Park, Won-Mok;Lee, Sang-Seon;Park, Sun-Hee;Ju;Ryu, Ki-Hyun
The Plant Pathology Journal
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v.16
no.1
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pp.36-42
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2000
The coat protein gene of iris severe mosaic potyvirus, which was isolated in Korea, ISMV-K, from iris plant was cloned and its nucleotide sequence was determined. The coat protein of the virus contained 252 amino acid residues, including five potential N-glyxosylation site motifs. The coat protein of ISMV-K has 99.1% and 98.4% sequence identities with those of the Netherlands isolate of ISMV (ISMV-Ne) form crocus for the nucleotide and amino acids, respectively. The coat protein of ISMV-K has 50.4% to 60.3% nucleotide sequence identities and 47.3% to 55.7% amino acid identities with those of other 21 potyviruses, indicating ISMV to be a distinct species of the genus. The coat protein of ISMV-K was closely related with bean yellow mosaic virus and clover yellow vein virus in the phylogenetic tree analysis among the potyviruses analyzed. ISMV was easily and reliably detected from virus-infected iris leaves by RT-PCR with a set of the virus-specific primers.
cDNA fragments of ovine liver pyridoxal kinase were amplified by PCR using degenerate oligonucleotide primers derived from partial amino acids sequences of the enzyme. Using PCR products as probes, several overlapping cDNA clones were isolated independently from an ovine liver and a human brain cDNA library. The largest cDNA clone for each was selected for sequence analysis. The ovine liver cDNA encodes a polypeptide of 297 amino acid residues with Mr of 32,925, whereas the human clone is comprised of an open reading frame encoding 312 amino acid residues with Mr of 35,102. The deduced sequence of the human brain enzyme is completely identical to that of human testes cDNA recently reported (Hanna et al., 1997). The ovine enzymes have approximately 77% sequence identity with the human enzyme although the two sequences are completely different in the N-terminus comprising 32 residues. This result suggests that pyridoxal kinase is highly homologous in mammalian species.
The complete nucleotide sequences of both RNA of an isolated Barley mild mosaic virus (BaMMV) from Iksan, Korea, have been determined. RNA1 was 7273 nucleotides long and encodes for a polyprotein of 2261 amino acids, which contains the eight putative functional proteins. RNA2 was 3520 nucleotides long and encodes for a polyprotein of 894 amino acids, which contains two functional proteins. Results of multiple sequence alignment showed 92.9% similarity with Na1 isolate, followed by Sil, UK(F), Asl1, Remis M and UK(M) isolates, respectively. Comparison of the BaMMV-Iks polyproteins with the corresponding proteins of BaMMV-Na1 isolates showed 95% amino acid sequence identity. The phylogenetic analysis revealed that Iks isolate was closely related to Na1 strain and have a common origin.
The mutant enzymes of N-carbamyl-D-amino aicd amidohydrolase (N-carbamylase) from Agrobacterium radiobacter NRRL B11291, showing a negligible activity, were selected from the library generated by random mutagenesis. From the sequence analysis, these mutants were found to contain the amino acids substitutions at Cys172, Glu47, and Glu146. Previously, Cys172 was reported to be necessary for the enzyme catalysis. The chemical modification of the N-carbamylase by carboxyl group specific chemical reagent, 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide(EDC), resulted in a loss of activity. The replacement of glutamic acids with glutamines by site-directed mutagenesis led to aggregation of the enzymes. Mutant enzymes fused with maltose binding protein (MBP) were expressed in soluble form, but were inactive. These results indicate that two glutamic acid residues play an important role in structure and function of the N-carbamylase. Multiple sequence alignment of the related enzymes revealed that Glu47 and Glu146 are rigidly conserved, which suggests that tese residues are crucial for the structure and function of the functionally related C-N hydrolases.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.25
no.1
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pp.115-121
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2012
The bumblebee Bombus terrestris is widely used in greenhouses to pollinate crops. Here, we report the molecular cloning and characterization of chymotrypsin inhibitor and chitin-binding protein homologs from B. terrestris. Two cDNAs encoding chymotrypsin inhibitor (Bt-CI) and chitin-binding protein (Bt-CBP) homologs were cloned from B. terrestris. Gene sequence analysis showed that Bt-CI gene consists of three exons encoding 75 amino acids, including a predicted 20-amino acid signal peptide, while Bt-CBP consists of two exons encoding 78 amino acids, including a predicted 26-amino acid signal peptide. The mature Bt-CI and Bt-CBP peptides contain ten and six conserved cysteine residues, respectively. Database searches using the deduced sequences of Bt-CI and Bt-CBP showed similarity to those from B. impatiens (96% peptide sequence identities). Bt-CI and Bt-CBP were expressed in both the venom gland and fat body of B. terrestris worker bees. The recombinant Bt-CI and Bt-CBP peptides were expressed in baculovirus-infected insect cells. Taken together, our findings describe the molecular characterization of Bt-CI and Bt-CBP from B. terrestris.
