Mesas, Florencia Anabel;Terrile, Maria Cecilia;Silveyra, Maria Ximena;Zuniga, Adriana;Rodriguez, Maria Susana;Casalongue, Claudia Anahi;Mendieta, Julieta Renee
The Plant Pathology Journal
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v.37
no.6
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pp.533-542
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2021
Chitosan has been considered an environmental-friendly polymer. However, its use in agriculture has not been extended yet due to its relatively low solubility in water. N-Methylene phosphonic chitosan (NMPC) is a water-soluble derivative prepared by adding a phosphonic group to chitosan. This study demonstrates that NMPC has a fungicidal effect on the phytopathogenic fungus Fusarium solani f. sp. eumartii (F. eumartii) judged by the inhibition of F. eumartti mycelial growth and spore germination. NMPC affected fungal membrane permeability, reactive oxygen species production, and cell death. Also, this chitosan-derivative exerted antifungal effects against two other phytopathogens, Botrytis cinerea, and Phytophthora infestans. NMPC did not affect tomato cell viability at the same doses applied to these phytopathogens to exert fungicide action. In addition to water solubility, the selective biological cytotoxicity of NMPC adds value in its application as an antimicrobial agent in agriculture.
It were reported that antifungal mechanism of Enterobacter cloacae is a volatile ammonia that produced by the strain in soil, and the production of ammonia is related to the bacterial urease activity. A powerful bacterium SH14 against soil-borne pathogen Fusarium solani, which cause root rot of many important crops, was selected from a ginseng pathogen suppressive soil. The strain SH14 was identified as Bacillus subtilis by cultural, biochemical, morphological method, and $API^{circledR}$ test. From several in vitro tests, the antifungal substance that is produced from B. subtilis SH14 was revealed as heat-stable and low-molecular weight antibiotic substance. In order to construct the multifunctional biocontrol agent, the urease gene of Bacillus pasteurii which can produce pathogenes-suppressive ammonia transferred into antifungal bacterium. First, a partial BamH I digestion fragment of plasmid pBU11 containing the alkalophilic B. pasteurii l1859 urease gene was inserted into the BamH I site of pEB203 and expressed in Escherichia coli JM109. The recombinant plasmid was designated as pGU366. The plasmid pGU366 containing urease gene was introduced into the B. subtilis SH14 with PEG-induced protoplast transformation (PIP) method. The urease gene was very stably expressed in the transformant of B. subtilis SH14. Also, the optimal conditions for transformation were established and the highest transformation frequency was obtained by treatment of lysozyme for 90 min, and then addition of 1.5 ${mu}g$/ml DNA and 40% PEG4000. From the in vitro antifungal test against F. solani, antifungal activity of B. subtilis SH14(pGu366) containing urease gene was much higher than that of the host strain. Genetical development of B. subtilis SH14 by transfer of urease gene can be responsible for enhanced biocontrol efficacy with its antibiotic action.
It has been known that propolis possesses anti-infective, anti-inflammatory, and anti-oxidative properties. Although antifungal activity of Propolis has already been demonstrated, very few studies has been conducted for action mechanism and its spectrum on fungi. We found that ethanol extract of propolis (EEP) inhibited in vitro translation. Since we also observed the growth inhibition of pathogenic fungi and anti-oxidative properties preliminarily, we try to see where those properties come from. Therefore we extracted the EEP further with chloroform, ethyl acetate and butanol. When their fractions were examined for the growth inhibition of Candida albicans, Saccharomyces cerevisiae, Candida glabrata, Candida lusitaniae, Cryptococcos neoformans, chloroform fraction exhibited the highest anti-fungal as well as anti-oxidative properties. Similarly the chloroform fraction showed highest translation-inhibiting activities among the various Propolis fractions. These data indicate that those properties might come from similar compounds.
