Meiosis is a specialized cell division, essential in most reproducing organisms to halve the number of chromosomes, thereby enabling the restoration of ploidy levels during fertilization. A key step in meiosis is homologous recombination, which promotes homologous pairing and generates crossovers (COs) to connect homologous chromosomes until their separation at anaphase I. These CO sites, seen cytologically as chiasmata, represent a reciprocal exchange of genetic information between two homologous non-sister chromatids. RAD51, the eukaryotic homolog of the bacterial RecA recombinase, plays a central role in homologous recombination (HR) in yeast and animals. Loss of RAD51 function causes lethality in the flowering plant, Arabidopsis thaliana, suggesting that RAD51 has a meiotic stage-specific function that is different from homologous pairing activity.
Tobacco (Nicotiana tabacum L.) cells were transformed with rice expansin genes, OsEXPA4, OsEXPB3, OsEXPB4, and OsEXPB6, to elucidate the function of the genes in tobacco cells. The transformation increased the mass of the callus by $36\%-65 \%$, and the cell length by $12\%-28\%$. The cell width was decreased by $3\%$ for OsEXPB3, not changed for OsEXPB4, increased by $25\%\;and\;20\%$ for OsEXPA4 and OsEXPB6, respectively. From database search, seven expansin genes were found and six of them belong to EXPA group and one of them belongs to EXPB group. EXLA and EXLB were not found. All tobacco expansin genes were evenly distributed in the phylogenetic tree of rice and Arabidopsis expansin genes.
Salt stress is a major environmental factor influencing plant growth and development. To identify salt tolerance determinants, we systematically screened salt sensitive rice mutants by use of the Activator/Dissociation (Ac/Ds) transposon tagging system. In this study, we focused on the salt sensitive mutant line, designated SSM-1. A gene encoding a NAC transcription factor homologue was disrupted by the insertion of a Ds transposon into SSM-1 line. The OsNAC075 gene (EU541472) has 7 exons and encodes a protein (486-aa) containing the NAC domain in its N-terminal region. Sequence comparison showed that the OsNAC075 protein had a strikingly conserved region at the N-terminus, which is considered as the characteristic of the NAC protein family. OsNAC075 protein was orthologous to Arabidopsis thaliana ANAC075. Phylogenetic analysis confirmed OsNAC075 belonged to the OsNAC3 subfamily, which plays an important role in response to stress stimuli. RT-PCR analysis showed that the expression of OsNAC075 gene was rapidly and strongly induced by stresses such as NaCl, ABA and low temperature ($4^{\circ}C$). Our data suggest that OsNAC075 holds promising utility in improving salt tolerance in rice.
Kim, Yun-Ju;Jung, Eui-Whan;Hwang, Seon-Hee;Go, Seong-Joo;Hwang, Duk-Ju
The Plant Pathology Journal
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제20권1호
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pp.41-45
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2004
Plants have the ability to defend themselves against pathogens by activating a series of defense responses. SA is known to be a signal molecule in plant defense responses. Nevertheles, SA is not the only one signal mediating defense responses. In addition to SA, ethylene and jasmonic acid have also been known to mediate plant defense responses against pathogens. The activation of a series of plant defense responses is known to be through varieties of transcription factors. Specially AP2/EREBP transcription factors are involved in ethylene mediated defense signaling. In this review, recent progress on AP2/EREBP transcription factors in arabidopsis, tomato and tobacco and a few of AP2/ EREBP transcription factors in rice related to biotic stresses will be discussed.
Simkhada, Dinesh;Kim, EuiMin;Lee, Hei Chan;Sohng, Jae Kyung
Molecules and Cells
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제28권4호
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pp.397-401
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2009
Flavonoids are a group of polyphenolic compounds that have been recognized as important due to their physiological and pharmacological roles and their health benefits. Glycosylation of flavonoids has a wide range of effects on flavonoid solubility, stability, and bioavailability. We previously generated the E. coli BL21 (DE3) ${\Delta}pgi$ host by deleting the glucose-phosphate isomerase (Pgi) gene in E. coli BL21 (DE3). This host was further engineered for whole-cell biotransformation by integration of galU from E. coli K12, and expression of calS8 (UDP-glucose dehydrogenase) and calS9 (UDP-glucuronic acid decarboxylase) from Micromonospora echinospora spp. calichensis and arGt-4 (7-O-glycosyltransferase) from Arabidopsis thaliana to form E. coli (US89Gt-4), which is expected to produce glycosylated flavonoids. To test the designed system, the engineered host was fed with naringenin as a substrate, and naringenin 7-O-xyloside, a glycosylated naringenin product, was detected. Product was verified by HPLC-LC/MS and ESI-MS/MS analyses. The reconstructed host can be applied for the production of various classes of glycosylated flavonoids.
