristics in vivo. In conclusion, our results demonstrated that the "miR-449a/ATG4B/autophagy" pathway played a vital role in the malignancy of T-cell lymphoma, suggesting a novel therapeutic target.
We aimed to investigate the mechanism and effects of autophagy on cisplatin (DDP)-induced apoptosis in human gastric cancer cell line SGC7901. After SGC7901 cells were treated with DDP and/or chloroquine, cell proliferation was measured using MTT assay; cell apoptosis was determined by flow cytometry; autophagy and apotosis-related proteins expression were detected by Western blot; and quantitative analysis of autophagy after monodansylcadaverine (MDC) staining was performed using fluorescence microscopy. We found after treatment with 5 mg/L DDP for 24 h, the rates of cell apoptosis were ($21.07{\pm}2.12$)%. Autophagy, characterized by an increase in the number of autophagic vesicles and the level of LC3-II protein was observed in cells treated with DDP. After inhibition of autophagy by chloroquine, the rates of cell apoptosis were increased to ($30.16{\pm}3.54$)%, and the level of Caspase-3 and P53 protein were increased, and Bcl-2 protein was decreased. Therefore, autophagy protects human gastric cancer cell line SGC7901 against DDP-induced apoptosis, inhibition of autophagy can promote apoptosis, and combination therapy with DDP and chloroquine may be a promising therapeutic strategy for gastric cancer.
Objectives : We selected three herb-combined remedies, Bigihwan (BGH), Daechilgitang (DCGT) and Mokwhyangbinranghwan (MHBRH), through Donguibogam text-mining analysis, and evaluated their anti-cancer effects on human hepatocellular carcinoma Hep3B cells. Methods : Cytotoxicity was assessed by an MTT assay. Apoptosis rate, autophagy and ROS level were detected by flow cytometry. The autophagy was also observed by Cyto-ID staining fluorescence microscopy. The expression of autophagy, mitophagy and pexophagy regulatory proteins was detected by Western blot analysis. Results : BGH showed the strongest effect among the three prescriptions in inhibiting Hep3B cell viability, which was associated with the induction of apoptosis and autophagy. Autophagy blockers improved cell viability and reduced apoptosis after BGH and DCGT treatments, indicating that autophagy by these prescriptions enhanced Hep3B cells against their cytotoxicity. However, MHBRH enhanced the reduction of cell viability and apoptosis by autophagy blockers. Induction of autophagy by BGH treatment was associated with mitophagy due to mitochondrial dysfunction than DCGT and MHBRH-treated cells. In addition, induction of apoptosis by BGH treatment was ROS-dependent and showed the possibility of pexophagy involvement. Conclusion : Although further studies need to be conducted to study the efficacy and mechanism of accurate anticancer activity, the present results will serve as important sources of understanding the mechanism of action of herbal remedies prescribed for liver disease as documented in Donguibogam.
Park, Mi Hee;Kim, Seyeon;Song, Yu-ri;Kim, Sumi;Kim, Hyung-Joon;Na, Hee Sam;Chung, Jin
International Journal of Oral Biology
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제41권1호
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pp.45-51
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2016
Rutin (3,3',4',5,7-pentahydroxyflavone-3-rhamnoglucoside) is a bioactive flavonoid from the plant kingdom. Rutin has been studied as potential anticancer agent due to its wide range of pharmacological properties including antioxidative, anti-inflammatory and anticancer. Autophagy is a conserved intracellular catabolic pathway to maintain cell homeostasis by formation of autophagosome. Processing of autophagy involves various molecules including ULK1 protein kinase complex, Beclin-1-Vps34 lipid kinase complex, ATG5, ATG12, and LC3 (light chain 3). Cargo-carried autophagosomes fuse with lysosomes resulting in autophagolysosome to eliminate vesicles and degrade cargo. However, the actions of rutin on autophagy are not clearly understood. In this study, we analyzed the effect of rutin on autophagy and inflammation in cancer cell lines. Interestingly, rutin induced autophagy in leukemia (THP-1), oral (CA9-22), and lung (A549) cell lines. TNF-${\alpha}$, key modulator of inflammation, was upregulated by inhibition of rutin-induced autophagy. Taken together, these data indicated that rutin induced autophagy and consequently suppressed TNF-${\alpha}$ production.
Adiponectin, a hormone predominantly originated from adipose tissue, has exhibited potent anti-inflammatory properties. Accumulating evidence suggests that autophagy induction plays a crucial role in anti-inflammatory responses by adiponectin. However, underlying molecular mechanisms are still largely unknown. Association of Bcl-2 with Beclin-1, an autophagy activating protein, prevents autophagy induction. We have previously shown that adiponectin-induced autophagy activation is mediated through inhibition of interaction between Bcl-2 and Beclin-1. In the present study, we examined the molecular mechanisms by which adiponectin modulates association of Bcl-2 and Beclin-1 in macrophages. Herein, we demonstrated that globular adiponectin (gAcrp) induced increase in the expression of AUF1 and ZFP36L1, which act as mRNA destabilizing proteins, both in RAW 264.7 macrophages and primary peritoneal macrophages. In addition, gene silencing of AUF1 and ZFP36L1 caused restoration of decrease in Bcl-2 expression and Bcl-2 mRNA half-life by gAcrp, indicating crucial roles of AUF1 and ZFP36L1 induction in Bcl-2 mRNA destabilization by gAcrp. Moreover, knock-down of AUF1 and ZFP36L1 enhanced interaction of Bcl-2 with Beclin-1, and subsequently prevented gAcrp-induced autophagy activation, suggesting that AUF1 and ZFP36L1 induction mediates gAcrp-induced autophagy activation via Bcl-2 mRNA destabilization. Furthermore, suppressive effects of gAcrp on LPS-stimulated inflammatory mediators expression were prevented by gene silencing of AUF1 and ZFP36L1 in macrophages. Taken together, these results suggest that AUF1 and ZFP36L1 induction critically contributes to autophagy induction by gAcrp and are promising targets for anti-inflammatory responses by gAcrp.