A rapid assay to determine respiration inhibition of Saccharomyces cerevisiae by chemicals was developed. S. cerevisiae was harvested with two different liquid media, yeast extract-peptone-dextrose (YPD) medium capable of occurring both glucose fermentation and mitochondrial respiration, and non-fermentable carbon-yeast extract (NFY) medium capable of occurring respiration only Wells in 96-well plate were loaded with each cell suspension and various concentrations of 46 fungicides with various modes of action. n NFY medium, the non-fermentable carbon source, ethanol (NFY-E medium), glycerol (NFY-G medium) or lactate (NFY-L medium), was used. After incubation for $1{\sim}3$ days, minimum inhibitory concentrations (MICs) of the chemicals were recorded in the media. Of the 46 inhibitors employed in this study, four inhibitors of fungal respiration by blockage of electron flux in the mitochondrial respiratory chain, azoxystrobin, kresoxim-methyl, metominostrobin, and trifloxystrobin, exhibited strong antifungal activity in all of NFY media, but no activity in YPD medium. In contrast to this, five N-trihalomethylthio fungicides showed much stronger antifungal activities in YPD medium than three NFY media. Eleven fungicides inhibited growth of S. cerevisiae in all media and the other 26 fungicides showed no antifungal activity in all media. Thus, our rapid and efficient in vitro method can be considered as an alternative assay system for respiration inhibitor.
Candida albicans infections are often problematic to treat owing to antifungal resistance, as such infections are mostly associated with biofilms. The ability of C. albicans to switch from a budding yeast to filamentous hyphae and to adhere to host cells or various surfaces supports biofilm formation. Previously, the ethanol extract from Paeonia lactiflora was reported to inhibit cell wall synthesis and cause depolarization and permeabilization of the cell membrane in C. albicans. In this study, the P. lactiflora extract was found to significantly reduce the initial stage of C. albicans biofilms from 12 clinical isolates by 38.4%. Thus, to assess the action mechanism, the effect of the P. lactiflora extract on the adhesion of C. albicans cells to polystyrene and germ tube formation was investigated using a microscopic analysis. The density of the adherent cells was diminished following incubation with the P. lactiflora extract in an acidic medium. Additionally, the P. lactiflora-treated C. albicans cells were mostly composed of less virulent pseudohyphae, and ruptured debris was found in the serum-containing medium. A quantitative real-time PCR analysis indicated that P. lactiflora downregulated the expression of C. albicans hypha-specific genes: ALS3 by 65% (p = 0.004), ECE1 by 34.9% (p = 0.001), HWP1 by 29.2% (p = 0.002), and SAP1 by 37.5% (p = 0.001), matching the microscopic analysis of the P. lactiflora action on biofilm formation. Therefore, the current findings demonstrate that the P. lactiflora ethanol extract is effective in inhibiting C. albicans biofilms in vitro, suggesting its therapeutic potential for the treatment of biofilm-associated infections.
Deer antler has been widely prescribed in Chinese and Korean pharmacology. Although there have been several reports concerning the effects of deer antler, such as anti-aging action, anti-inflammatory activity, antifungal action and regulatory activity of the level of glucose, the effect on bone has not determined yet. The purpose of this study was to examine the effect of deer antler on osteoblast differentiation. Hexane extract(CN-H) and chloroform extract(CN-C) were acquired from deer antler(Cervus nippon) and MC3T3-E1 pre-osteoblasts were cultured in the presence or absence of each extract. Osteoblast differentiation was estimated with the formation of mineralized nodules and the mRNA expression of alkaline phosphatase(ALP), osteocalcin(OC) and bone sialoprotein(BSP) which are markers of osteoblast differentiation. Non-treated group did not show mineralized nodule. CN-C or CN-H-treated group showed minerlaized nodules in 16 days. In northern blot analysis, CN-C or CN-H-treated group showed the elevated expression of ALP, BSP and OC in 16 days. These results suggest the possibility to develop deer antler as a bone regenerative agent in periodontal therapy by showing the stimulating activity of deer antler on differentiation of osteoblast.
