The 3-Deoxy-D-arabinoheptulosonate 7-phosphate (DAHP) synthase is the first enzyme of aromatic amino acid-, folic acid-, and phenazine-1-carboxylic acid biosynthetic pathways. DAHP synthase of Bacillus sp. B-6 that produces phenazine-1-carboxylic acid was feedback inhibited by two intermediary metabolites of aromatic amino acid biosynthetic pathways, prephenate and chorismate, but not by other metabolites, such as anthranilic acid, shikimic acid, p-aminobenzoic acid, and 3-hydroxyanthranilic acid. DAHP synthase of Bacillus sp. B-6 was not inhibited by end products, such as aromatic amino acids, folic acid, and phenazine-1-carboxylic acid. The inhibition of DAHP synthase by prephenate and chorismate was non-competitive with respect to erythrose 4-phosphate and phosphoenolpyruvate. Prephenate and chorismate inhibited 50% of the DAHP synthase activity at concentrations of $2{\times}10^{-5}\;M$ and $1.2{\times}10^{-4}\;M$, respectively The synthesis of DAHP synthase of Bacillus sp. B-6 was not repressed by exogenous aromatic amino acids, folic acid, and phenazine 1-carboxylic acid, single or in combinations.
Journal of Korean Society of Environmental Engineers
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v.31
no.5
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pp.332-340
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2009
This study was conducted to analyze and determine formation potentials for chlorination disinfection by-products (DBPs) from twenty amino acid compounds with or without $Br^-$. Two of twenty amino acid compound were tryptophan and tyrosine that were relatively shown high for formation of trihalomethanes (THMs)/dissolved organic carbon (DOC) whether or not $Br^-$ presented. Other 18 compounds were shown low for formation of THMs/DOC whether or not $Br^-$ presented. Five amino acid compounds that were tryptophan, tyrosine, asparagine, aspartic acid and histidine were shown high for formation of haloacetic acids (HAAs)/DOC whether or not $Br^-$ presented. Although formation of dichloroacetic acid (DCAA) was dominated in asparagine, aspartic acid and histidine, trichloroacetic acid (TCAA) was dominated in tryptophan and tryptophan. The formation of haloacetnitriles (HANs)/DOC whether or not $Br^-$ presented was high in Aspartic acid, histidine, asparagine, tyrosine and tryptophan. Specially, aspartic acid was detected 660.2 ${\mu}$g/mg (HAN/DOC). Although the formation of chloralhydrate (CH)/DOC was shown high in asparagine, aspartic acid, histidine, methionine, tryptophan and tyrosine, the formation of Chloropicrin (CP)/DOC was low (1 ${\mu}$g/mg) in twenty amino acid compounds. The formations of THM, HAA and HAN were also investigated in functional groups of amino acids. The highest formation of THM was shown in amino acids compounds (tryptophan and tyrosine) with an aromatic functional group. Highest, second-highest, third-highest and fourth-highest functional groups for formation of HAA were aromatic, neutral, acidic and basic respectively. In order of increasing functional groups for formation of HAN were acidic, basic, neutral and aromatic.
The effect of aromatic amino acids such as phenylalaine, tryptophan and tyrosine on somitogenesis at the early stage of chick embryo has been investigated morphologically using light and electron microscopy. Micrographs of aromatic amino acid injected chick embryo showed that an incomplete somite segmentation occurred and some decremental effect on the nervous system were observed. Somites were poorly developed and their size were variable. Electron micrograph of somatic cells from aromatic amino acid injected chick embryo showed that chromatins were coagulated, some of mitochondria were damaged, and nucleus were transformed considerably in some cases. The protein and nucleic acid levels and some enzyme activities of 15-day chick embryo which received the injection of 1mg of aromatic amino acid in 0.05 ml of saline 24 hours after the incubation were analyzed. Protein, DNA and RNA levels of the test group were not lowered significantly but the activities of enzymes for basic metabolism, such as lactate dehydrogenase, succinate dehydrogenase, malate dehydrogenase and glucose 6-phosphate dehydrogenase were considerably lowered as compared with those of control. From the present expeerimental results, it was tentatively suggested that the administration of amino acid might slow down the yolk granule degradation probably by feed back mechanism resulting in the disturbance of amino acid balance in the cell, which might give rise to impair normal metabolic pattern leading to abnormal somitogenesis to chick embryo at very early stage of development.
Recently, particular attention has been paid to the chiral separation of amino acid enantiomers because of their different biological activities. Hence, the high optical purity of aromatic amino acids is critical because of their important functions in the central nervous system. For the accurate chiral discrimination. we attempted to exploit the crosschecking each enantiomeric migraion orders of aromatic amino acids measured using (+)-18C6H4TA and (-)-18C6H4TA as the chiral selectors under pH 2.0, tris/citric acid buffer.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.31
no.5
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pp.775-781
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2002
The T-type amino acid transporter 1 (TATI) is a Na$^{+}$-independent amino acid transporter which selectively trans- ports aromatic amino acids subserving the amino acid transport system T. To understand the transport properties of aromatic amino acids by human TAT1 (hTATl ), we have examined the hTATl -mediated aromatic amino acid transports using a Xenopus laeuis oocyte expression system. When expressed in Xenopin laeuis oocytes, hTATl induced L- [$^{14}$ C]tryptophan transport which was not dependent on Na$^{+}$ or Cl$^{[-10]}$ in the medium. Uptake was time-dependent and exhibited a linear dependence on incubation time up to 30 min. The L- ($^{14}$ C)tryptophan uptake was highly inhibited by L-isomers of tryptophan, tyrosine and phenylalanine, whereas other L-amino acids did not inhibit hTATl -mediated L- ($^{14}$ C)tryptophan uptake. The hTATl induced the relatively low-affinity transport of aromatic amino acids such as L- ($^{14}$ C)tryptophan, L- ($^{14}$ C)tyrosine and L- ($^{14}$ C)phenylalanine (Km values: 450~750 $\mu$M), consistent with the properties of classical amino acid transport system T. The L- ($^{14}$ C)tryptophan uptake did not show any remarkable pH dependence within the pH range of 5.5 to 8.5. The time-dependent efflux of L- ($^{14}$ C)tryptophan was detected from the oocytes expressing hTATl, which was not affected by the presence or absence of L-tryptophan in the extracellular medium, indicating that hTATl-mediated transport is due to the facilitated diffusion. Expression of hTATl in Xenopu laevis oocytes induced the transport of tryptophan, tyrosine and phenylalanine, indicating that hTATl is a transporter subserving system T These results suggest that hTATl has essential roles in the absorption of aromatic amino acids from epithelial cells to the blood stream. Hecause hTATl is proposed to be crucial to the efficient absorption of aromatic amino acids from intestine and kidney, its defect such as blue diaper syndrome could be involved in the disruption of aromatic amino acid transport.ort.