Background: Gintonin (GT), a novel ginseng-derived exogenous ligand of lysophosphatidic acid (LPA) receptors, has been shown to induce cell proliferation and migration in the hippocampus, regulate calcium-dependent ion channels in the astrocytes, and reduce β-amyloid plaque in the brain. However, whether GT influences autophagy in cortical astrocytes is not yet investigated. Methods: We examined the effect of GT on autophagy in primary cortical astrocytes using immunoblot and immunocytochemistry assays. Suppression of specific proteins was performed via siRNA. LC3 puncta was determined using confocal microscopy. Results: GT strongly upregulated autophagy marker LC3 by a concentration- as well as time-dependent manner via G protein-coupled LPA receptors. GT-induced autophagy was further confirmed by the formation of LC3 puncta. Interestingly, on pretreatment with an mammalian target of rapamycin (mTOR) inhibitor, rapamycin, GT further enhanced LC3-II and LC3 puncta expression. However, GT-induced autophagy was significantly attenuated by inhibition of autophagy by 3-methyladenine and knockdown Beclin-1, Atg5, and Atg7 gene expression. Importantly, when pretreated with a lysosomotropic agent, E-64d/peps A or bafilomycin A1, GT significantly increased the levels of LC3-II along with the formation of LC3 puncta. In addition, GT treatment enhanced autophagic flux, which led to an increase in lysosome-associated membrane protein 1 and degradation of ubiquitinated p62/SQSTM1. Conclusion: GT induces autophagy via mTOR-mediated pathway and elevates autophagic flux. This study demonstrates that GT can be used as an autophagy-inducing agent in cortical astrocytes.
Recently, we reported that defective autophagy may contribute to the inhibition of the growth in response to PP2 (4-amino-5-(4-chlorophenyl)-7-(t-butyl)pyrazolo[3,4-d]pyrimidine), a selective SFK inhibitor, in multidrug-resistant v-Ha-ras-transformed NIH 3T3 cells (Ras-NIH 3T3/Mdr). In this study, we demonstrated that PP2 induces LC3 conversion via a mechanism that is uncoupled from autophagy and increases apoptosis in Ras-NIH 3T3/Mdr cells. PP2 preferentially induced autophagy in Ras-NIH 3T3 cells rather than in Ras-NIH 3T3/Mdr cells as determined by LC3-I to LC3-II conversion and GFP-LC3 fluorescence microscopy. Beclin 1 knockdown experiments showed that, regardless of drug resistance, PP2 induces autophagy via a Beclin 1-dependent mechanism. PP2 induced a conformational change in Beclin 1, resulting in the enhancement of the pro-autophagic activity of Beclin 1, in Ras-NIH 3T3 cells. Further, PI3K inhibition induced by wortmannin caused a significant increase in apoptosis in Ras-NIH 3T3 cells, as demonstrated by flow cytometric analysis of Annexin V staining, implying that autophagy inhibition through PI3K increases apoptosis in response to PP2 in Ras-NIH 3T3 cells. However, despite the fact that wortmannin abrogates PP2-induced GFP-LC3 punctae formation, some LC3 conversion remains in Ras-NIH 3T3/Mdr cells, suggesting that LC3 conversion may occur in an autophagy-independent manner. Taken together, these results suggest that PP2 induces LC3 conversion independent of PI3K, concomitant with the uncoupling of LC3 conversion from autophagy, in multidrug-resistant cells.
Autophagy is a fundamental cellular process that maintains homeostasis and cell integrity, under stress conditions. Although the involvement of autophagy in various conditions has been elucidated, the role of autophagy in renal structure is not completely clarified. Our aim was to investigate the cytoprotective effect of autophagy against acute kidney injury (AKI) through cisplatin deteriorative pathway, which leads to AKI via renal cell degradation. For in vivo experiments, male Sprague Dawley rats were divided in to 2 groups (n = 6/group) as control, Cis-5D. Following a single intraperitoneal injection of cisplatin, rats were sacrificed after 5 days. Blood urea nitrogen (BUN), creatinine (Cr) and histological alterations were examined. Further, expression of key regulators of autophagy, light-clain 3 (LC3), p62, and Beclin1, was evaluated by immunohistochemistry (IHC). The rats exhibited severe renal dysfunction, indicated by elevated BUN, Cr. Hematoxylin and eosin staining revealed histological damages in cisplatin-treated rats. Furthermore, IHC analysis revealed increased expression of LC3, Beclin1 and decreased expression of p62. Furthermore, expression of aforementioned autophagy markers was restricted to proximal tubule. Taken together, our study demonstrated that cisplatin can cause nephrotoxicity and lead to AKI. This phenomenon accelerated autophagy in renal proximal tubules and guards against AKI.
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