8-Hydroxyquinoline is used as antibacterial agent and antioxidant based on its function inducing the chelation of ferrous ion present in host resulting in production of chelated complex. This complex being transported to cell membrane of bacteria and fungi exerts antibacterial and antifungal action. In this study, we have carried out in vitro genetic toxicity tests and microarray analysis to understand the underlying mechanisms and the mode of action of toxicity of 8-hydroxyquinoline. TA1535 and TA98 cells were treated with 8-hydroxyquinoline to test its toxicity by basic genetic toxicity test, Ames and two new in vitro micronucleus and COMET assays were applied using CHO cells and L5178Y cells, respectively. In addition, microarray analysis of differentially expressed genes in L5178Y cells in response to 8-hydroxyquinoline were analyzed using Affymatrix genechip. The result of Ames test was that 8-hydroxyquinoline treatment increased the mutations in base substitution strain TA1535 and likewise, 8-hydroxyquinoline also increased mutations in frame shift TA98. 8-Hydroxyquinoline increased micronuclei in CHO cells and DNA damage in L5178Y. 8-Hdroxyquinoline resulted in positive response in all three tests showing its ability to induce not only mutation but also DNA damage. 783 Genes were initially selected as differentially expressed genes in response to 8-hydroxyquinoline by microarray analysis and 34 genes among them were over 4 times of log fold changed. These 34 genes could be candidate biomarkers of genetic toxic action of 8-hydroxyquinoline related to induction of mutation and/or induction of micronuclei and DNA damage. Further confirmation of these candidate markers related to their biological function will be useful to understand the detailed mode of action of 8-hydroxyquinoline.
The number of natural products obtained from plants has now reached over 100,000 and new chemical compounds are being discovered ever year. Medicinal and Aromatic plants and their extracts have been used for centuries to relieve pain, aid healing, kill bacteria and insects are important as the antifungal and anti-herbivore agents with further compounds being involved in the symbiotic associations. Although their functions in plants have not been fully established, it is Known that some substances have growth regulatory properties while others are involved in pollination and seed dispersal. The complex nature of these chemicals are usually produced in various types of secretory structures which is an important character of a plant family and also influenced and controlled by genetic and ecological factors. Detailed anatomical description of these structures ave relevant to the market value of the plants, the verification of authenticity of a given species and for the detection of substitution or adulteration. Volatile oils are used for their therapeutic action for flavoring of lemon, in perfumery of rose or as starting materials for the synthesis of other compounds of turpentine. For therapeutic purposes they are administered as inhalations of eucalyptus oil, peppermint oil, as gargles and mouthwashes of thymol and transdermally many essential oils including those of lavender, etc. With these current trend for using volatile components in essential oil will be increasing in the future in Korea and in the world as well.
To genetically breed powerful multifunctional antagonistic bacteria, the urease gene of alkalophilic Bacillus pasteurii was transferred into Bacillus subtilis YB-70 which had been selected as a powerful biocontrol agent against root-rotting fungus Fusarium solani. Urease gene was inserted into the HindIII site of pGB215-110 and designated pGU266. The plasmid pGU266 containing urease gene was introduced into the B. subtilis YB-70 by alkali cation transformation system and the urease gene was very stably expressed in the transformant of B. subtilis YB-70(pGU266). The optimal conditions for the transfomation were also evaluated. From the in vitro antibiosis tests against F. solani, the antifungal activity of B. subtilis YB-70 containing urease gene was much efficient than that of the non-transformed strain. Genetic improvement of B. subtilis YB-70 by transfer of urease gene for the efficient control seemed to be responsible for enhanced plant growth and biocontrol efficacy by combining its astibiotic action and ammonia producing ability.
Marine sponges have been considered as a drug treasure house with respect to great potential regarding their secondary metabolites. Most of the studies have been conducted on sponge's derived compounds to examine its pharmacological properties. Such compounds proved to have antibacterial, antiviral, antifungal, antimalarial, antitumor, immunosuppressive, and cardiovascular activity. Although, the mode of action of many compounds by which they interfere with human pathogenesis have not been clear till now, in this review not only the capability of the medicinal substances have been examined in vitro and in vivo against serious pathogenic microbes but, the mode of actions of medicinal compounds were explained with diagrammatic illustrations. This knowledge is one of the basic components to be known especially for transforming medicinal molecules to medicines. Sponges produce a different kind of chemical substances with numerous carbon skeletons, which have been found to be the main component interfering with human pathogenesis at different sites. The fact that different diseases have the capability to fight at different sites inside the body can increase the chances to produce targeted medicines.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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