Isolation, cloning and sequencing of red seabream (Pagrus major) somatolactin (rsbSL) cDNA from pituitary gland revealed an open reading frame of 693 bp coding for a pre-growth hormone of 231 amino acids with a 22 amino acid putative signal peptide. Deduced amino acid sequence showed that there was one possible N-glycosylation site at Asn$^{145}$ and seven Cys residues (Cys$_{29}$ , Cys$^{39}$ , Cys$^{66}$ , Cys$^{89}$ , Cys$^{205}$ , Cys$^{222}$ , Cys$^{230}$ ). Except Cys$^{66}$ , others may be involved in disulfide bond formation. The rsbSL presented a 93% amino acid sequence identity with the SL of gilthead seabream (Sparus aurata) and contained the conserved hormone domain region. Expression of rsbSL in E. coli (BL2l) cells and gel analysis revealed a higher molecular weight for rsbSL than expected theoretically, implying posttranslational modifications.
A stuructural gene (ycl) encoding novel yeast cell wall hydrolase, YCL, was cloned from alkalophilic Bacillus alcalophilus subsp. YB380 by PCR, and transformed into E. coli JM83. Based on the N-terminal and internal amino acid sequences of the enzyme, primers were designed for PCr. The positive clone that harbors 1.8 kb of the yeast cell wall hydrolase gene was selected by the colony hybridization method with a PCR fragment as a probe. According to the computer analysis, this gene contained a 400-base-paired N-terminal domain of the enzyme. Based on nucletide homology of the cloned gene, a 850 bp fragment was amplified and the C-terminal domain of the enzyme was sequenced. With a combination of the two sequences, a full nucleotide sequence for YCL was obtained. This gene, ycl, consisted of 1,297 nucleotides with 27 nucleotides with 27 amino acids of signal sequence, 83 redundant amino acids of prosequence, and 265 amino acids of the mature protein. This gene was then cloned into the pJH27 shuttle vector and transformed into the Bacillus subtilis DB104 to express the enzyme. It was confirmed that the expressed cell wall hydrolase that was produced by Bacillus subtilis DB104 was the same as that of the donor strain, by Western blot using polyclonal antibody (IgY) prepared from White Leghorn hen. Purified yeast cell wall hydrolase and expressed recombinant protein showed a single band at the same position in the Western blot analysis.
Kim, Jin-Sook;Lee, In-Soo;Lee, Seung-Won;Lee, Young-Phil;Jung, Chul-Ho;Kim, Hyung-Cheol;Choi, Soon-Yong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.12
no.5
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pp.773-779
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2002
A gene (hap) encoding aminopeptidase from the chromosomal DNA of Bacillus licheniformis was cloned. The gene is 1,347 bp long and encodes a 449 amino acid preproprotein with a major mature region of 401 amino acids (calculated molecular mass 43,241 Da). N-Terminal sequence of the purified protein revealed a potential presence of N-terminal propeptide. The deduced primary amino acid sequence and the mass analysis of the purified protein suggested that a C-terminal peptide YSSVAQ was also cleaved off by a possible endogeneous protease. Tho amino acid sequence displayed 58% identity with that of the aminopeptidase from alkaliphilic Bacillus halodurans. This bacterial enzyme was overexpressed in recombinant Escherichia coli and Bacillus subtilis cells. Clones containing the intact hap gene, including its own promoter and signal sequence, gave rise to the synthesis of extracellular and thrmostable enzyme by B. subtilis transformants. The secreted protein exhibited the same biochemical properties and the similar apparent molecular mass as the B. lichenzyormis original enzyme.
A cDNA library of Ganoderma lucidum has been constructed using a Zap Express cloning vector. A glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase gene (gpd) was isolated from this library by hybridization of the recombinant phage clones with a gpd-specific gene probe generated by PCR. By comparison of the cDNA and the genomic DNA sequences, it was found that the complete nucleotide sequence encodes a putative polypeptide chain of 338 amino acids interrupted by 6 introns. The predicted amino acid sequence of this gene shows a high degree of sequence similarity to the GPD proteins from yeast and filamentous fungi. The promoter region contains a CT-rich stretch, two CAAT boxes, and a consensus TATA box. The possibility of using the gpd promoter in the construction of new transformation vectors is discussed.
This study was carried out to establish the purification protocol of angiogenin(ANG) from bovine milk. The purification of ANG from bovine milk was performed by using cation chromatography, high-performance liquid chromatography and gel-filtration. We obtained the ANG protein have the molecular weight of about 14 kD by SDS-PAGE analysis. This protein was confirmed as ANG by Nlb-terminal sequence analysis of the first 15 amino acids. Identified amino acids revealed the protein to be identical to that previously reported for bovine ANG.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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