We characterized a full-length cDNA of CaCOP1 from pepper. Phylogenetic analysis based on the deduced amino acid sequence of CaCOP1 cDNA revealed high sequence similarity to the COP1 gene in Oryza sativa (84% identity). CaCOP1 shares high sequence identity with regulatory protein in Arabidopsis (84%), constitutively photomorphogenic 1 protein in Pisum sativum (81%) and COP1 homolog in Lycopersicon esculentum (79%). CaCOP1 gene exists single copy in the chili pepper genome. Expression of CaCOP1 was reduced in response to inoculation of non-host pathogens. The expression of this gene under abiotic and oxidative stresses was investigated, including 200 mM NaCl, 200 mM mannitol, cold ($4^{\circ}C$), 100 ${\mu}M$ abscisic acid (ABA), and 10 mM hydrogen peroxide ($H_2O_2$). CaCOP1 was induced significantly 3 h after low temperature treatment but not by dehydration or high salinity. Moreover, CaCOP1 was not induced by plant hormone ABA. These observations suggest that CaCOP1 gene plays a role in abiotic stress and may be belong to ABA-independent regulation system.
Using differential display reverse transcription technique, the present study attempted to isolate and characterize genes specifically expressed in cotyledons of Pharbitis nil Choisy cv. Violet during floral induction. A total of 107 bands specific to the inductive condition were initially obtained with 80 primer sets of 20 different arbitrary primers combined with 4 kinds of T12MN. In northern blot analysis with reamplified cDNAs as probes, three cDNAs were detected to be expressed specificcally in the induced cotyledon tissues, and designated PnFL-1, PnFL-2 and PnFL-3 , the size of which were 228 bp, 317 bp and 272 bp, respectively. A search for sequences similar to the decuced amino acid sequences was conducted using GenBank and EMBL database ; seequence encoded by PnFL-1 had 29% identity with the clone of Arabidopsis thaliana similiar to reverse trascriptase (Genbank Acc. N0.3047086), PnFL-2 shared 50% identity with hydroxiyproline-rich glycoprotein of Glycine max(GenBank Acc. No.347455), and PnFL-3 had 46% identity with TAMU 4. Thaliana genomic clone T23E16 (GenBank Acc. No.B67574). None of them was known gene in the plant system up to date, implying that the fragments may comprise parts of genes which are associated with the floral induction in Pharbitis nil.
Auxin-binding protein 57 ($ABP_{57}$), a soluble auxin-binding protein, acts as a receptor to activate plasma membrane (PM) $H^+-ATPase$. Here, we report the cloning of abp57 and the biochemical characterization of its protein expressed in E. coli. The analysis of internal amino acid sequences of $ABP_{57}$ purified from rice shoots enabled us to search for the corresponding gene in protein DB of NCBI. Further BLAST analysis showed that rice has four abp57-like genes and maize has at least one homolog. Interestingly, Arabidopsis seems to have no homolog. Recombinant $ABP_{57}$ expressed in E. coli caused the activation of PM $H^+-ATPase$ regardless of the existence of IAA. Scatchard analysis showed that the recombinant protein has relatively low affinity to IAA as compared to natural $ABP_{57}$. These results collectively support the notion that the cloned gene is responsible for $ABP_{57}$.
Caffeoyl shikimate esterase (CSE) is a key enzyme in lignin synthesis in Arabidopsis thaliana. To determine the role of CSE in lignification of the endocarp in peach (Prunus persica L.) fruit, we cloned and characterized the P. persica CSE homolog, which we designated PpCSE. The 954 - bp PpCSE gene encoded a 317 - amino acid polypeptide. PpCSE expression patterns in the mesocarp and endocarp changed during peach fruit development. There was no significant difference between the expression levels of PpCSE in the mesocarp and endocarp at 39 and 44 days after full bloom (DAFB), but the expression level of PpCSE in the endocarp at 50 and 55 DAFB was 80.73 and 72.75 times higher, respectively, than that in the mesocarp. During peach fruit development, PpCSE expression in the endocarp increased rapidly; the relative PpCSE expression level at 50 DAFB was 122.70 times higher than that at 39 DAFB. At the protein level, CSE was detected in the peach fruit endocarp at 50 and 55 DAFB. Our study suggests that PpCSE expression during peach fruit development is closely related to the degree of endocarp lignification.
Kim, Hee-Ok;Park, Jeong-Nam;Shin, Dong-Jun;Lee, HwangHee Blaise;Chun, Soon-Bai;Bai, Suk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제11권3호
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pp.529-533
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2001
The ${\beta}$-Amylase cDNA fragment from the oomcete Saprolegnia parasitica was cloned by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) using degenerate oligonucleotide primers derived from conserved ${\beta}$-amylase sequences. The 5'and 3'regions of the $\beta$-amylase gene were amplified using the rapid amplification of cDNA ends (rACE) system. It consisted of an open reading frame of 1,350 bp for a protein of 450 amino acids. Comparison between the genomic and cDNA sequences revealed that the intron was not present in the coding region. The deduced amino acid sequence of the ${\beta}$-amylase gene had a 97% similarity to the ${\beta}$-amylase of Saprolegnia ferax, followed by 41% similarity to those of Arabidopsis thaliana, Hordeum vulgare, and Zea mays. The ${\beta}$-amylase gene was also expressed in Saccharomyces cerevisiae by placing it under the control of the alcohol dehydrogenase gene (ADC1) promoter.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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