The isoelelectric points of Cd-BP(l) and Cd-BP(II), cadmium-binding proteins, were 6.01 and 5.35, respectively. Both of them contained zinc. As for the amino acid composition, Cd-BP(I) contained a lot of glycine and lysine but none of such aromatic amino acids as tyrosine and phenylalanine.. On the other hand, Cd-BP(II) contained leucine, histidine, asparti cacid and alanine but no aromatic amino acids.
Aromatic L-amino acid transaminase is an enzyme that is able to transfer the amino group from L-glutamate to unnatural aromatic ${\alpha}-keto$ acids to generate ${\alpha}-ketoglutarate$ and unnatural aromatic L-amino acids, respectively. Enrichment culture was used to isolate thermophilic Bacillus sp. T30 expressing this enzyme for use in the synthesis of unnatural L-amino acids. The asymmetric syntheses of L-homophenylalanine and L-phenylglycine resulted in conversion yields of >95% and >93% from 150 mM 2-oxo-4-phenylbutyrate and phenylglyoxylate, respectively, using L-glutamate as an amino donor at $60^{\circ}C$. Synthesized L-homophenylalanine and L-phenylglycine were optically pure (>99% enantiomeric excess) and continuously pre-cipitated in the reaction solution due to their low solubility at the given reaction pH. While the solubility of the ${\alpha}-keto$ acid substrates is dependent on temperature, the solubility of the unnatural L-amino acid products is dependent on the reaction pH. As the solubility difference between substrate and product at the given reaction pH is therefore larger at higher temperature, the thermophilic transaminase was successfully used to shift the reaction equilibrium toward rapid product formation.
Sixteen kinds of naturally occurring phenolic compounds including 5 stilbenes, 7 flavonoids and 4 anthraquinones were examined in the inhibitory activity against rat liver AADC(aromatic L-amino acid decarboxylase) in vitro, using 5-hydroxytryptophan as a substrate. Three hydroxystilbenes, resveratrol 1, rhapontigenin 3 and piceatanol 5, which were known to be monoamine oxidase A inhibitors, exhibited a significant inhibition against AADC($IC_{50}$=20, 8 and $5\;{\mu}M$, respectively). By the comparison of the activity of each phenolic compound, it was suggested that the 3',4'-dihydroxyphenyl group of stilbenes or flavones was the best pharmacophore for the AADC inhibitory activity.
Due to the depleting petroleum reserve, recurring energy crisis, and global warming, it is necessary to study the development of white biotech-based aromatic chemical feedstock from renewable biomass for replacing petroleum-based one. In particular, the production of aromatic intermediates and derivatives in biosynthetic pathway of aromatic amino acids from glucose might be replaced by the production of petrochemical-based aromatic chemical feedstock including benzene-derived aromatic compounds. In this review, I briefly described the production technology for hydroquinone, catechol, adipic acid, shikimic acid, gallic acid, pyrogallol, vanillin, p-hydroxycinnamic acid, p-hydroxystyrene, p-hydroxybenzoic acid, indigo, and indole 3-acetic acid using metabolic engineering, bioconversion, and chemical process. The problems and possible solutions regarding development of production technology for competitive white biotech-based aromatic compounds were also discussed.
Lim, Sun-Hyung;Park, Sang Kyu;Ha, Sun-Hwa;Choi, Min Ji;Kim, Da-Hye;Lee, Jong-Yeol;Kim, Young-Mi
Journal of Plant Biotechnology
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v.42
no.3
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pp.135-153
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2015
The aromatic amino acids, which are composed of $\small{L}$-phenylalanine, $\small{L}$-tyrosine and $\small{L}$-tryptophan, are general components of protein synthesis as well as precursors for a wide range of secondary metabolites. These aromatic amino acids-derived compounds play important roles as ingredients of diverse phenolics including pigments and cell walls, and hormones like auxin and salicylic acid in plants. Moreover, they also serve as the natural products of alkaloids and glucosinolates, which have a high potential to promote human health and nutrition. The biosynthetic pathways of aromatic amino acids share a chorismate, the common intermediate, which is originated from shikimate pathway. Then, tryptophan is synthesized via anthranilate and the other phenylalanine and tyrosine are synthesized via prephenate, as intermediates. This review reports recent studies about all the enzymatic steps involved in aromatic amino acid biosynthetic pathways and their gene regulation on transcriptional/post-transcriptional levels. Furthermore, results of metabolic engineering are introduced as efforts to improve the production of the aromatic amino acids-derived secondary metabolites in plants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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